Le cellule produttrici di insulina derivate da cellule stromali mesenchimali del midollo osseo umano adulto potrebbero controllare il diabete indotto chimicamente nei cani: uno studio preliminare. Gabr MM, Zakaria MM, Refaie AF, Ismail AM, Khater SM, Ashamallah SA, Azzam MM, Ghoneim MA. Cell Transplantation 1-11. DOI: 10.1177/0963689718759913
Massa funzionale di cellule beta ottenuta da endoderma pancreatico derivato da hESC e incapsulato in un dispositivo, con conseguente controllo metabolico. Robert T, De Mesmaeker I, Stange GM, Suenens KG, Ling Z, Kroon EJ, Pipeleers DG. j.stemcr.2018.01.040. doi.org/10.1016.
Macrocapsula porosa in poliammide stampata in 3D, combinata con microcapsule di alginato per terapie cellulari più sicure. Saenz del Burgo L, Ciriza J, Espona-Noguera A, Illa X, Cabruja E, Orive G, Hernandez RM, Villa R, Pedraz JL, Alvarez M. Scientific Reports (2018) 8:8512. DOI:10.1038/s41598-018-26869-5.
Terapie con cellule staminali per il trattamento del diabete: progressi e sfide ancora aperte. Sneddon JB, Tang Q, Stock P, Bluestone JA, Roy S, Desai T, Hebrok M. j.stem.2018.05.016. https://doi.org/10.1016.
Tessuto ovarico allogenico incapsulato in polietilenglicole-vinil solfone sintetico (PEG-VS) e TheraCyte isolano immunologicamente il tessuto ovarico allogenico e ripristinano la funzione endocrina nei topi ovariectomizzati. David A, Day JR, Cichon A, Lefferts A, Cascalho M, Shikanov A. Tissue Engineering Part A Vol 22: S150-S150.
Il recettore del fattore stimolante le colonie 1 è una componente centrale della risposta ai corpi estranei agli impianti di biomateriali nei roditori e nei primati non umani. Doloff JC, Veiseh O, Vegas AJ, Tam HH, Farah S, Ma M, Li J, et al. Nature materials 16 (6): 671-680. doi:10.1038/nmat4866.
Incapsulamento delle isole: possibilità e limiti fisiologici. Korsgren O. Diabetes 2017 Jul; 66(7): 1748-1754. https://doi.org/10.2337/db17-0065.
Xenotrapianto da suino a primate: passato, presente e futuro. Liu Z, Hu W, He T, Dai Y, Hara H, Bottino R, Cooper DKC, Cai Z, Mou L. Cell Transplant. 2017 Jun; 26(6): 925–947. doi: 10.3727/096368917X694859
Modulazione di CXCL12 delle risposte immunitarie localizzate alla macroincapsulazione sottocutanea delle isole. [abstract]. Penson M, Sremac M, Sirbulescu R, Brauns T, Harrington F, Poznansky M. Am J Transplant. 2017; 17 (suppl 3).
Tolleranza localizzata e sviluppo di un sito di trapianto alternativo per il trattamento del diabete di tipo 1. Skoumal, MJ. Tesi di dottorato, Università del Michigan. ORCID ID: 0000-0001-6993-7369.
Macroincapsulamento di isole pancreatiche mediante membrane porose con micro-pozzetti. Skrzypek K, Nibbelink MG, vanLente J, Buitinga M, Engelse MA, deKoning EJP, Karperien M, vanApeldoorn A, Stamatialis D. Scientific Reports volume 7, numero dell'articolo: 9186(2017)
Considerazioni per una terapia efficace delle cellule beta incapsulate. Thanos CG, Gaglia JL, Pagliuca FW. Terapia cellulare, medicina molecolare e traslazionale, DF Emerich e G Orive (a cura di). DOI 10.1007/978-3-319-57153-9_2.
