Sta andando a ruba!
Prendilo finché sei in tempo.
Il tuo carrello è vuoto
Continua lo shoppingIl tuo carrello
Totale stimato
$0.00 USD
Spedizione gratuita sugli ordini online superiori a $50! (Solo USA. Alcune esclusioni.) Spedizione gratuita sugli ordini online superiori a $50! (Solo USA. Alcune esclusioni.)
Risparmia su EVOM™ con i bundle Corning®!
UMP3-1
Impossibile caricare la disponibilità di ritiro
Prezzi validi solo negli Stati Uniti, in Canada e a Porto Rico.
With its digital controller, UltraMicroPump III can repeatably inject as little as 25nL. Syringes may be filled externally and then inserted into the pump or front-filled while mounted on the pump.
Compatible with all major commerically available glass microliter syringes such as: WPI's NanoFil™, Hamilton, SGE, and ILS syringes.
**For the best gas-tight, zero dead volume experience, check out WPI's NanoFil™ syringe and needle system. Learn why our syringe system is a game-changer for controlled sample targeting— a design in a class of its own.
Clicca qui per visualizzare la scheda tecnica aggiornata.
| Codice d'ordine | Descrizione |
| UMP3 | Solo testa della pompa UMP3 singola, senza controller |
| UMP3-1 | Una pompa UMP3 con controller |
| UMP3-2 | Due pompe UMP3 con controller |
| UMP3-3 | Tre pompe UMP3 con controller |
| UMP3-4 | Quattro pompe UMP3 con controller |
| SYS-MICRO4 | Solo controller a 4 canali |
NOTA: la pompa per siringa da microiniezione UMP3 include solo la testa della pompa. Per informazioni sul controller, vedere Micro4.
Grazie al controller digitale, UltraMicroPump III può erogare appena 600 picolitri per ogni avanzamento incrementale del pistone della siringa (utilizzando una siringa da 0,5 μL). Le siringhe possono essere riempite esternamente e poi inserite nella pompa, oppure riempite quando sono montate sulla pompa. I fluidi iniettati o prelevati rimangono interamente all'interno della microsiringa, per mantenere ridotto il volume morto del fluido nella micropompa.
Per il posizionamento, UltraMicroPump III può essere montata su uno dei vari micromanipolatori WPI, come M3301 (manuale), DC3001 (motorizzato) o un qualsiasi manipolatore stereotassico manuale.
Un componente essenziale del sistema di microiniezione con pompa per siringa UMPIII è il controller MICRO4 basato su microprocessore, che offre un'interfaccia «intelligente» e facile da usare per un massimo di quattro pompe per siringa. I parametri di funzionamento si impostano tramite la tastiera a membrana e il display LCD. Dalla tastiera è possibile selezionare le seguenti funzioni:
I parametri utente possono essere memorizzati nella memoria «non volatile» del controller per essere richiamati immediatamente all'accensione dell'unità. È possibile collegare un interruttore a pedale opzionale a un connettore sul retro del controller per avviare e arrestare il funzionamento a mani libere.
È possibile utilizzare una porta RS-232 sul retro del controller per collegarlo a un computer e usare programmi di controllo del computer.
Il 503207 Il kit è ideale per l'uso con una pompa per siringa da microiniezione UMP3, come mostrato di seguito.

Le immagini seguenti mostrano varie configurazioni per la microiniezione. Tenere presente che i componenti sono intercambiabili. Ad esempio:


Manuale di istruzioni UMP3 con MICRO4
Foglio di calcolo per il calcolo del volume della siringa - Usa questo foglio di calcolo .XLS per calcolare il volume della siringa quando usi un UMP3, DMP, MMP o PV820/PV830.
| Numero totale di passi | 20,000(63mm travel) |
| Volume minimo di erogazione | 25nL |
| Movimento lineare per passo | 3.175μm |
| Peso | 325g (11.5 oz.) |
| Diametri delle aste di montaggio | 7.9mm (0.31 in.) |
| Requisiti di alimentazione del controller | 2A, 12VDC |
| Dimensioni | Ø32mm x 190mm (1.3 in. x 7.5 in.) |
La precisione aumenta di otto volte.
