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ENDOHM-12G
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Prezzi validi solo negli Stati Uniti, in Canada e a Porto Rico.
These Cell Culture Cup Chambers used in TEER measurement for removable culture cup systems using EVOM2 meters for endothelial and epithelial cell cultures.
NOTE: These EndOhms are for use with older EVOM™ meters. For EndOhms used with the new EVOM™ Manual (or EVOM3), see EVOM™ Electrodes for TEER.
EndOhm chambers provide reproducible resistance measurements of endothelial and epithelial monolayers in culture cups. Transfer cups from their culture wells to the EndOhm chamber for measurement rather than using hand-held electrodes. The chamber and the cap each contain a pair of concentric electrodes: a voltage-sensing silver/silver chloride pellet in the center plus an annular current electrode. The height of the top electrode can be adjusted to fit cell culture cups of different manufacture.
To learn more about our warranty options, click here.
Per trovare le camere EndOhm equivalenti compatibili con EVOM3 o EVOM™ Manual, visita la pagina del prodotto qui.
| Codice ordine | Descrizione |
| ENDOHM-24G-SNAP | EndOhm per inserti di coltura da 24 mm e Costar Snapwell (6 pozzetti per piastra) |
| ENDOHM-12G | EndOhm per inserti di coltura da 12 mm (12 pozzetti per piastra) |
| ENDOHM-6G | EndOhm per inserti di coltura da 6 mm (24 pozzetti per piastra) |


Con WPI EVOM2 misuratore di resistenza, le camere Endohm forniscono misurazioni riproducibili della resistenza dei monostrati endoteliali ed epiteliali in capsule di coltura. Per effettuare la misurazione, trasferire le capsule dai pozzetti di coltura alla camera Endohm anziché utilizzare elettrodi portatili. La camera e il coperchio contengono ciascuno una coppia di elettrodi concentrici: al centro, un pellet di argento/cloruro d'argento per il rilevamento della tensione e, intorno, un elettrodo di corrente anulare. L'altezza dell'elettrodo superiore può essere regolata per adattarsi a capsule di coltura cellulare di diversi produttori.
Misurazioni più precise con Endohm
Gli elettrodi a disco circolare contrapposti e simmetrici di Endohm, situati sopra e sotto la membrana, consentono alla corrente di fluire attraverso la membrana con una densità più uniforme rispetto a STX2 elettrodi. La resistenza di fondo di un inserto vuoto si riduce da 150 Ω (quando si usano gli elettrodi portatili di WPI STX2 elettrodi) a meno di 5 Ω. Con la geometria fissa degli elettrodi di Endohm, la variabilità delle letture su un dato campione si riduce da 10-30 Ω con STX2 elettrodi (a seconda dell'esperienza dell'utente) fino a 1-2 Ω. Rispetto ad altri metodi di misurazione della resistenza, Endohm con EVOM2™ offre una soluzione molto più pratica ed economica per misurare i «tessuti permeabili». Grazie alla densità uniforme della corrente a onda quadra CA di EVOM2, gli errori dovuti alla polarizzazione degli elettrodi o alla capacità della membrana vengono in gran parte eliminati. Endohm insieme a EVOM2 offre l'ohmmetro per endotelio più preciso ed economico attualmente disponibile. Finora sono state testate capsule di Corning, Millipore, Nunc, Greiner e BD Falcon. Le camere Endohm possono essere sterilizzate con EtO, alcol o un battericida; non sono autoclavabili.
NOTA: le camere EndOhm hanno elettrodi in Ag/AgCl. Se si effettuano misurazioni per periodi prolungati, è opportuno considerare il potenziale effetto citotossico dell'esposizione a lungo termine all'argento sulle cellule.