Il co-incapsulamento e il co-trapianto di cellule staminali mesenchimali riducono la fibrosi pericapsulare e migliorano la sopravvivenza e la funzionalità delle isole incapsulate in caso di allotrapianto. Vaithilingam V, Evans MDM, Lewy DM, Bean PA, Bal S, Tuch BE Scientific Reports volume 7, Article number: 10059(2017). doi:10.1038/s41598-017-10359-1.
73 cellule staminali adulte Sox 10+ contribuiscono all’incapsulamento dei biomateriali e alla microvascolarizzazione. Wang D, Wang A, Wu F, Qiu X, Li Y, Chu J, Huang W-C, Xu K, Gong X, Li S. Sci Rep. 2017; 7: 40295. doi: 10.1038/srep40295.
La possibile nomenclatura dei prodotti incapsulati [abstract]. Wani TA, Masoodi FA, Wani IA. Food Chem. 2017 Nov 1;234:119-120. doi:10.1016/j.foodchem.2017.04.121.
Dispositivi idrogel robusti, realizzati con nanofibre, per l’incapsulamento e la somministrazione di isole, An D, Ma M. Front. Bioeng. Biotechnol. Conference Abstract: 10th World Biomaterials Congress. doi: 10.3389/conf.FBIOE.2016.01.02609.
La sopravvivenza delle isole incapsulate: molto più che una questione di membrana. Barkai U, Rotem A, deVos P. World J Transplant 2016 March 24; 6(1): 69-90. ISSN 2220-3230.
L’ipotiroidismo compromette la maturazione delle cellule progenitrici pancreatiche derivate da cellule staminali umane nei topi. Bruin JE, Saber N, O’Dwyer S, Fox JK, Mojibian M, Arora P, Rezania A, Kieffer TJ. Diabetes 2016;65:1297–1309. DOI: 10.2337/db15-1439.
I componenti dell’inflammasoma ASC e AIM2 modulano la fase acuta delle risposte da corpo estraneo indotte dall’impianto di biomateriali. Christo SN, Diener KR, Manavis J, Grimbaldeston MA, Bachhuka A, Vasilev K, Hayball JD. Sci Rep. 2016; 6: 20635.
Progressi nel trapianto clinico di xenotrapianti di isole incapsulate. Cooper DKC, Matsumoto S, Abalovich A, Itoh T, Mourad NI, Gianello PR, Wolf E, Cozzi E. Transplantation. 2016 Nov; 100(11): 2301–2308. doi: 10.1097/TP.0000000000001371.
Fonti per la sostituzione delle cellule beta nel diabete di tipo 1: focus sulle cellule duttali pancreatiche. Corritore E, Lee Y-S, Sokal EM, Lysy PA. Ther Adv Endocrinol Metab 2016, Vol. 7(4) 182–199. DOI: 10.1177/ 2042018816652050.
Immunoisolamento per prevenire il rigetto degli innesti tissutali: conoscenze attuali e utilizzi futuri. David A, Day J, Shikanov A. Exp Biol Med (Maywood). 2016 May; 241(9): 955–961. doi: 10.1177/1535370216647129.
Valutazione dell’isolamento immunitario di cellule progenitrici pancreatiche murine allogeniche mediante un dispositivo di macroincapsulamento. Faleo G, Lee K, Nguyen V, Tang Q. World J Diabetes. Nov 15, 2016;7(19): 523-533. doi: 10.4239/wjd.v7.i19.523.
L’impianto di pseudoisole di cellule beta umane 1-1B4 migliora il controllo glicemico nei topi diabetici con immunodeficienza combinata grave. Green AD,Vasu S, McClenaghan NH, Flatt PR. World J Diabetes.Nov 15, 2016;7(19): 523-533. doi: 10.4239/wjd.v7.i19.523.
Progressi e sfide del pancreas bioartificiale. Hwang PTJ, Shah DK, Garcia JA, Bae CY, Lim D-J, Huiszoon RC, Alexander GC, Jun H-W. Nano Convergence20163:28. https://doi.org/10.1186/s40580-016-0088-4.