Zhou, Z., Luther, N., Singh, R., Boockvar, J. A., Souweidane, M. M., & Greenfield, J. P. (2017). Gli sferoidi di glioblastoma producono gliomi infiltranti nel tronco encefalico dei ratti. Child’s Nervous System, 1–10. http://doi.org/10.1007/s00381-017-3344-y
Ye, H.-L., Li, D.-R., Yang, J.-S., Chen, D.-F., De Vos, S., Vuylsteke, M., … Yang, W.-J. (2017). Caratterizzazione molecolare e analisi funzionali di un gene simile al recettore dell’ormone della diapausa nell’Artemia partenogenetica. Peptides. http://doi.org/10.1016/j.peptides.2017.01.008
Wofford, K. L., Harris, J. P., Browne, K. D., Brown, D. P., Grovola, M. R., Mietus, C. J., … Cullen, D. K. (2017). Rapida risposta neuroinfiammatoria localizzata nei neuroni lesionati dopo un trauma cranico diffuso nei suini. Experimental Neurology, 290, 85–94. http://doi.org/10.1016/j.expneurol.2017.01.004
Qi, Y., Purtell, L., Fu, M., Zhang, L., Zolotukhin, S., Campbell, L., & Herzog, H. (2017). La reintroduzione specifica nell’ipotalamo di Snord116 in topi altrimenti carenti di Snord116 ha aumentato il dispendio energetico. Journal of Neuroendocrinology. http://doi.org/10.1111/jne.12457
Mosberger, A. C., Miehlbradt, J. C., Bjelopoljak, N., Schneider, M. P., Wahl, A.-S., Ineichen, B. V., … Schwab, M. E. (2017). I neuroni corticospinali assonotomizzati aumentano l’innervazione sopra la lesione e rimangono essenziali per i movimenti di raggiungimento precisi dopo la piramidotomia bilaterale. Cerebral Cortex, 137, 1716–1732. http://doi.org/10.1093/cercor/bhw405
Job, M. O., & Kuhar, M. J. (2017). Il peptide CART nel nucleo accumbens regola gli psicostimolanti: correlazioni tra gli effetti degli psicostimolanti e del peptide CART. Neuroscience, 348, 135–142. http://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2017.02.012
Eleftheriadou, I., Dieringer, M., Poh, X. Y., Sanchez-Garrido, J., Gao, Y., Sgourou, A., … Mazarakis, N. D. (2017). Trasduzione selettiva di sottopopolazioni astrocitarie e neuronali del SNC mediante vettori lentivirali pseudotipizzati con l’involucro del virus Chikungunya. Biomaterials, 123, 1–14. http://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2017.01.023
Augestad, I. L., Nyman, A. K. G., Costa, A. I., Barnett, S. C., Sandvig, A., Håberg, A. K., & Sandvig, I. (2017). Effetti dei cotrapianti di cellule staminali neurali e cellule olfattive di rivestimento sul rimodellamento tissutale dopo ischemia cerebrale focale transitoria nel ratto adulto. Neurochemical Research, 1–11. http://doi.org/10.1007/s11064-016-2098-3
Lin, P., Fang, Z., Liu, J., & Lee, J. H. (2016). Risonanza magnetica funzionale optogenetica. Journal of Visualized Experiments, (110), e53346–e53346. http://doi.org/10.3791/53346
Vacca, O., El Mathari, B., Darche, M., Sahel, J.-A., Rendon, A., & Dalkara, D. (2015). Uso del virus adeno-associato come strumento per studiare le barriere retiniche nelle malattie. Journal of Visualized Experiments, (98), e52451–e52451. http://doi.org/10.3791/52451
Lai, J., Legault, M.-A., Thomas, S., & Casanova, C. (2015). Registrazione elettrofisiologica simultanea e microiniezioni di agenti inibitori nel cervello dei roditori. Journal of Visualized Experiments, (101), e52271–e52271. http://doi.org/10.3791/52271
Robinson, S., & Adelman, J. S. (2015). Un metodo per silenziare a distanza l’attività neurale nei roditori durante fasi specifiche dell’apprendimento. Journal of Visualized Experiments, (100), e52859–e52859. http://doi.org/10.3791/52859
Platt, R. J., Chen, S., Zhou, Y., Yim, M. J., Swiech, L., Kempton, H. R., … Zhang, F. (2014). Topi di knock-in CRISPR-Cas9 per l’editing del genoma e la modellizzazione del cancro. Cell, 159(2), 440–55. http://doi.org/10.1016/j.cell.2014.09.014
Pierce, A. M., & Keating, A. K. (2014). Creazione di xenotrapianti intracranici di tumori cerebrali umani anatomicamente accurati e riproducibili. Journal of Visualized Experiments, (91), e52017–e52017. http://doi.org/10.3791/52017
Paveliev, M., Kislin, M., Molotkov, D., Yuryev, M., Rauvala, H., & Khiroug, L. (2014). Trauma cerebrale acuto nei topi seguito da imaging longitudinale a due fotoni. Journal of Visualized Experiments : JoVE, (Aprile), 1–8. http://doi.org/10.3791/51559
