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UMP3-1
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デジタルコントローラーを搭載したUltraMicroPump IIIは、25nLという微量の注入を繰り返し行うことができます。シリンジは外部で充填してからポンプに挿入するか、ポンプに装着したまま前方から充填することが可能です。
WPIのNanoFilをはじめとする、主要な市販のガラスマイクロリットルシリンジすべてに対応しています。™、Hamilton、SGE、ILSのシリンジ。
**最高のガス密閉性とゼロデッドボリュームを実現するために、WPIの NanoFil™シリンジ と ニードル システムをぜひご覧ください。 なぜ 当社のシリンジシステムが 画期的な存在なのか 制御されたサンプルターゲティングにおいて— 独自の クラスを超えたデザインである理由を学びましょう。.
| 注文コード | 説明 |
| UMP3 | コントローラーなし単一のUMP3ポンプヘッドのみ |
| UMP3-1 | コントローラー付き単一のUMP3ポンプ |
| UMP3-2 | コントローラー付き2台のUMP3ポンプ |
| UMP3-3 | コントローラー付き3台のUMP3ポンプ |
| UMP3-4 | コントローラー付き4台のUMP3ポンプ |
| SYS-MICRO4 | 4チャネルコントローラーのみ |
注意:UMP3マイクロインジェクションシリンジポンプはポンプヘッドのみを含みます。コントローラーについてはMicro4を参照してください。
デジタルコントローラーを備えたUltraMicroPump IIIは、シリンジピストンの1ステップあたり600ピコリットル(0.5μLシリンジ使用)という微量の分注が可能です。シリンジは外部で充填してからポンプに挿入するか、ポンプに装着したまま充填できます。注入または吸引される液体はすべてマイクロシリンジ内に保持され、マイクロポンプ内の液体デッドボリュームを低く保ちます。
位置決めには、UltraMicroPump IIIをM3301(手動)、DC3001(モーター駆動)、または任意の手動ステレオタクシックマニピュレーターなど、いくつかのWPIマイクロポジショナーに取り付けることができます。
UMPIIIマイクロインジェクションシリンジポンプシステムの重要な構成要素は、最大4台のシリンジポンプに対して「インテリジェント」で使いやすいインターフェースを提供するマイクロプロセッサベースのコントローラーMICRO4です。操作パラメーターはメンブレンキーパッドとLCDディスプレイで設定します。キーパッドから以下の機能を選択できます:
ユーザーのパラメーターはコントローラーの「不揮発性」メモリに保存でき、電源を入れたときに即座に呼び出せます。オプションのフットスイッチはコントローラー背面のコネクターに接続して「ハンズフリー」の開始/停止操作が可能です。
コントローラーの背面にあるRS-232ポートを使用して、コンピューター制御プログラムと接続できます。
この 503207 キットは以下に示すようにUMP3マイクロインジェクションシリンジポンプでの作業に最適です。

以下の画像は、マイクロインジェクションのさまざまなセットアップを示しています。部品は交換可能であることを覚えておいてください。例えば:


シリンジ容量計算スプレッドシート- UMP3、DMP、MMP、またはPV820/PV830を使用する際のシリンジ容量を計算するためにこの.XLSスプレッドシートを使用してください。
| 総ステップ数 | 20,000(63mm移動) |
| 最小分注量 | 25nL |
| 1ステップあたりの直線移動量 | 3.175μm |
| 重量 | 325g (11.5オンス) |
| 取り付けロッド直径 | 7.9mm (0.31インチ) |
| コントローラ電源要件 | 2A、12VDC |
| 寸法 | Ø32mm x 190mm (1.3インチ x 7.5インチ) |
精度が8倍に向上しました。
Zhou, Z., Luther, N., Singh, R., Boockvar, J. A., Souweidane, M. M., & Greenfield, J. P. (2017). グリオブラストーマスフェロイドはラット脳幹に浸潤性グリオーマを形成する。Child’s Nervous System, 1–10. http://doi.org/10.1007/s00381-017-3344-y
Ye, H.-L., Li, D.-R., Yang, J.-S., Chen, D.-F., De Vos, S., Vuylsteke, M., … Yang, W.-J. (2017). 単為生殖性アルテミアにおける休眠ホルモン受容体様遺伝子の分子特性と機能解析。Peptides. http://doi.org/10.1016/j.peptides.2017.01.008
Wofford, K. L., Harris, J. P., Browne, K. D., Brown, D. P., Grovola, M. R., Mietus, C. J., … Cullen, D. K. (2017). 豚のびまん性外傷性脳損傷後に損傷ニューロンに局在する迅速な神経炎症反応。Experimental Neurology, 290, 85–94. http://doi.org/10.1016/j.expneurol.2017.01.004
Qi, Y., Purtell, L., Fu, M., Zhang, L., Zolotukhin, S., Campbell, L., & Herzog, H. (2017). 視床下部特異的にSnord116を再導入したSnord116欠損マウスはエネルギー消費が増加した。Journal of Neuroendocrinology. http://doi.org/10.1111/jne.12457