Nanomateriali e medicina rigenerativa [textbook]. Lin Y, Gong T (curatori). IAPC Publishing, Zagabria, Croazia, 2016.
Terapie cellulari per il ripristino delle cellule beta pancreatiche. Okere B, Lucaccioni L, Dominici M, Lughetti L. Italian Journal of Pediatrics 2016 42:62. https://doi.org/10.1186/s13052-016-0273-4.
Breve rassegna: marcatori per valutare gli impianti derivati da cellule staminali umane come sostituti delle cellule B nel diabete di tipo 1. Pipeleers D, Robert T, DeMesmaeker I, Ling Z. Stem Cells Translational Medicine AlphaMed Press 1066-5099/2016. http://dx.doi.org/10.5966/sctm.2015-0187.
Progressi e sfide negli approcci di macroincapsulamento per il trattamento del diabete di tipo 1 (T1D): cellule, biomateriali e dispositivi. Song S and Roy S. Biotechnol Bioeng. 2016 Jul; 113(7): 1381–1402. doi: 10.1002/bit.25895.
Controllo glicemico a lungo termine con cellule B derivate da cellule staminali umane, incapsulate in polimeri, in topi immunocompetenti. Vegas A, Veiseh O, Gurtler M, Millman JR, Pagliuca FW, Bader AR, Doloff JC, Li J, Chen M, Olejnik K, Tam HH, Jhunjhunwala S, Langan et al. Nat Med. 2016 March ; 22(3): 306–311. doi:10.1038/nm.4030.
Caratterizzazione quantitativa del collagene nella capsula fibrotica che circonda microparticelle polimeriche impiantate mediante imaging a generazione di seconda armonica. Akilbekova D, Bratlie KM. PLoS ONE 10(6): e0130386. doi:10.1371/journal.pone.0130386.
Risposta dell'ospite ai biomateriali: impatto della risposta dell'ospite sulla scelta dei biomateriali. Badylak, SF. New York, NY: Academic Press, 2015. 470 pp.
Tessuto pancreatico trapiantato in dispositivi di incapsulamento TheraCyte è protetto e previene l'iperglicemia in un modello murino di diabete immunomediato. Boettler T, Schneider D, Cheng Y, Kadoya K, von Herrath M. Cell Transplantation 08/2015; 25(3). DOI: 10.3727/096368915X688920.
Immunità innata e biomateriali al crocevia: amici o nemici? Christo SN, Diener KR, Bachhuka A, Vasilev K, Hayball JD. BioMed Research International Volume 2015, Articolo ID 342304, 23 pagine. http://dx.doi.org/10.1155/2015/342304.
Cellule staminali bioingegnerizzate come alternativa al trapianto di isole pancreatiche. Moore SJ, Gala-Lopez BL, Pepper AR, Pawlick RL, Shapiro AM J. World J Transplant.Mar 24, 2015;5(1): 1-10.
Dispositivi per l'incapsulamento cellulare microporosi e nanoporosi a film sottile di policaprolattone. Nyitray CE, Chang R, Faleo G, Lance KD, Bernards DA, Tang Q, Desai TA. ACS Nano, 2015, 9 (6), pp 5675–5682. DOI: 10.1021/acsnano.5b00679.
Macroincapsulamento di progenitori pancreatici: una nuova era nella terapia del diabete? Polidori GP. 2015, Vol. 1 No. 1: 5. DOI: 10.21767/2472-1964.100005.
Sviluppo di una terapia per il diabete basata su cellule staminali incapsulate. Tomei AA, Villa C, Ricordi C. Expert Opinion on Biological Therapy 15:9, 1321-1336. DOI: 10.1517/14712598.2015.1055242.