Nakamura, S., Baratta, M. V., & Cooper, D. C. (2013). Un metodo per il controllo optogenetico ad alta fedeltà dei singoli neuroni piramidali <em>in vivo</em> Journal of Visualized Experiments, (79), e50291–e50291. http://doi.org/10.3791/50291
Inquimbert, P., Moll, M., Kohno, T., & Scholz, J. (2013). Iniezione stereotassica di un vettore virale per la manipolazione condizionale dei geni nel midollo spinale del topo. Journal of Visualized Experiments, (73), e50313–e50313. http://doi.org/10.3791/50313
Hewing, N. J., Weskamp, G., Vermaat, J., Farage, E., Glomski, K., Swendeman, S., … Blobel, C. P. (2013). L’iniezione intravitreale di TIMP3 o dell’inibitore dell’EGFR erlotinib protegge i topi dalla retinopatia indotta dall’ossigeno. Investigative Ophthalmology & Visual Science, 54(1), 864–70. http://doi.org/10.1167/iovs.12-10954
Salt, A. N., Hartsock, J. J., Gill, R. M., Piu, F., & Plontke, S. K. (2012). Farmacocinetica perilinfatica dei marcatori e del desametasone applicati e campionati nel canale semicircolare laterale. Journal of the Association for Research in Otolaryngology, 13(6), 771–783. http://doi.org/10.1007/s10162-012-0347-y
Nickerson, J. M., Goodman, P., Chrenek, M. A., Bernal, C. J., Berglin, L., Redmond, T. M., & Boatright, J. H. (2012). Somministrazione sottoretinica ed elettroporazione negli occhi di topi adulti pigmentati e non pigmentati. Methods in Molecular Biology (Clifton, N.J.), 884, 53–69. http://doi.org/10.1007/978-1-61779-848-1_4
Beier, K., & Cepko, C. (2012). Tracciamento virale di circuiti neurali definiti geneticamente. Journal of Visualized Experiments, (68), e4253–e4253. http://doi.org/10.3791/4253
Goel, M., Sienkiewicz, A. E., Picciani, R., Wang, J., Lee, R. K., & Bhattacharya, S. K. (2012). Cochlin, regolazione della pressione intraoculare e meccanosensibilità. PloS One, 7(4), e34309. http://doi.org/10.1371/journal.pone.0034309
Abdelwahab, M. G., Sankar, T., Preul, M. C., & Scheck, A. C. (2011). Impianto intracranico seguito da imaging bioluminescente 3D <em>in vivo</em> dei gliomi murini. Journal of Visualized Experiments, (57), e3403–e3403. http://doi.org/10.3791/3403
Lowery, R. L., & Majewska, A. K. (2010). Iniezione intracranica di vettori virali adeno-associati. Journal of Visualized Experiments, (45), e2140–e2140. http://doi.org/10.3791/2140
Kinkel, M. D., Eames, S. C., Philipson, L. H., & Prince, V. E. (2010). Iniezione intraperitoneale nel pesce zebra adulto. Journal of Visualized Experiments : JoVE, (42), e2126. http://doi.org/10.3791/2126
Molotkov, D. A., Yukin, A. Y., Afzalov, R. A., & Khiroug, L. S. (2010). Trasferimento genico al cervello postnatale del ratto mediante iniezione plasmidica non ventricolare ed elettroporazione. Journal of Visualized Experiments, (43), e2244–e2244. http://doi.org/10.3791/2244
Marker, D. F., Tremblay, M.-E., Lu, S.-M., Majewska, A. K., & Gelbard, H. A. (2010). Tecnica della finestra a cranio assottigliato per l’imaging cronico <em>in vivo</em> a due fotoni della microglia murina in modelli di neuroinfiammazione. Journal of Visualized Experiments, (43), e2059–e2059. http://doi.org/10.3791/2059
Eames, S. C., Philipson, L. H., Prince, V. E., & Kinkel, M. D. (2010). La misurazione della glicemia nel pesce zebra rivela le dinamiche dell’omeostasi del glucosio. Zebrafish, 7(2), 205–13. http://doi.org/10.1089/zeb.2009.0640
Jasnow, A. M., Rainnie, D. G., Maguschak, K. A., Chhatwal, J. P., & Ressler, K. J. (2009). Costruzione di lentivirus con promotori specifici per tipo cellulare per guidare otticamente le registrazioni elettrofisiologiche e per il trasferimento genico mirato (pp. 199–213). http://doi.org/10.1007/978-1-59745-559-6_13
Christiana J. Johnson, Lennart Berglin, Micah A. Chrenek, T.M. Redmond, Jeffrey H. Boatright, J. M. N. (2008). Nota tecnica: iniezione sottoretinica ed elettroporazione negli occhi di topi adulti. Molecular Vission, 14, 2211–2226. Consultato da http://www.molvis.org/molvis/v14/a259/
Takayama, K., Torashima, T., Horiuchi, H., & Hirai, H. (2008). Trasduzione preferenziale delle cellule di Purkinje mediante vettori lentivirali con il promotore del virus murino delle cellule staminali. Neuroscience Letters (Vol. 443).