Mosberger, A. C., Miehlbradt, J. C., Bjelopoljak, N., Schneider, M. P., Wahl, A.-S., Ineichen, B. V., … Schwab, M. E. (2017). 切断された皮質脊髄ニューロンは上位損傷部位の神経支配を増加させ、両側ピラミド切断後の熟練した到達動作に依然として重要である。Cerebral Cortex, 137, 1716–1732. http://doi.org/10.1093/cercor/bhw405
Job, M. O., & Kuhar, M. J. (2017). 核心核におけるCARTペプチドは精神刺激薬を調節する:精神刺激薬とCARTペプチド効果の相関。Neuroscience, 348, 135–142. http://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2017.02.012
Eleftheriadou, I., Dieringer, M., Poh, X. Y., Sanchez-Garrido, J., Gao, Y., Sgourou, A., … Mazarakis, N. D. (2017). チクングニアウイルスエンベロープで偽装したレンチウイルスベクターによる星状細胞および神経細胞中枢神経系サブポピュレーションの選択的導入。Biomaterials, 123, 1–14. http://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2017.01.023
Augestad, I. L., Nyman, A. K. G., Costa, A. I., Barnett, S. C., Sandvig, A., Håberg, A. K., & Sandvig, I. (2017). 成人ラットの一過性局所脳虚血後の組織再構築に対する神経幹細胞と嗅覚包埋細胞の共移植の効果。Neurochemical Research, 1–11. http://doi.org/10.1007/s11064-016-2098-3
Lin, P., Fang, Z., Liu, J., & Lee, J. H. (2016). オプトジェネティクス機能的MRI。Journal of Visualized Experiments, (110), e53346–e53346. http://doi.org/10.3791/53346
Vacca, O., El Mathari, B., Darche, M., Sahel, J.-A., Rendon, A., & Dalkara, D. (2015). 疾患における網膜バリア研究のためのアデノ随伴ウイルスの利用。Journal of Visualized Experiments, (98), e52451–e52451. http://doi.org/10.3791/52451
Lai, J., Legault, M.-A., Thomas, S., & Casanova, C. (2015). 齧歯類脳における同時電気生理学的記録と抑制剤の微小注入。Journal of Visualized Experiments, (101), e52271–e52271. http://doi.org/10.3791/52271
Robinson, S., & Adelman, J. S. (2015). 学習の特定段階における齧歯類の神経活動を遠隔で抑制する方法。Journal of Visualized Experiments, (100), e52859–e52859. http://doi.org/10.3791/52859
Platt, R. J., Chen, S., Zhou, Y., Yim, M. J., Swiech, L., Kempton, H. R., … Zhang, F. (2014). ゲノム編集とがんモデル作製のためのCRISPR-Cas9ノックインマウス。Cell, 159(2), 440–55. http://doi.org/10.1016/j.cell.2014.09.014
Pierce, A. M., & Keating, A. K. (2014). 人間脳腫瘍の解剖学的に正確で再現可能な頭蓋内異種移植の作成。Journal of Visualized Experiments, (91), e52017–e52017. http://doi.org/10.3791/52017
Paveliev, M., Kislin, M., Molotkov, D., Yuryev, M., Rauvala, H., & Khiroug, L. (2014). マウスの急性脳外傷後の縦断的二光子イメージング。Journal of Visualized Experiments : JoVE, (April), 1–8. http://doi.org/10.3791/51559
Nakamura, S., Baratta, M. V., & Cooper, D. C. (2013). 個々の錐体ニューロンの高忠実度オプトジェネティック制御の方法 In vivo Journal of Visualized Experiments, (79), e50291–e50291. http://doi.org/10.3791/50291
Inquimbert, P., Moll, M., Kohno, T., & Scholz, J. (2013). マウス脊髄における条件付き遺伝子操作のためのウイルスベクターの立体定位注射。Journal of Visualized Experiments, (73), e50313–e50313. http://doi.org/10.3791/50313