Minireview: differenziazione diretta e incapsulamento delle cellule B delle isole pancreatiche: progressi recenti e considerazioni future. Tse HM, Kozlovskaya V, Kharlampieva E, Hunter CS. Molecular Endocrinology October 2015, 29(10):1388–1399. doi: 10.1210/me.2015-1085.
Risposta immunitaria ai corpi estranei in funzione di dimensioni e forma dei materiali impiantati nei roditori e nei primati non umani. Veiseh O, Doloff JC, Ma M, Vegas AJ, Tam HH, Bader AR, Li J, Langan E, Wyckoff J, Loo WS, Jhunjhunwala S, Chiu A, Siebert S, Tang K, et al. Nat Mater. 2015 Jun; 14(6): 643–651. doi:10.1038/nmat4290.
Trattamento del diabete con isole pancreatiche suine incapsulate: aggiornamento sugli sviluppi attuali. Zhu H, Lu L, Liu X-Y, Yu L, Lyu Y, Wang B. Zhejiang Univ. Sci. B (2015) 16: https://doi.org/10.1631/jzus.B1400310.
I progenitori delle isole pancreatiche derivati da cellule staminali embrionali umane maturano all'interno di un dispositivo di incapsulamento senza evidenza di aumento della biomassa o fuoriuscita cellulare. Kirk K, Hao E, Lahmy R, Itkin-Ansari P. Stem Cell Research (2014) 12, 807–814. www.elsevier.com/locate/scr
Incapsulamento di isole pancreatiche e cellule staminali per il trapianto clinico Krishnan R, Alexander M, Robles L, Foster 3rd CE, Lakey JRT Rev Diabet Stud. 2014 Spring; 11(1): 84–101. doi: 10.1900/RDS.2014.11.84.
Composizione e funzione di impianti macroincapsulati derivati da cellule staminali embrionali umane: confronto con innesti clinici di isole pancreatiche umane. Motte E, Szepessy E, Suenens K, Stange G, Pipeleers D. AJP Endocrinology and Metabolism 09/2014; 307(9). DOI:10.1152/ajpendo.00219.2014.
Stato attuale dell'incapsulamento delle isole. Robles L, Storrs R, Lamb M, Alexander M, Lakey JRT. Cell Transplantation Vol. 23, pp. 1321–1348, 2014. DOI: http://dx.doi.org/10.3727/096368913X670949.
Isole incapsulate per la terapia del diabete: storia, progressi attuali e questioni cruciali da risolvere. Scharp DW, Marchetti P. Advanced Drug Delivery Reviews 67–68 (2014) 35–73. www.elsevier.com/locate/addr
Revisione: macroincapsulamento di isole in idrogel di alcol polivinilico [abstract]. Sumi S, Yanai G, Qi M, Sakata N, Qi Z, Yang K, Shirouzu Y, Hiura A, Gu Y, Inoue K. Med. Bio. Eng. 34(3): 204-210. doi: 10.5405/jmbe.1579.
Revisione: rigenerazione e differenziamento delle cellule B: quanto siamo vicini al «sacro Graal»? Tan G, Elefanty AG, Stanley EG. Molecular Endocrinology 2014 Dec;53(3):R119-29. doi: 10.1530/JME-14-0188.
L'arricchimento di cellule progenitrici pancreatiche che esprimono NKX6.1 derivate da cellule staminali embrionali umane accelera la maturazione delle cellule secernenti insulina in vivo. Rezania A, deBruin EC, Xu J, Narayan K, Kieffer TJ. Diabetologia 06/2013; 56(9). DOI:10.1007/s00125-013-2955-4.
Revisione: macroincapsulamento di isole in idrogel di alcol polivinilico. Sumi S, Yanai G, Qi M, Sakata N, Qi Z, Yang K, Shirouzu Y, Hiura A, Gu Y, Inoue K. Med. Bio. Eng. 34(3): 204-210. doi: 10.5405/jmbe.1579.