ENDOHHM-6G è compatibile con le seguenti camere:
| Corning | Millipore | Materiale | Diametro della membrana (mm) | Area della superficie di crescita (cm²) | Dimensione dei pori della membrana (μm) |
| 3470 | 6.5 | 0.33 | 0.4 | ||
| 3472 | PITP01250 | 6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| 3413 | Inserto PCF | 6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| 3415 | PITP 01250 Inserto PCF |
6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| 3421 | 6.5 | 0.33 | 5.0 | ||
| 3422 | PIEP 01250 Inserto PCF |
6.5 | 0.33 | 8.0 | |
| 3495 | PIHT12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| PIHA012 50 | Inserto HA | 6.5 | 0.33 | 0.45 | |
| PICM012 50 | Inserto CM | 6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| 3496 | PISP12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| PIRP12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 1.0 | ||
| PIMP12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 5.0 | ||
| PIEP12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 8.0 | ||
| PIXP01250 Inserto PCF |
6.5 | 0.33 | 12 | ||
| PIHP01250 | 1.0 | ||||
| PITT01250 | 3.0 |
* I tre supporti sporgono dal bordo della camera e il pozzetto non può essere mantenuto parallelo agli elettrodi.
| Nunc | Dimensione dei pori (μm) | Area di coltura (cm²) |
| 140620 | 0.4 | 0.47 |
| 140627 | 3.0 | 0.47 |
| 140629 | 8.0 | 0.47 |
| ThinCertTM | Materiale della membrana | Dimensione dei pori [µm] | Densità dei pori [cm-2] | Proprietà ottiche della membrana | Trattamento superficiale TC/sterile | Piastre multiwell/ThinCertTM per scatola |
| 662640 | PET | 0.4 | 1 x 108 | traslucido | +/+ | 2/48 |
| 662641 | PET | 0.4 | 2 x 106 | trasparente | +/+ | 2/48 |
| 662610 | PET | 1.0 | 2 x 106 | trasparente | +/+ | 2/48 |
| 662630 | PET | 3.0 | 0.6 x 106 | trasparente | +/+ | 2/48 |
| 662631 | PET | 3.0 | 2 x 106 | traslucido | +/+ | 2/48 |
| 662638 | PET | 8.0 | 0.15 x 106 | traslucido | +/+ | 2/48 |
| Millicell | Dimensione dei pori (μm) | Qtà/conf. |
| MCHT24H48 | 0.4 | 48 |
| MCRP24H48 | 1.0 | 48 |
| MCSP24H48 | 3.0 | 48 |
| MCMP24H48 | 5.0 | 48 |
| MCEP24H48 | 8.0 | 48 |
| BD Falcon | Materiale della membrana | Dimensione dei pori [µm] | Densità dei pori [cm-2] | Proprietà ottiche della membrana | Piastra TC (n. pozzetti) |
| 353095 | PET | 0.4 | 2.0 ± 0.2 x 106 | trasparente | 24 |
| 353104 | PET | 1.0 | 1.6 ± 0.6 x 106 | trasparente | 24 |
| 353096 | PET | 3.0 | 8 ± 2 x 105 | trasparente | 24 |
| 353097 | PET | 8.0 | 6 ± 2 x 104 | traslucido | 24 |
| 353495 | PET | 0.4HD | 100 ± 10 x 106 | traslucido | 24 |
| 353492 | PET | 3.0HD | 2.0 ± 0.2 x 105 | traslucido | 24 |
ENDOHHM-12G è compatibile con le seguenti camere:
| Corning | Millipore | Diametro della membrana (mm) | Area della superficie di crescita (cm²) | Dimensione dei pori della membrana (μm) |
| 3401 | 12 | 1.12 | 0.4 | |
| 3402 | PITP01250 | 12 | 1.12 | 3.0 |
| PITT01250 | 12 | 1.12 | 3.0 | |
| 3493 | 12 | 1.12 | 0.4 | |
| 3494 | 12 | 1.12 | 3.0 | |
| 3460 | PIHT15R48* Inserto PET |
12 | 1.12 | 0.4 |
| PIRP15R48* Inserto PET |
12 | 1.12 | 1.0 | |
| 3462 | PISP15R48* Inserto PET |
12 | 1.12 | 3.0 |
| PIMP15R48* Inserto PET |
12 | 1.12 | 5.0 | |
|
PIEP30R48* PIEP15R48* Inserto PET |
12 | 1.12 | 8.0 |
* Le gambe di supporto a tre punti devono essere bilanciate correttamente affinché il filtro sia parallelo agli elettrodi.