Torashima, T., Yamada, N., Itoh, M., Yamamoto, A., & Hirai, H. (2006). L’esposizione dei vettori lentivirali a un pH subneutro sposta il tropismo dalle cellule di Purkinje alla glia di Bergmann. European Journal of Neuroscience, 24(2), 371–380. http://doi.org/10.1111/j.1460-9568.2006.04927.x
Torashima, T., Okoyama, S., Nishizaki, T., & Hirai, H. (2006). Trasduzione in vivo delle cellule di Purkinje cerebellari murine mediante vettori lentivirali derivati dall’HIV. Brain Research, 1082(1), 11–22. http://doi.org/10.1016/j.brainres.2006.01.104
Dancause, N., Barbay, S., Frost, S. B., Plautz, E. J., Chen, D., Zoubina, E. V, … Nudo, R. J. (n.d.) (2005). Sviluppo/Plasticità/Riparazione: esteso ricollegamento corticale dopo una lesione cerebrale. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.3256-05.2005
Cherezov, V., Peddi, A., Muthusubramaniam, L., Zheng, Y. F., & Caffrey, M. (2004). Un sistema robotico per la cristallizzazione di proteine di membrana e solubili in mesofasi lipidiche. Acta Crystallographica Section D Biological Crystallography, 60(10), 1795–1807. http://doi.org/10.1107/S0907444904019109
Bernd, A. S., Aihara, M., Lindsey, J. D., & Weinreb, R. N. (2004). Influenza del peso molecolare sul movimento del destrano intracamerale verso il segmento posteriore dell’occhio del topo. Investigative Opthalmology & Visual Science, 45(2), 480. http://doi.org/10.1167/iovs.03-0462
Shawgo, R. S. (2004). Attivazione in vivo e biocompatibilità di un dispositivo MEMS a microserbatoio per la somministrazione di farmaci. Consultato il 16 novembre 2016, da https://dspace.mit.edu/handle/1721.1/17678
Sturbaum, G. D., Reed, C., Hoover, P. J., Jost, B. H., Marshall, M. M., & Sterling, C. R. (2001). Rilevamento di singole oocisti di Cryptosporidium parvum mediante PCR nested specifica per specie e polimorfismo della lunghezza dei frammenti di restrizione. MICROBIOLOGIA APPLICATA E AMBIENTALE, 67(6), 2665–2668. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11375178
Nelson, B. P., Grimsrud, T. E., Liles, M. R., Goodman, R. M., & Corn, R. M. (n.d.) (2001). Misurazioni di imaging della risonanza plasmonica di superficie dell’adsorbimento per ibridazione di DNA e RNA su microarray di DNA. https://doi.org/10.1021/ac0010431

15867
40500
503301
SKU multipli
SKU multipli
SKU multipli
TBS
Le siringhe hanno un'ampia gamma di applicazioni in laboratorio, grazie alla loro capacità di misurare e dispensare liquidi con precisione. Tra gli usi più comuni in laboratorio rientrano il trasferimento di volumi precisi di campioni liquidi da un contenitore a un altro per diluizioni, miscelazioni, preparazione di reagenti ed estrazione di campioni. Potresti usarle per tecniche analitiche come la cromatografia (ad esempio la cromatografia liquida ad alte prestazioni (HPLC) o la gascromatografia), la spettrofotometria e la titolazione. Le siringhe sono spesso impiegate per dosare e somministrare con precisione i reagenti durante le reazioni chimiche e i processi di sintesi, oppure nella ricerca nelle scienze della vita per aspirare terreni di coltura, aggiungere fattori di crescita o nutrienti e trasferire cellule. Nella ricerca medica e veterinaria, le siringhe vengono usate per iniettare o infondere farmaci, vaccini o agenti di contrasto in modelli animali o colture cellulari. I ricercatori possono usare siringhe da laboratorio per raccogliere campioni liquidi, in particolare nel monitoraggio ambientale, nell'analisi della qualità dell'acqua o nella raccolta di campioni biologici. Nelle applicazioni microfluidiche e nei sistemi lab-on-a-chip, le siringhe sono ideali per controllare con precisione i volumi dei fluidi e le portate.
Sta andando a ruba!
Prendilo finché sei in tempo.