Blog WPI

Le NanoFil™ de WPI est un système d'injection microlitre étanche aux gaz pour la recherche sur petits animaux, compatible avec des aiguilles jusqu'au calibre 36. Son volume mort ultra-faible permet des injections directes sub-microlitres sans remplissage d'huile, et un joint en silicone breveté permet un changement rapide d'aiguille avec une perte d'échantillon minimale. Compatible avec les capillaires GC/CE et divers tubes, il propose des aiguilles émoussées et uniques à biseau tri-surface de 25° (26–36G) qui réduisent les dommages tissulaires et améliorent la durabilité. Le système est largement utilisé pour des injections tissulaires précises, y compris en ophtalmologie, et est soutenu par des kits d'application et des études évaluées par des pairs.

Dans tout laboratoire, disposer des fournitures de laboratoire essentielles est presque aussi important que d'avoir le matériel principal. Choisir un fournisseur réputé pour ces fournitures nécessaires est aussi crucial que d'avoir des fournitures de laboratoire de qualité quand vous en avez besoin. WPI souhaite être votre partenaire dans la découverte précoce de médicaments, et nous stockons une grande variété de fournitures de laboratoire, dont beaucoup peuvent être expédiées le jour même. Avoir une variété de fournitures de laboratoire prêtes à être expédiées fait de nous un partenaire de recherche fiable. Voici quelques-unes des fournitures populaires que nous gardons en stock pour répondre à vos besoins pour votre prochaine expérience.

Les modèles in vitro ont utilisé deux méthodes courantes pour quantifier les changements dans l'intégrité de la barrière endothéliale : la résistance électrique transepitheliale/transendothéliale (TEER) et la perméabilité aux composés traceurs.1 La TEER est une méthode non invasive qui quantifie les variations de conductance électrique pour mesurer la confluence et l'intégrité de la barrière. La perméabilité aux composés traceurs utilise des molécules de poids moléculaire défini pour mesurer la capacité d'exclusion dimensionnelle des barrières cellulaires (par exemple, FITC-dextran 4 kDa ou FD4).1 En utilisant le Manuel EVOM™ (EVOM-MT-03-01) avec l'électrode EndOhm TEER et des supports perméables pour culture cellulaire, cette note d'application décrit comment évaluer de manière non invasive l'intégrité de la barrière endothéliale après un traitement aux cytokines et fournit une méthode pour identifier des composés vasoactifs susceptibles d'induire des lésions vasculaires. Les études de perméabilité aux composés traceurs sont combinées à l'évaluation TEER pour élucider les impacts induits par le traitement sur les jonctions intercellulaires et le transport paracellulaire (Fig. 1).

Dans le processus du « cycle cellulaire », les cellules croissent et se divisent en deux cellules filles génétiquement identiques. Il est régulé par une voie de signalisation complexe qui maintient l'homéostasie cellulaire en régulant la division cellulaire et la duplication de l'ADN1. D'autre part, parce que les cellules cancéreuses croissent et se divisent indéfiniment hors du contrôle du cycle cellulaire, des médicaments anti-mitotiques sont utilisés pour supprimer la prolifération anormale des cellules cancéreuses2. En particulier, le Nocodazole est connu comme un médicament anti-mitotique représentatif pour le traitement du cancer, et il a la caractéristique de perturber la dynamique des microtubules pendant la division cytoplasmique et nucléaire3,4.

La cytotoxicité fait référence au degré de dommage aux cellules causé par des substances chimiques ou des facteurs physiques. La mesurer par un test de cytotoxicité est essentiel pour le développement de médicaments et la recherche biologique. Les cellules subissent des voies de signalisation complexes qui provoquent divers processus de mort cellulaire tels que l'apoptose, la nécrose et la nécroptose. Cependant, la plupart des tests de cytotoxicité sont mesurés à un point final, ce qui rend difficile l'étude de la réponse dynamique des cellules aux médicaments.

Comme les globules blancs responsables de la fonction immunitaire sont des cellules en suspension qui circulent dans les vaisseaux sanguins, les études en immunologie utilisent souvent diverses lignées cellulaires en suspension provenant de globules blancs. Contrairement aux cellules adhérentes, le moindre mouvement d'une plaque lors de sa localisation au microscope fait flotter les cellules en suspension. En plus des problèmes causés par l'instabilité de la température et du CO2, il est en fait impossible d'utiliser un microscope traditionnel pour surveiller les cellules en temps réel. Par conséquent, pour surveiller de manière stable les cellules en suspension, un dispositif d'imagerie cellulaire en direct tel que Celloger® Mini Plus, qui fonctionne à l'intérieur d'un incubateur, est essentiel1. De plus, avec Celloger® Mini Plus, la caméra à l'intérieur du système se déplace pour capturer les images des cellules à plusieurs positions afin de maintenir l'échantillon cellulaire dans un état stable, au lieu d'avoir une platine mobile avec une plaque dessus. Lorsque les cellules en suspension ont été surveillées à la fois par Celloger® Mini Plus et par microscope, l'imagerie avec Celloger® Mini Plus était plus stable comparée à l'utilisation d'un microscope où plusieurs cellules étaient hors de mise au point (Figure 1).