| Nunc | Dimensione dei pori (μm) | Area di coltura (cm²) |
| 140652 | 0.4 | 1.13 |
| 140654 | 3.0 | 1.13 |
| 140656 | 8.0 | 1.13 |
| ThinCertTM | Materiale della membrana | Dimensione dei pori [µm] | Densità dei pori [cm-2] | Proprietà ottiche della membrana | Trattamento superficiale TC/sterile | Piastre multiwell/ThinCertTM per scatola |
| 665640 | PET | 0.4 | 1 x 108 | traslucido | +/+ | 4/48 |
| 665641 | PET | 0.4 | 2 x 106 | trasparente | +/+ | 4/48 |
| 665610 | PET | 1.0 | 2 x 106 | trasparente | +/+ | 4/48 |
| 665630 | PET | 3.0 | 0.6 x 106 | trasparente | +/+ | 4/48 |
| 665631 | PET | 3.0 | 2 x 106 | traslucido | +/+ | 4/48 |
| 665638 | PET | 8.0 | 0.15 x 106 | traslucido | +/+ | 4/48 |
| Millicell | Dimensione dei pori (μm) | Qtà/conf. |
| MCHT12H48 | 0.4 | 48 |
| MCRP12H48 | 1.0 | 48 |
| MCSP12H48 | 3.0 | 48 |
| MCMP12H48 | 5.0 | 48 |
| MCEP12H48 | 8.0 | 48 |
| BD Falcon | Materiale della membrana | Dimensione dei pori [µm] | Densità dei pori [cm-2] | Proprietà ottiche della membrana | Piastra TC (n. pozzetti) |
| 353180 | PET | 0.4 | 2.0 ± 0.2 x 106 | trasparente | 12 |
| 353103 | PET | 1.0 | 1.6 ± 0.6 x 106 | trasparente | 12 |
| 353181 | PET | 3.0 | 8 ± 2 x 105 | trasparente | 12 |
| 353182 | PET | 8.0 | 6 ± 2 x 104 | traslucido | 12 |
| 353494 | PET | 0.4HD | 100 ± 10 x 106 | traslucido | 12 |
| 353292 | PET | 3.0HD | 2.0 ± 0.2 x 105 | traslucido | 12 |
L'ENDOHM-24SNAP è compatibile con le seguenti camere:
| Corning | Millipore | Materiale della membrana | Dimensione dei pori (µm) |
| 3407 | Policarbonato | 0.4 | |
| 3801 | Policarbonato | 0.4 | |
| Policarbonato | 3.0 | ||
| 3412 | PIHT30R48* | Policarbonato | 0.4 |
| 3414 | Policarbonato | 3.0 | |
| PITT03050 | Policarbonato | 3.0 | |
| 3428 | Policarbonato | 8.0 | |
| 3450 | Poliestere | 0.4 | |
| 3452 | Poliestere | 3.0 | |
| 3491 | Collagene | 0.4 | |
| 3492 | Collagene | 3.0 | |
| PICMORG50 | Inserto organotipico | 0.4 | |
| PIHA03050 | Inserto HA | 0.45 | |
| PIHP03050 | Inserto PCF | 0.4 | |
| PICM03050 | Esteri misti di cellulosa HA | 0.4 | |
| PIHT30R48* | Inserto PET | 0.4 | |
| PIRP30R48* | Inserto PET | 1.0 | |
| PISP30R48* | Inserto PET | 3.0 | |
| PIMP30R48* | Inserto PET | 5.0 | |
| PIEP30R48* | Inserto PET | 8.0 |
* Le gambe di supporto a tre punti devono essere bilanciate correttamente affinché il filtro sia parallelo agli elettrodi.
