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EVOM3
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価格はアメリカ合衆国、カナダ、プエルトリコのみ有効です。
この製品は生産終了となりました。アップグレードはこちら EVOM™ マニュアル 精度向上、自動データ記録、タッチスクリーンインターフェース、多数の新機能のために。
EVOM™ マニュアルは、EVOM3、EVOM2、MilliCellを含むWPI製のすべての手動TEERメーターに代わるものです® ERS-2もすべて生産終了となっています。
WPIのEVOMシステムは研究コミュニティで人気があり、細胞層のトランスエピセリアル/トランスエンドセリアル電気抵抗(TEERまたはTER)を測定することで哺乳類細胞の健康評価に一般的に使用されています。
EVOM3は旧モデル(EVOMX、EVOM、EVOM2)と同じ基本原理で動作します。実験をより簡単に行うための高度な機能を備えています。新しいタッチスクリーンディスプレイにより、Microsoft形式でデータを保存できます。® USBフラッシュドライブに保存されたExcelファイル。EVOM3からすべての記録データが入ったフラッシュドライブを取り外し、コンピューターに接続するだけでデータにアクセスしてグラフ化できます。とても簡単です。
イオンおよび電流は、細胞内(細胞内経路)および隣接する細胞間の空間(細胞間経路)を通って輸送されることが、下の図に示されています。

点線はイオンまたは電流の細胞内経路を示しています。実線はイオンまたは電流の細胞間経路を示しています。
細胞層の電気抵抗(すなわちTEER)は、細胞層を通る電気伝導度の逆数として表されます。細胞層のTEER値が高いことは、細胞単層が健全であることを示し、イオンや分子の透過性が低いまたは制限されていること(すなわち低伝導度)を示唆します。同様に、TEER値の低下はバリア機能の損なわれを示し、透過性の増加を示します。組織の透過性研究にはコンフルエントな細胞層が必要であり、TEER測定は一般的にコンフルエント単層の形成を確認するために使用されます。

最初は、細胞をトランスウェルに播種してから24時間後、TEER値は一般的に低く、電流が細胞間を容易に通過できるためです。時間が経つにつれて細胞が増殖し、隙間を覆い始めます。最終的にコンフルエントな細胞単層が形成されます。その時点で透過性膜は細胞で完全に覆われ、電流の通過を容易に許しません。これにより高いTEER値が得られます。
コンフルエントな細胞単層のTEER値は細胞タイプによって異なります。通常低いTEER値を示す特定の細胞タイプ(例:細胞タイプA)の単層は、比較的リーキーなタイトジャンクションを持っています。別の細胞タイプ(例:細胞タイプB)の単層は高いTEER値を示し、これらの細胞タイプはタイトなタイトジャンクションを持つことで知られています。イオンや分子は、タイトな細胞層よりもリーキーな細胞層を比較的容易に通過します。細胞上のトランスセルラーイオンチャネルの存在が多いと、トランスセルラー経路を通るイオンや電流の流れがさらに容易になり、TEER値がさらに低下することがあります。

細胞タイプAは細胞間をより多くの電流やイオンが通過できるため、TEER値が低くなります。より密な接合を持つ細胞タイプBの単層は、より高いTEER値を示します。両方の単層がコンフルエントであっても、TEER抵抗値は細胞の性質によって大きく異なることがあります。
WPIはEVOMを使った簡略化されたTEER測定技術の先駆者であり、現在もWPIのEVOMシステムはトランスウェルでのTEER値測定に最も人気のある装置です。EVOM3は上皮電圧計の最新バージョンで、いくつかの高度な機能を備えています。EVOM3はタッチスクリーンインターフェースを搭載しており、使いやすさが向上しています。EVOMを使ったTEER測定は細胞の健康状態を非侵襲的にモニタリングする方法です。新しいSTX2PLUS電極を搭載したEVOM3は、より正確なサンプル分析とUSBフラッシュドライブを使った迅速かつ簡単なデータ保存機能を提供します。
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より高精度で定量的なサンプル分析と簡単なデータ保存には、EVOM3を検討してください。EVOM3の非侵襲的な検出方法により、同じサンプルを他の実験分析にも使用できます。
TEER測定が一般的に使われる3つの応用例を紹介します。細胞バリア機能を測定する際、TEER値の上昇は通常バリア機能の向上と相関します。同様に、TEER値が最大レベルに達すると細胞層がコンフルエントに達したことを示します。細胞毒性はTEER測定で評価可能です。高いTEER値は健康な細胞層を示します。細胞が死ぬと細胞層に隙間ができ、TEER値が低下します。