Hewing, N. J., Weskamp, G., Vermaat, J., Farage, E., Glomski, K., Swendeman, S., … Blobel, C. P. (2013). TIMP3またはEGFR阻害剤エルロチニブの硝子体内注射は、マウスの酸素誘発性網膜症からの保護を提供する。Investigative Ophthalmology & Visual Science, 54(1), 864–70. http://doi.org/10.1167/iovs.12-10954
Salt, A. N., Hartsock, J. J., Gill, R. M., Piu, F., & Plontke, S. K. (2012). 側半規管で適用および採取されたマーカーとデキサメタゾンの周リンパ薬物動態。Journal of the Association for Research in Otolaryngology, 13(6), 771–783. http://doi.org/10.1007/s10162-012-0347-y
Nickerson, J. M., Goodman, P., Chrenek, M. A., Bernal, C. J., Berglin, L., Redmond, T. M., & Boatright, J. H. (2012). 色素性および非色素性成体マウス眼における網膜下投与および電気穿孔法。Methods in Molecular Biology (Clifton, N.J.), 884, 53–69. http://doi.org/10.1007/978-1-61779-848-1_4
Beier, K., & Cepko, C. (2012). 遺伝的に定義された神経回路のウイルストレーシング。Journal of Visualized Experiments, (68), e4253–e4253. http://doi.org/10.3791/4253
Goel, M., Sienkiewicz, A. E., Picciani, R., Wang, J., Lee, R. K., & Bhattacharya, S. K. (2012). コクリン、眼圧調節および機械感知。PloS One, 7(4), e34309. http://doi.org/10.1371/journal.pone.0034309
Abdelwahab, M. G., Sankar, T., Preul, M. C., & Scheck, A. C. (2011). マウス膠芽腫の3Din vivo生物発光イメージングを伴う頭蓋内移植。Journal of Visualized Experiments, (57), e3403–e3403. http://doi.org/10.3791/3403
Lowery, R. L., & Majewska, A. K. (2010). アデノ随伴ウイルスベクターの頭蓋内注射。Journal of Visualized Experiments, (45), e2140–e2140. http://doi.org/10.3791/2140
Kinkel, M. D., Eames, S. C., Philipson, L. H., & Prince, V. E. (2010). 成体ゼブラフィッシュへの腹腔内注射。Journal of Visualized Experiments : JoVE, (42), e2126. http://doi.org/10.3791/2126
Molotkov, D. A., Yukin, A. Y., Afzalov, R. A., & Khiroug, L. S. (2010). 非脳室プラスミド注射および電気穿孔による出生後ラット脳への遺伝子導入。Journal of Visualized Experiments, (43), e2244–e2244. http://doi.org/10.3791/2244
Marker, D. F., Tremblay, M.-E., Lu, S.-M., Majewska, A. K., & Gelbard, H. A. (2010). 神経炎症モデルにおけるマウスミクログリアの慢性二光子in vivoイメージングのための薄骨窓技術。Journal of Visualized Experiments, (43), e2059–e2059. http://doi.org/10.3791/2059
Eames, S. C., Philipson, L. H., Prince, V. E., & Kinkel, M. D. (2010). ゼブラフィッシュにおける血糖測定が示すグルコース恒常性の動態。Zebrafish, 7(2), 205–13. http://doi.org/10.1089/zeb.2009.0640
Jasnow, A. M., Rainnie, D. G., Maguschak, K. A., Chhatwal, J. P., & Ressler, K. J. (2009). 光学的に電気生理学的記録を誘導し、標的遺伝子導入のための細胞型特異的プロモーターレンチウイルスの構築 (pp. 199–213). http://doi.org/10.1007/978-1-59745-559-6_13
Christiana J. Johnson、Lennart Berglin、Micah A. Chrenek、T.M. Redmond、Jeffrey H. Boatright、J. M. N. (2008). 技術概要:成体マウスの眼への網膜下注射および電気穿孔。Molecular Vission, 14, 2211–2226. 取得元 http://www.molvis.org/molvis/v14/a259/
高山、K.、トラシマ、T.、堀内、H.、&平井、H. (2008). マウス幹細胞ウイルスプロモーターを用いたレンチウイルスベクターによるプルキンエ細胞優先的導入。Neuroscience Letters (Vol. 443).