Il dispositivo TheraCyte protegge dal rigetto dell'allotrapianto di isole in ospiti immunizzati. Kumagai-Braesch M, Jacobsonb S, Moria H, Jiaa X, Tibella A. Cell Transplantation 10/2012; 22(7). DOI:10.3727/096368912X657486.
Formazione incoerente e mancata funzionalità delle cellule positive all'insulina derivate dall'endoderma pancreatico ottenuto da cellule staminali embrionali umane in ratti atimici nude. Matveyenko AV, Georgia S, Bhushan A, Butler PC. AJP Endocrinology and Metabolism 299(5),e713-e720, 2010. https://doi.org/10.1152/ajpendo.00279.2010.
L'imaging bioluminescente in tempo reale dei fibroblasti macroincapsulati rivela la protezione dell'allotrapianto nelle scimmie rhesus (Macaca mulatta). Tarantal AF, Lee CC, Itkin-Ansari P. Transplantation. 2009 Jul 15;88(1):38-41. PubMed PMID: 19584678.
I precursori delle cellule beta umane maturano in cellule funzionali produttrici di insulina in un dispositivo di immunoisolamento: implicazioni per le terapie cellulari del diabete. Lee SH, Hao E, Savinov AY, Geron I, Strongin AY, Itkin-Ansari P. Transplantation. 2009 Apr 15;87(7):983-91. PubMed PMID: 19352116; PubMed Central PMCID: PMC2715156.
Trattamento di ratti diabetici con isole incapsulate. J Cell Mol Med. Sweet IR, Yanay O, Waldron L, Gilbert M, Fuller JM, Tupling T, Lernmark A, Osborne WR. 2008 Dec;12(6B):2644-50. Epub 2008 Mar 28. PubMed PMID: 18373735.
Il preimpianto di un dispositivo immunoprotettivo può ridurre la dose curativa di isole a quella del trapianto di isole non incapsulate: studi su un modello di roditore. Sörenby AK, Kumagai-Braesch M, Sharma A, Hultenby KR, Wernerson AM, Tibell AB. Transplantation. 2008 Jul 27;86(2):364-6. PubMed PMID: 18645504.
Trattamento dell'osteoporosi con cellule paratiroidee incapsulate in TheraCyte: studio su un modello murino. Chou FF, Huang SC, Chen SS, Wang PW, Huang PH, Lu KY. Osteoporos Int. 2006;17(6):936-41. Epub 2006 Apr 5. PubMed PMID: 16596462.
Fattori solubili derivati dalle cellule del midollo osseo possono salvare topi irradiati a dosi letali proteggendo le cellule staminali ematopoietiche endogene. Zhao Y, Zhan Y, Burke KA, Anderson WF. (2005) Exp Hematol. 2005 Apr;33(4):428-34.
Xenotrapianto di cellule epatiche suine neonatali. Garkavenko O, Emerich DF, Muzina M, Muzina Z, Vasconcellos AV, Ferguson AB, Cooper IJ, Elliott RB. (2005) Transplant Proc. 2005 Jan-Feb;37(1):477-80.
Trapianto di isole di suinetti microincapsulate e macroincapsulate in topi e scimmie. Elliott RB, Escobar L, Calafiore R, Basta G, Garkavenko O, Vasconcellos A, Bambra C. (2005) Transplant Proc. 2005 Jan-Feb;37(1):466-9.
Esperimenti di terapia genica basata su cellule nell'encefalomielite autoimmune sperimentale murina. Louie KA, Weiner LP, Du1 J, Kochounian HH, Fling SP, Wei1 W e McMillan M. (2005) Gene Therapy 2005, Jul;12, 1145-1153. (Articolo in evidenza)
L'acido nucleico dei retrovirus endogeni suini nei tessuti periferici è associato alla migrazione di cellule suine dopo il trapianto di isole. Binette TM, Seeberger KL, Lyon JG, Rajotte RV, Korbutt GS. (2004) Am. J. Transplant. 2004 Jul;4(7):1051-60.