| Nunc | Dimensione dei pori (μm) | Area di coltura (cm²) |
| 140640 | 0.4 | 3.14 |
| 140642 | 3.0 | 3.14 |
| 140644 | 8.0 | 3.14 |
| 140660 | 0.4 | 4.1 |
| 140663 | 3 | 4.1 |
| 140668 | 8 | 4.1 |
| ThinCertTM | Materiale della membrana | Dimensione dei pori [µm] | Densità dei pori [cm-2] | Proprietà ottiche della membrana | Trattamento superficiale TC/sterile | Piastre multiwell/ThinCertTM per scatola |
| 657640 | PET | 0.4 | 1 x 108 | traslucido | +/+ | 4/24 |
| 657641 | PET | 0.4 | 2 x 106 | trasparente | +/+ | 4/24 |
| 657610 | PET | 1.0 | 2 x 106 | trasparente | +/+ | 4/24 |
| 657630 | PET | 3.0 | 0.6 x 106 | trasparente | +/+ | 4/24 |
| 657631 | PET | 3.0 | 2 x 106 | traslucido | +/+ | 4/24 |
| 657638 | PET | 8.0 | 0.15 x 106 | traslucido | +/+ | 4/24 |
| Millicell | Dimensione dei pori (μm) | Qtà/conf. |
| MCHT06H48 | 0.4 | 48 |
| MCRP06H48 | 1.0 | 48 |
| MCSP06H48 | 3.0 | 48 |
| MCMP06H48 | 5.0 | 48 |
| MCEP06H48 | 8.0 | 48 |
| BD Falcon | Materiale della membrana | Dimensione dei pori [µm] | Densità dei pori [cm-2] | Proprietà ottiche della membrana | Piastra TC (n. pozzetti) |
| 353090 | PET | 0.4 | 2.0 ± 0.2 x 106 | trasparente | 6 |
| 353102 | PET | 1.0 | 1.6 ± 0.6 x 106 | trasparente | 6 |
| 353091 | PET | 3.0 | 8 ± 2 x 105 | trasparente | 6 |
| 353093 | PET | 8.0 | 6 ± 2 x 104 | traslucido | 6 |
| 353493 | PET | 0.4HD | 100 ± 10 x 106 | traslucido | 6 |
| 353092 | PET | 3.0HD | 2.0 ± 0.2 x 105 | traslucido | 6 |
Tabelle di compatibilità EndOhm-6G (EVM-EL-03-01-01)
Tabelle di compatibilità EndOhm-12G (EVM-EL-03-01-02)
Tabelle di compatibilità EndOhm-24G-SNAP (EVM-EL-03-01-03)
Risoluzione dei problemi delle letture instabili della resistenza di un ENDOHM
Una delle domande frequenti (FAQ) riguarda le misurazioni TEER con un EndOhm. Se le letture della resistenza del tuo EndOhm non si stabilizzano, potrebbe essere necessario eseguire alcune verifiche.
Verifica del misuratore EVOM™ manuale: per prima cosa, verifica il misuratore EVOM™. A questo scopo puoi usare il resistore di prova da 1000 Ω (WPI n. 91750). Inserisci la spina RJ-11 all'estremità del resistore di prova nella porta Input del misuratore. Imposta il selettore di funzione su Ohms. Scollega il misuratore EVOM™ dal caricabatterie e accendilo (I). Il misuratore dovrebbe visualizzare 1000 Ω. In caso contrario, regola la vite R ADJ con un piccolo cacciavite a taglio finché il misuratore non indica 1000 Ω. Se il misuratore EVOM™ indica 1000 ± 2-3 ohm e la lettura rimane stabile, funziona correttamente.
Testare l’EndOhm: successivamente, testa l’EndOhm. Puoi comunque testare qualitativamente l’EndOhm esponendolo a diverse concentrazioni di KCl. Le letture dovrebbero sempre mostrare un valore TEER stabile e inferiore a concentrazioni più alte, e un valore più alto ma potenzialmente meno stabile a concentrazioni più basse. In generale, se la lettura della TEER diminuisce, significa che la corrente sta trovando un percorso alternativo a resistenza inferiore rispetto al solo mezzo, oppure che la preparazione sta in qualche modo acquisendo una carica. Se il problema è effettivamente nell’EndOhm, di solito è causato da una perdita di mezzo di coltura sotto le superfici degli elettrodi, dove può danneggiare i collegamenti dei fili ai dischi di Ag/AgCl. Una reazione ritardata può manifestarsi quando il mezzo impiega del tempo a infiltrarsi in fessure molto sottili, dove il legame adesivo ha perso la tenuta. Se la lettura della TEER continua a diminuire ben al di sotto del valore previsto, è molto probabile che l’EndOhm presenti una perdita nel punto di fissaggio dell’elettrodo o corrosione in qualche punto dei circuiti di corrente o di tensione. Se l’EndOhm ha sviluppato fessure sottili, deve essere sostituito.