トラシマ、T.、山田、N.、伊藤、M.、山本、A.、&平井、H. (2006). レンチウイルスベクターを亜中性pHに曝露すると、トロピズムがプルキンエ細胞からベルグマン膠細胞へ変化する。European Journal of Neuroscience, 24(2), 371–380. http://doi.org/10.1111/j.1460-9568.2006.04927.x
トラシマ、T.、岡山、S.、西崎、T.、&平井、H. (2006). HIV由来レンチウイルスベクターによるマウス小脳プルキンエ細胞の生体内導入。Brain Research, 1082(1), 11–22. http://doi.org/10.1016/j.brainres.2006.01.104
ダンクーズ、N.、バーベイ、S.、フロスト、S. B.、プラウツ、E. J.、チェン、D.、ズビナ、E. V、…ヌド、R. J. (n.d.) (2005). 発達/可塑性/修復 脳損傷後の広範な皮質再配線。 https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.3256-05.2005
チェレゾフ、V.、ペディ、A.、ムトゥスブラマニアム、L.、ジェン、Y. F.、&カフリー、M. (2004). 脂質中間相における膜タンパク質および可溶性タンパク質の結晶化のためのロボットシステム。Acta Crystallographica Section D Biological Crystallography, 60(10), 1795–1807. http://doi.org/10.1107/S0907444904019109
バーンド、A. S.、相原、M.、リンジー、J. D.、&ワインレブ、R. N. (2004). 分子量がマウス眼の後部セグメントへの前房内デキストラン移動に与える影響。Investigative Opthalmology & Visual Science, 45(2), 480. http://doi.org/10.1167/iovs.03-0462
ショーゴ、R. S. (2004). 生体内でのMEMSマイクロリザーバー薬物送達装置の活性化と生体適合性。2016年11月16日取得、出典 https://dspace.mit.edu/handle/1721.1/17678
スターバウム、G. D.、リード、C.、フーバー、P. J.、ヨスト、B. H.、マーシャル、M. M.、&スターリング、C. R. (2001). 種特異的なネストPCR-制限断片長多型による単一Cryptosporidium parvumオーシストの検出。APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY, 67(6), 2665–2668. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11375178
ネルソン、B. P.、グリムスルド、T. E.、ライルズ、M. R.、グッドマン、R. M.、&コーン、R. M. (n.d.) (2001). DNAマイクロアレイへのDNAおよびRNAハイブリダイゼーション吸着の表面プラズモン共鳴イメージング測定。 https://doi.org/10.1021/ac0010431

シリンジは液体を正確に計量・分注できるため、実験室で幅広く使用されています。一般的な用途には、希釈、混合、試薬調製、サンプル抽出のために液体サンプルを一つの容器から別の容器へ正確な量を移すことが含まれます。クロマトグラフィー(高性能液体クロマトグラフィー(HPLC)やガスクロマトグラフィーなど)といった分析技術にも使用されることがあります。 分光光度法や滴定法などで使用されます。シリンジは、化学反応や合成プロセス中の試薬の正確な投与や供給、またはライフサイエンス研究において培地の吸引、成長因子や栄養素の添加、細胞の移送に頻繁に使われます。医療および獣医学研究では、シリンジは動物モデルや細胞培養への薬物、ワクチン、造影剤の注射や注入に使用されます。研究者は環境モニタリング、水質分析、生物学的サンプル収集などで液体サンプルを採取するために実験用シリンジを利用できます。マイクロ流体応用やラボオンチップシステムでは、シリンジは流体の体積や流量を精密に制御するのに最適です。
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