Espressione a lungo termine del gene dell'eritropoietina da cellule trasdotte in dispositivi bioisolanti. Ofer Yanay, Simon C. Barry, Lisa Y. Flint, Margaret Brzezinski, Randall W. Barton e William R.A. Osborne Human Gene Therapy, Vol 14, pagine 1587-1593 (20 novembre 2003)
Le cellule di impacchettamento retrovirale incapsulate nei dispositivi di immunoisolamento TheraCyte consentono la somministrazione genica in vivo a lungo termine. Anna Krupetsky, Zahida Parveen, Elena Marusich, Adrienne Goodrich e Ralph Dornburg Frontiers in Bioscience 8, a94-101, 1 maggio 2003
Sopravvivenza degli xenotrapianti di isole pancreatiche nei topi NOD con il dispositivo TheraCyte. Z. Yanga, M. Chena, L. B. Fialkowa, J. D. Elletta, R. Wua e J. L. Nadler Transplantation Proceedings, Volume 34, pagine 3349-3350, 2002. Ricerca finanziata da The Islet Replacement Research Foundation
Sopravvivenza di tessuto paratiroideo allogenico macroincapsulato un anno dopo il trapianto in esseri umani non sottoposti a immunosoppressione. Tibell A, Rafael E, Wennberg L, Nordenstrom J, Bergstrom M, Geller RL, Loudovaris T, Johnson RC, Brauker JH, Neuenfeldt S, Wernerson A. Cell Transplant 2001;10(7):591-9
Le cellule staminali mesenchimali di babbuino possono essere modificate geneticamente per secernere eritropoietina umana in vivo. Amelia Bartholomew, Sheila Patil, Alastair Mackay, Mary Nelson, Diana Buyaner, Wayne Hardy, Joseph Mosca, Cord Sturgeon, Mandy Siatskas, Nadim Mahmud, Karen Ferrer, Robert Deans, Annemarie Moseley, Ronald Hoffman, and Steven M. Devine Human Gene Therapy (2001). 12:1527–1541
Protezione degli xenotrapianti mediante una combinazione di immunoisolamento e una singola dose di anticorpo anti-CD4. Mckenzie AW, Georgiou HM, Zhan Y, Brady JL, Lew AM. Cell Transplant 2001 Mar-Apr; 10(2):183-93
Vascolarizzazione migliorata dei dispositivi a membrana planare per diffusione in seguito all'infusione continua del fattore di crescita dell'endotelio vascolare. Trivedi N, Steil GM, Colton CK, Bonner-Weir S and Weir GC. (2000). Cell Transplant. Jan-Feb;9(1):115-24
Studi longitudinali sulla microcircolazione intorno al dispositivo per l'immunoisolamento TheraCyte, mediante la tecnica Doppler laser. Rafael E, Gazelius B, Wu GS and Tibell A. (2000). Cell Transplant. Jan-Feb;9(1):107-13
Valutazione in vivo della permeabilità al glucosio di un dispositivo per l'immunoisolamento destinato al trapianto di isole: una nuova applicazione della tecnica della microdialisi. Rafael E, Wernerson A, Arner P, Wu GS and Tibell A. (1999). Cell Transplant. May-Jun;8(3):317-26
Studi in vivo sulla permeabilità all'insulina di un dispositivo per l'immunoisolamento destinato al trapianto di isole, mediante la tecnica della microdialisi. Rafael E, Wernerson A, Arner P and Tibell A. (1999). Eur Surg Res. 31(3):249-58
Somministrazione in vivo dell'ormone della crescita umano ricombinante da fibroblasti umani geneticamente modificati e impiantati all'interno di dispositivi Baxter per l'immunoisolamento. Josephs SF, Loudovaris T., Dixit A., Young SK. and Johnson RC. (1999). J. Mol. Med. vol 77, 211-214
