Scatola per strumenti di microiniezione

Sistema di microiniezione

Il sistema illustrato comprende componenti spesso scelti dai ricercatori:

  1. MICRO-ePUMP Pompa pneumatica PicoPump con penetratore cellulare MICRO-ePORE™ integrato, per agevolare le microiniezioni
  2. SU-P1000 Estrattore di micropipette
  3. M4C Supporto
  4. M3301R Micromanipolatore
  5. PZMTIII Microscopio con base illuminata opzionale, specchio orientabile, fotocamera PRO-300 HDS opzionale e schermo di visualizzazione
  6. E2XX  Contenitore per conservare micropipette
  7. Z-MOLDS Stampi per microiniezione e trapianto
  8. 14003-G Forbici a molla Vannas
  9. Capillari di vetro
  10. 77020 Pinzette in vetro
  11. FluoroDish Piastre di coltura con fondo in vetro ottico

Qualunque siano le tue esigenze, WPI offre un'ampia gamma di apparecchiature per soddisfarle.

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Al servizio degli scienziati con strumenti affidabili

Da oltre 50 anni al servizio della comunità scientifica, WPI offre diversi strumenti per la microiniezione, tra cui pompe, pipettatori, microscopi e altro ancora. Una delle nostre pompe per microiniezione più apprezzate è la pompa pneumatica PicoPump PV850.

PV850, PV830, uPump e MICRO-ePUMP sono stati progettati per semplificare l'iniezione intracellulare. Consentono microiniezioni ripetibili con volumi che vanno dai picolitri ai nanolitri. Il volume iniettato è controllato dal diametro interno della punta di vetro, dalla pressione e dal tempo.

  • PV850 offre pressione di espulsione e di mantenimento. La pressione di mantenimento impedisce il riempimento della pipetta per capillarità, garantendo iniezioni ripetibili.
  • Inoltre, PV830 dispone anche di pressione negativa, che consente di trattenere saldamente una cellula con una pipetta mentre la si inietta con un'altra. 
  • uPUMP e MICRO-ePUMP dispongono di una sorgente di pressione integrata, che elimina la necessità di un'alimentazione di pressione esterna. MICRO-ePUMP con penetratore cellulare integrato e sorgente di pressione interna è ideale per l'iniezione intracellulare. Il penetratore cellulare eroga un segnale di tensione altamente localizzato sul sito di iniezione desiderato, facilitando la penetrazione con un trauma minimo.

WPI offre un sistema di microiniezione personalizzabile, dotato di tutto ciò che serve per iniziare. Qui è illustrato il sistema di base. Di seguito troverai numerose opzioni e accessori per personalizzare il tuo sistema.

 

Opzioni

Puoi personalizzare il tuo sistema usando le seguenti opzioni:

MICROSCOPI

  • PZMIII Microscopio stereoscopico zoom di precisione con supporto su binario
  • PZMIV Microscopio stereoscopico zoom di precisione con supporto su binario
  • PZMIII-MI Microscopio stereoscopico con base illuminata a LED e specchio orientabile
  • 504928 Supporto per microscopio con illuminazione a LED, 12.5"
  • 504929 Supporto per microscopio con illuminazione a LED, 10.5"
  • 504596 Supporto per microscopio con illuminazione alogena

INIETTORE

  • PV850 PicoPump pneumatico con pressione di mantenimento
  • PV830 PicoPump pneumatico con pressione di mantenimento e vuoto
  • uPump PicoPump pneumatico con compressore integrato
  • MICRO-ePUMP con compressore integrato e penetratore cellulare MICRO-ePORE™ per facilitare le microiniezioni
  • UMPIII UltraMicroPump
  • Nanoliter2020 Iniettore

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MANIPOLATORE

  • KITE Micromanipolatore manuale
  • M3301 Micromanipolatore manuale

ESTRATTORE

  • PUL-1000 Estrattore programmabile di pipette
  • SU-P30 Estrattore verticale di pipette
  • SU-P97 Estrattore di pipette Flaming/Brown
  • SU-P1000 Estrattore di micropipette

ACCESSORI

Siringa NanoFil
Sistema UMP3
Nanoliter 2020
Il Sistema di iniezione con siringa dal volume morto più basso al mondo (2.7µL) quando si utilizza la siringa NanoFil da 10μL con gli aghi WPI da 33-36g. È disponibile con aghi di varie dimensioni, da 26 ga. a 36 ga. Sono disponibili applicazioni di ricerca versatili, inclusi i kit RPE e IO. Sono disponibili forme di ago personalizzate: smussate, appuntite, bisellate. UMP3 è una pompa a siringa motorizzata compatibile con siringhe da 0.5μL–1mL. Con una siringa da 10μL, il volume minimo effettivo è 5–25nL. Per un controllo intuitivo e intelligente, UMP3 si abbina al controller Micro4. L’iniettore nanolitri NANOLITER2020, controllato da microprocessore e dotato di controller SMARTouch, utilizza l’iniezione a spostamento positivo, eliminando la necessità di calibrare la pipetta. Il sistema utilizza micropipette di vetro.