WPIのEVOMシステムは、in vitroの2次元(2-D)または3次元(3-D)組織の健康と機能の研究に広く使われています。近年では、高スループット薬物スクリーニングや疾患研究のために、in vivo組織に似た一貫した機能特性を示す3-D in vitro組織の作成に注目が集まっています。TEER測定は、in vitro組織がどれだけin vivo組織を忠実に模倣できているかを評価・比較する方法の一つとして用いられています。EVOM3は血液脳関門(BBB)、リンウイルス感染、腸、腎臓、肝臓組織などの3-D in vitroモデルで使用可能です。参考文献セクションにはいくつかの選定された論文が掲載されています。


短い動画でEVOM3の主な新機能を紹介しています。このページのリソースタブ をクリックして、すべてのEVOM3動画をご覧ください。
WPIは上皮生理学の研究向けに、さまざまな電極、EVOMメーター、高スループットスクリーニング(HTS)用の自動ロボットシステムを提供しています。電極の選択肢の詳細は記事「TEER測定用電極の選び方」をご覧ください。
EVOM3は従来の経上皮電気抵抗(TEER)メーターに比べて作業効率の向上、より安定で繰り返し可能な測定を実現します。実験測定中に重要なフィードバックをユーザーに提供し、EVOM3の大画面は多様な情報表示を提供します。トレンド分析と測定値の新しいグラフィカル表示は、科学者が実験測定中にシンプルで段階的な方法論を提供するのに役立ちます。タッチスクリーンインターフェースは、設定のための直感的で使いやすいメニューをユーザーに提供します。
手動でデータを記録する必要をなくし、EVOM3は抵抗または電圧情報をCSV形式でUSBドライブに書き込み、スプレッドシートやデータ分析プログラムへの簡単な転送を可能にします。フットスイッチと併用すると、ハンズフリーでの測定記録が可能です。
EVOM3の中心には最新のプロセッサーと回路があり、高速安定化、自動20回サンプリング平均、低ノイズ設計により、迅速で簡単かつ信頼性の高い読み取りをユーザーに提供します。自動レンジ抵抗機能により高速な抵抗測定が可能で、オーバーレンジ表示機能が誤った読み取りを排除します。EVOM3は感度の高い膜用の2つの低レンジと最大100 KΩの高抵抗レンジを含む3つの固定範囲で調整可能な電流レベルを備えています。
STX2-PLUS電極は多くの24ウェルプレートに簡単に挿入できるよう設計されています。インサート内で位置を再配置でき、繰り返し可能で一貫した測定が可能です。新しいシールド電極は電気的干渉を最小限に抑え、より簡単にメンテナンスできるよう設計されています。
| EVOM3に含まれるもの | 数量 |
| EVOM3 上皮ボルトオームメーター | 1 |
| STX2-PLUS 電極セット | 1 |
| 300749 USBドライブ 32 GB(ストレージ用。ターゲットインサートの連続デジタルモニタリング用Python 3.8プログラムも含まれています)。 | 1 |
| 503535 USBケーブル | 1 |
| 99673 校正キット、1000Ωテスト抵抗器 | 1 |
| 803025 AC電源コードと充電器 | 1 |
| 13142 フットスイッチ | 1 |
注意: 99672 EVOM2からEVOM3への電極アダプターは別売りです。STX2、STX3およびすべてのSTX100はEVOM3と一緒にこのアダプターの使用が必要です。