Correzione del diabete nei topi NOD mediante insulinomi impiantati all'interno di dispositivi Baxter per l'immunoisolamento. Loudovaris T., Jacobs S., Young S., Maryanov D., Brauker J. and Johnson RC. (1999). J. Mol. Med. vol 77, 219-222
Inversione dell'iperglicemia nei topi dopo trapianto sottocutaneo di isole macroincapsulate. Tatarkiewicz K, Hollister-Lock J, Quickel RR, Colton CK, Bonner-Weir S, Weir GC. (1999). Transplantation, Mar 15;67(5):665-71
Peptidi degli antigeni minori di istocompatibilità immunodominanti riconosciuti dai linfociti T citolitici attivati tramite presentazione indiretta. Nevala WK, Paul C, and Wettstein PJ. (l998). Transplantation, 65: 559-69
Funzione e sopravvivenza di isole singeniche macroincapsulate trapiantate in topi diabetici trattati con streptozocina. Suzuki K, Bonner-Weir S, Trivedi N, Yoon KH, Hollister-Lock J, Colton CK, Weir GC. (1998). Transplantation, Jul 15;66(1):21-8
Espressione sostenuta di livelli elevati di fattore IIX umano da cellule umane impiantate all'interno di un dispositivo di immunoisolamento in roditori atimici. Brauker, J., Frost, G., Dwarki, V., Carr-Brendel, V., Jasunas, C., Hodgett, D., Stone, W., and Johnson, R.C. (1998). Human Gene Therapy 9:879-888
Uso di un dispositivo di immunoisolamento per il trapianto cellulare e l'immunoterapia. Geller, R.G., Loudovaris, T., Johnson, R.C., and Brauker, J.H. (1997). Ann N Y Acad Sci. Dec 31;831:438-51
Immunoisolamento delle cellule tumorali: induzione dell'immunità antitumorale tramite presentazione indiretta dell'antigene. Geller, R.L., Neuenfeldt, S., Levon, S.A., Maryanov, D.A., Thomas, T.J., and Brauker, J.H. (1997). J. Immunother. 20(2):131-137.
Trapianto di cellule in un dispositivo di immunoisolamento per la terapia genica. Carr-Brendel, V.E., Geller, R.L., Thomas, T.J., Boggs, D.R., Young, S.K., Crudele, J., Martinson, L.A., Maryanov, D.A., Johnson, R.C., and Brauker, J.H. (1997). Methods Mol Biol. 63:373-87.
Risposta infiammatoria locale intorno a camere di diffusione contenenti xenotrapianti: distruzione aspecifica dei tessuti e riduzione della vascolarizzazione locale. Brauker, J., Martinson, L.A., Young, S.K., and Johnson, R.C. (1996). Transplantation, Vol 61: No. 12, 1671-1677
Distruzione degli xenotrapianti mediata dai linfociti T CD4+ all'interno di membrane impermeabili alle cellule, in assenza di linfociti T CD8+ e linfociti B. Loudovaris, T., Mandel, T.E., and Charlton, B. (1996). Transplantation, 61:1678-1684
Struttura e funzione delle isole pancreatiche umane e di roditore macroincapsulate, trapiantate in topi nudi. Andersson A, Eizirik DL, Bremer C, Johnson RC, Pipeleers DG, Hellerstrom C. (1996). Horm Metab Res. Jun; 28(6):306-9
Neovascolarizzazione di membrane sintetiche indotta dalla microarchitettura della membrana. Brauker, J. H., Carr-Brendel, V. E., Martinson, L.A., Crudele, J., Johnston, W.D., and Johnson, R.C. (1995). J. Biomed. Mat. Res., Vol. 29: 1517-1524
Organi artificiali bioibridi impiantabili. Colton, CK. (1995). Cell Transplantation 4(4):415-436. Articolo di revisione. Dati TheraCyte, pp 427,432,433