 

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Riferimenti

Warmerdam, T., Schröder, F., Wit, H., & Albers, F. (s.d.). Pressioni perilinfatiche ed endolinfatiche durante l’idrope endolinfatica. European Archives of Oto-Rhino-Laryngology, 260(1), 9–11. http://doi.org/10.1007/s00405-002-0518-2 

Wei, J., Song, J., Jiang, S., Zhang, G., Wheeler, D., Zhang, J., … Liu, R. (2017). Ruolo della pressione intratubulare durante la fase ischemica nell’insufficienza renale acuta. American Journal of Physiology - Renal Physiology, 312(6), F1158–F1165. http://doi.org/10.1152/ajprenal.00527.2016 

Petrie, R. J., Koo, H., & Yamada, K. M. (2014). La generazione di pressione compartimentalizzata da parte di un pistone nucleare regola la motilità cellulare in una matrice 3D. Science, 345(6200), 1062–1065. http://doi.org/10.1126/science.1256965 

Petrie, R. J., Koo, H., & Yamada, K. M. (2014). La generazione di pressione compartimentalizzata da parte di un pistone nucleare regola la motilità cellulare in una matrice 3D. Science (New York, N.Y.), 345(6200), 1062–5. http://doi.org/10.1126/science.1256965 

Petrie, R. J., & Koo, H. (2014). Misurazione diretta della pressione intracellulare. Current Protocols in Cell Biology / Editorial Board, Juan S. Bonifacino ... [et Al.], 63, 12.9.1-9. http://doi.org/10.1002/0471143030.cb1209s63 

Pacella, J. J., Kameneva, M. V, Brands, J., Lipowsky, H. H., Vink, H., Lavery, L. L., & Villanueva, F. S. (2012). Modulazione della pressione arteriolare precapillare con polimeri che riducono la resistenza viscosa: un nuovo metodo per migliorare la perfusione microvascolare. Microcirculation (New York, N.Y. : 1994), 19(7), 580–5. http://doi.org/10.1111/j.1549-8719.2012.00190.x 
Park, J. J.-H., Boeven, J. J., Vogel, S., Leonhardt, S., Wit, H. P., & Westhofen, M. (2012). Pressione idrostatica del fluido nell'organo vestibolare della cavia. European Archives of Oto-Rhino-Laryngology, 269(7), 1755–1758. http://doi.org/10.1007/s00405-011-1813-6 

Pressione microvascolare epatica durante lo shock anafilattico nei ratti anestetizzati. (2009). Microvascular Research, 78(2), 169–173. http://doi.org/10.1016/J.MVR.2009.06.007 

Valk, W. L., Wit, H. P., & Albers, F. W. J. (2006). Rottura della membrana di Reissner durante l'idrope endolinfatica acuta nella cavia: un modello per la malattia di Ménière? Acta Oto-Laryngologica, 126(10), 1030–1035. http://doi.org/10.1080/00016480600621722 

Kopp, R., Schwerte, T., & Pelster, B. (2005). Prestazioni cardiache nel mutante zebrafish breakdance. The Journal of Experimental Biology, 208(Pt 11), 2123–34. http://doi.org/10.1242/jeb.01620 

Lucitti, J. L., Tobita, K., & Keller, B. B. (2005). Emodinamica arteriosa e proprietà meccaniche dopo un intervento circolatorio nell’embrione di pollo. The Journal of Experimental Biology, 208, 1877–1885. http://doi.org/10.1242/jeb.01574 

Comprendere la fisiologia cardiovascolare nelle larve di pesce zebra e Xenopus: l’uso di microtecniche. (2003). Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology, 135(1), 131–145. http://doi.org/10.1016/S1095-6433(03)00044-8 

Hu, N., Yost, H. J., & Clark, E. B. (2001). Morfologia cardiaca e pressione arteriosa nel pesce zebra adulto. The Anatomical Record, 264(1), 1–12. Retrieved from http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11505366 

Ishii, T., Kuwaki, T., Masuda, Y., & Fukuda, Y. (2001). Sviluppo postnatale della pressione arteriosa e del baroriflesso nei topi. Autonomic Neuroscience : Basic & Clinical, 94(1–2), 34–41. http://doi.org/10.1016/S1566-0702(01)00339-3 

Hu, N., Sedmera, D., Yost, H. J., & Clark, E. B. (2000). Struttura e funzione del cuore in via di sviluppo del pesce zebra. The Anatomical Record, 260(2), 148–57. Retrieved from http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10993952 

Kelly, S. M., & Macklem, P. T. (1991). Misurazione diretta della pressione intracellulare. The American Journal of Physiology, 260(June), C652–C657. http://doi.org/10.1002/0471143030.cb1209s63 

Gradiente prossimodistale della pressione del fluido endoneuriale. (1988). Experimental Neurology, 102(3), 368–370. http://doi.org/10.1016/0014-4886(88)90233-6 

Tanner, C., Frambach, D. A., & Misfeldt, D. S. (1983). Trasporto transepiteliale in coltura cellulare. Analisi teorica e sperimentale delle proprietà biofisiche dei domi. Biophysical Journal, 43(2), 183–90. http://doi.org/10.1016/S0006-3495(83)84339-2 

Rabito, C. A., Tchao, R., Valentich, J., & Leighton, J. (1980). Effetto dell’interazione cellula-substrato sulla formazione di emicisti da parte delle cellule MDCK. In Vitro, 16(6), 461–8. Retrieved from http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/6248454 

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    WPI offre diversi tipi di pompe, oltre a siringhe speciali, telai stereotassici, capillari di vetro e aghi. Qui presenteremo le nostre pompe per microiniezione. Il sistema da scegliere dipende dalle dimensioni delle aliquote da iniettare, dal volume da iniettare e dalle dimensioni dell’ago o della punta in vetro scelti. I prodotti descritti di seguito sono elencati in ordine crescente in base al volume minimo iniettabile. Consulta la tabella comparativa qui sotto o i link agli articoli correlati in fondo.