細胞単層のコンフルエンスは、EVOM3の独自電子回路と新しいSTX2-PLUS電極を使用して検出される組織抵抗の増加またはプラトーによって決定されます。EVOM3は細胞単層の健康状態を定性的に測定し、細胞のコンフルエンスを定量的に測定します。EVOM3は低い交流電流を発生させ、電極の金属沈着や組織への悪影響を避けます。これらは高い直流電流によって引き起こされる可能性があります。EVOM3は低電流・低電圧を使用し、細胞培養における上皮単層の非破壊検査用に設計されています。さらに、抵抗値は膜の容量性や膜電圧の影響を受けません。EVOM3-STX2-PLUSシステムの精度と再現性により、この機器は透過性、PDおよびその他の詳細な膜研究に最適です。
| 品番 | 説明 |
| STX2-PLUS | 交換用電極セット |
| STX2* | 交換用電極セット(EVOM3で使用するには99672が必要) |
| STX3* | 浅いウェル用調整可能電極セット、深さ5-9 mm |
| 3993* | EVOM2用2 mmアダプター |
*(必要) 99672 EVOM3での使用向け)
新しいEndOhmチャンバーにはEVOM3ケーブルが含まれています 99916.
| 品番 | 説明 |
| ENDOHM-6G | 6 mm培養カップ用EndOhm(24ウェル/プレート) |
| ENDOHM-12G | 12 mm培養カップ用EndOhm(12ウェル/プレート) |
| ENDOHM-24G | 24 mmおよびCostar Snapwellカップ用EndOhm(6ウェル/プレート) |
EVOM3/EVOM™マニュアルアップグレードをダウンロード(2025年2月リリース)
はい、ただし99672アダプターまたは新しいEVOM3ケーブル99916が必要です。
ブランク機能は、電極や液体の抵抗など、膜以外の測定値を差し引きたい場合に使用します。
いいえ、TEER測定には面積の計算が必要です。TEERを計算するには、測定された抵抗値に適切な表面積(以下)を掛けます。例えば、12 mmインサートで565 Ωを測定した場合、TEERは565 Ω × 1.13 cm2 = 638.5 Ω- cm2以下は、さまざまなトランスウェル/インサートフォーマットに一般的に適用される表面積です:6ウェルプレート(24 mmインサート)4.52 cm2、12ウェルプレート(12 mmインサート)1.13 cm2、24ウェルプレート(6.5 mmインサート)0.33 cm2、96ウェルプレート(4.3 mmインサート)0.14 cm2.
設定を開き、保存メニューから「新しいプレート」を押してメモリ内のデータをクリアしてください。メイン画面に戻り、プレビュー画面を開いて測定する各ウェルを選択(選択が緑色に変わる)し、電極を置いて測定します。選択したウェルの測定が終わったら、設定を開き、保存画面メニューを押して「新規保存」を押し、USBドライブにプレートデータを保存します。
使用後はEVOM3をラミナーフードから取り出してください。次回使用時はフード内のUVを点灯させます。UVでフードを消毒した後、UVを消し、70~100%のエタノールまたはイソプロパノールを紙タオルにスプレーしてEVOM3を拭いてください。EVOM3に直接アルコールをスプレーしないでください。
電極が空気中にあるか液体に部分的にしか浸っていない場合、不安定な読み取り値が表示されるためダッシュ(-)が出ることがあります。電極先端部分(感知領域)は完全に浸漬されている必要があります。電極先端が完全に浸っていないと不安定な読み取り値が出ることがあります。電極先端が完全に浸るように頂側と底側の液量を選択してください。インサートメーカーの推奨液量より多い頂側と底側の液量を使用する必要があります。例えば、Corning-24ウェルトランスウェル(例:Corning 3470)では、上部(頂側)に最低300 µL、下部(底側)に850 µLを推奨します。[これらの液量はSTX2-PLUS電極に必要な最小量より少し多めです。]
手順は以下の通りです:

図1:STX2-PLUS 電極高さの調整。前面リングを時計回りに回して、電極がウェル内に最大深さまで入るようにします。

図2:STX2-PLUS 電極先端と液量の要件。測定中、両方のブレードの電極感知先端(赤枠部分)が細胞培養液やバッファーなどの導電性液体に完全に浸っていることを確認してください。安定した測定値を得るために、頂側と底側の液量が十分である必要があります。STX2-PLUSは吊り下げた状態で使用するため、電極感知領域が完全に浸るように液量を増やす必要があります。
注意:インサートメーカーの推奨液量より多くの液体を使用する必要があります。インサートメーカーの推奨液量では電極先端が完全に浸漬されません。
[As mentioned as an example previously, for Corning-24 well Transwell (e.g., Corning 3470) we recommend using minimum 300 µL on top (apical) and 850 µL on bottom (basolateral). These volumes are a little more than the least required for STX2-PLUS electrode. You can check visually to make sure the apical and basolateral volumes are adequate to keep the electrode tips fully immersed, and then consistently use those volumes.]
不安定な読み取りやダッシュの問題がまだ見られる場合、電極はおそらく塩素処理が必要です。塩素処理とは、電極先端を3-6%次亜塩素酸ナトリウムまたは漂白剤に10-15分浸し、その後蒸留水で洗い流すことを指します。これはSTX2-PLUSのメンテナンスの一部であり、重要なメンテナンス工程です。以下のメンテナンス指示(ステップ1)を参照してください。**
生の抵抗値の変化が見られることがあります。ただし、ブランク値(細胞なしのブランクTranswell)をサンプル値(細胞ありのTranswell)から差し引きます。こうすることで、増加した体積によるブランク値をサンプルの増加した体積から差し引くことができ、体積増加による抵抗の変化は除外されます。実験内のすべてのサンプルで同じ体積を一貫して使用してください。
以下はSTX2-PLUSの洗浄またはメンテナンスに従うことができる手順です。洗浄やメンテナンス中は、赤い枠で囲まれた領域まで液体レベルを十分に保つようにしてください。

1. 使用前に、電極先端を3-6%次亜塩素酸ナトリウム(漂白剤)に10-15分浸して塩素処理してください。頻繁に使用する場合や1週間以上保管した後は、3日に1回塩素処理を行う必要があります。**
2. 無菌DI水/バッファーで洗い流してください。
3. オプションステップ:70%エタノールまたはイソプロパノールに素早く浸し、その後DI水/バッファーに素早く浸してください。
4. 測定に電極を使用してください。
5. サンプル測定の間のオプションステップ:70%エタノールまたはイソプロパノールに素早く浸し、その後DI水/バッファーに素早く浸してください。
6. 測定後、電極先端を70%イソプロパノールまたはエタノールに5-10分浸してください。
7. DI水で洗い流してください。自然乾燥させてください。電極は乾燥した状態で、光の当たらない場所または光の少ない場所に保管してください。
8. 頻繁に使用する場合は、毎週電極先端を1%ターガザイムに15分間浸してください。その後、DI水で洗い流してください。
9. 次に、電極先端を3-6%次亜塩素酸ナトリウム(漂白剤)に10-15分浸してください。(ステップ#1と同じです。)
10. 無菌DI水/バッファーで洗い流してください。
11. 測定に使用してください。
12. ステップ5から繰り返してください。
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ケーブル部分を持たないでください。内部の接続が徐々に物理的に壊れる可能性があります。 |
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矢印で示された部分(プラスチック)を持ってください。 |
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液体の浸漬または液体スプレーのレベルはここまで(最大)に制限してください。液体が内部のケーブルやコネクターに到達しないようにするためです。電極の残りの部分は、イソプロパノールまたはエタノールをスプレーしたペーパータオルで拭くことができます(直接スプレーしないでください)。 |
EVOM3 TEER測定システムは、EVOM2よりも効率的に実験を行えるようにワークフローを改善し、測定の安定性と精度を向上させます。詳細を読みたい方は、記事「なぜEVOM3をEVOM2より選ぶべきか」をご覧ください。
コンパクトで軽量 - EVOM3とEVOM2の比較。1ポンド未満の軽量で携帯に便利。タッチスクリーンインターフェースを備えた洗練されたデザインです。
スマートデータ表示とフットスイッチ操作 - フットスイッチを使ったデータ収集の設定と使用がどれほど簡単かをご覧ください。
USBフラッシュドライブへのデータ保存 - ボタン一つでMicrosoft ExcelファイルとしてUSBフラッシュドライブにデータを保存。フラッシュドライブをUSBポートに接続すれば、パソコンでデータファイルにアクセス可能です。
改良された電極設計 - STX2電極と新しいSTX2-PLUS電極を比較してください。新しい電極はウェルプレート上に垂直に立ち、安定かつ一貫した測定を保証します。
本機は以下の仕様に準拠しています:
| タイプ | 説明 |
| 組織サンプリング周波数 | 12.5 Hz |
| サンプル平均化 | 1秒あたり20サンプル |
| 抵抗範囲 |
|
| オートモード | 1~100,000 Ω 自動電流 2 μA、4 μA、10 μA |
| 抵抗分解能 | 0.1 Ω (200 Ω未満); 1 Ω (200 Ω超) |
| 抵抗精度 |
|
| 電圧分解能 | 0.001 V、0.1 mV |
| 抵抗精度 | 0.1 Ω (200 Ω時); 1 Ω (200 Ω超) |
| 電圧精度 | ± 0.1 mV |
| 電流レベル |
|
| 表示更新速度 | 0.5秒 |
| バッテリー | 3.7V リチウムイオン 2500 mAh** |
| 充電時間 | 5.5時間(電源オフ時);6時間(動作時間) |
| 充電電流 | 200 mA |
| 消費電力 | 約250 mA |
| 認証 | CE |
** mAHはミリアンペア時を意味します。
| コーニング | ミリポア | 材料 | 膜径 (mm) | 成長表面積 (cm²) | 膜の細孔径 (μm) |
| 3470 | 6.5 | 0.33 | 0.4 | ||
| 3472 | PITP01250 | 6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| 3413 | PCFインサート | 6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| 3415 | PITP 01250 PCFインサート |
6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| 3421 | 6.5 | 0.33 | 5.0 | ||
| 3422 | PIEP 01250 PCFインサート |
6.5 | 0.33 | 8.0 | |
| 3495 | PIHT12R48* PETインサート |
6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| PIHA012 50 | HAインサート | 6.5 | 0.33 | 0.45 | |
| PICM012 50 | CMインサート | 6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| 3496 | PISP12R48* PETインサート |
6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| PIRP12R48* PETインサート |
6.5 | 0.33 | 1.0 | ||
| PIMP12R48* PETインサート |
6.5 | 0.33 | 5.0 | ||
| PIEP12R48* PETインサート |
6.5 | 0.33 | 8.0 | ||
| PIXP01250 PCFインサート |
6.5 | 0.33 | 12 | ||
| PIHP01250 | 1.0 | ||||
| PITT01250 | 3.0 |
* トライサポート
| Nunc | 細孔径 (μm) | 培養面積 (cm²) |
| 140620 | 0.4 | 0.47 |
| 140627 | 3.0 | 0.47 |
| 140629 | 8.0 | 0.47 |
| ThinCertTM | 膜材料 | 細孔径 [µm] | 細孔密度 [cm-2]-2] | 光学膜特性 | TC表面処理/滅菌済み | マルチウェルプレート/ThinCertTM 箱あたり |
| 662640 | PET | 0.4 | 1 x 108 | 半透明 | +/+ | 2/48 |
| 662641 | PET | 0.4 | 2 x 106 | 透明 | +/+ | 2/48 |
| 662610 | PET | 1.0 | 2 x 106 | 透明 | +/+ | 2/48 |
| 662630 | PET | 3.0 | 0.6 x 106 | 透明 | +/+ | 2/48 |
| 662631 | PET | 3.0 | 2 x 106 | 半透明 | +/+ | 2/48 |
| 662638 | PET | 8.0 | 0.15 x 106 | 半透明 | +/+ | 2/48 |
| ミリセル | 細孔径 (μm) | 数量/パック |
| MCHT24H48 | 0.4 | 48 |
| MCRP24H48 | 1.0 | 48 |
| MCSP24H48 | 3.0 | 48 |
| MCMP24H48 | 5.0 | 48 |
| MCEP24H48 | 8.0 | 48 |
| BDファルコン | 膜材料 | 細孔径 [µm] | 細孔密度 [cm-2]-2] | 光学膜特性 | TCプレート(ウェル数) |
| 353095 | PET | 0.4 | 2.0 ± 0.2 x 106 | 透明 | 24 |
| 353104 | PET | 1.0 | 1.6 ± 0.6 x 106 | 透明 | 24 |
| 353096 | PET | 3.0 | 8 ± 2 x 105 | 透明 | 24 |
| 353097 | PET | 8.0 | 6 ± 2 x 104 | 半透明 | 24 |
| 353495 | PET | 0.4HD | 100 ± 10 x 106 | 半透明 | 24 |
| 353492 | PET | 3.0HD | 2.0 ± 0.2 x 105 | 半透明 | 24 |
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