Sheller, R. A., Cuevas, M. E., & Todd, M. C. (2017). Confronto tra tecniche di misurazione della resistenza transepiteliale: chopstick vs. Endohm. Biological Procedures Online, 19, 4. http://doi.org/10.1186/s12575-017-0053-6
Srinivasan, B., Kolli, A. R., Esch, M. B., Abaci, H. E., Shuler, M. L., & Hickman, J. J. (2015). Tecniche di misurazione della TEER per sistemi modello di barriera in vitro. Journal of Laboratory Automation, 20(2), 107–26. http://doi.org/10.1177/2211068214561025
TORRES, R., PIZARRO, L., CSENDES, A., GARCÍA, C., LAGOS, N., Pasdar, M., … Roskelley, C. (2007). GLI EPIMERI GTX 2/3 ATTRAVERSANO L’INTESTINO ATTRAVERSO UNA VIA PARACELLULARE. The Journal of Toxicological Sciences, 32(3), 241–248. http://doi.org/10.2131/jts.32.241
Patil, R. V., Han, Z., Yiming, M., Yang, J., Iserovich, P., Wax, M. B., & Fischbarg, J. (2001). Trasporto di fluidi da parte di strati di epitelio ciliare umano non pigmentato in coltura: un ruolo omeostatico per l’acquaporina-1. American Journal of Physiology - Cell Physiology, 281(4).

$2,250.00
53330-01
La serie di camere EndOhm, utilizzata con il misuratore di resistenza EVOM2 di WPI o con il Millicell ERS, è progettata per fornire misurazioni accurate e riproducibili della resistenza dei tessuti endoteliali nelle cupole di coltura. I valori di resistenza ottenuti con EndOhm sono coerenti con quelli ottenuti utilizzando una camera di Ussing.
EVOM™ Auto è l’ultima generazione del sistema WPI per la misurazione automatizzata della resistenza elettrica transepiteliale o transendoteliale (TEER). Basato sulla stessa tecnologia collaudata di EVOM™ Manual e REMS, abbinata a un nuovo array di multielettrodi, un’interfaccia software e un sistema di controllo, offre la soluzione con il flusso di lavoro più rapido, migliorando al contempo la precisione delle misurazioni TEER:
Nel 2022, la Food and Drug Administration (FDA) degli Stati Uniti ha approvato 37 nuovi farmaci, di cui 20 erano entità chimiche e 17 biologici. Nel 2023, la scoperta di farmaci rimane dinamica, con molti nuovi progressi, frutto dei cambiamenti sia nelle tipologie di farmaci in fase di sviluppo sia nei nuovi e innovativi test lanciati per valutare i farmaci in fase preclinica. Lo sviluppo di terapie è ancora fortemente concentrato sulle malattie che colpiscono ampie fasce della popolazione e per le quali mancano trattamenti efficaci. I lanci di farmaci più attesi del 2023 sono previsti nei campi dell’oncologia, della malattia di Alzheimer, delle patologie cardiovascolari e della colite ulcerosa.
Nel 2022, la Food and Drug Administration (FDA) degli Stati Uniti ha approvato 37 nuovi farmaci, di cui 20 erano entità chimiche e 17 biologici. Nel 2023, la scoperta di farmaci rimane dinamica, con molti nuovi progressi, frutto dei cambiamenti sia nelle tipologie di farmaci in fase di sviluppo sia nei nuovi e innovativi test lanciati per valutare i farmaci in fase preclinica. Lo sviluppo di terapie è ancora fortemente concentrato sulle malattie che colpiscono ampie fasce della popolazione e per le quali mancano trattamenti efficaci. I lanci di farmaci più attesi del 2023 sono previsti nei campi dell’oncologia, della malattia di Alzheimer, delle patologie cardiovascolari e della colite ulcerosa.
La resistenza elettrica transepiteliale (TEER) è una tecnica ampiamente utilizzata nelle scienze della vita e nello sviluppo di terapie. Misura la resistenza elettrica attraverso un monostrato cellulare, fornendo informazioni sull’integrità e sulla funzionalità delle barriere epiteliali. La TEER si è dimostrata uno strumento prezioso in vari ambiti, tra cui gli studi sull’assorbimento dei farmaci, l’ingegneria tissutale e la modellizzazione delle malattie. Questo articolo si propone di esplorare i vantaggi della TEER e le sue applicazioni in diverse aree di ricerca.
La misurazione della resistenza elettrica transepiteliale/transendoteliale (TEER) è una delle pratiche più utilizzate per valutare la salute cellulare, ad esempio la confluenza cellulare, l’integrità della barriera o la funzione di barriera dei monostrati cellulari coltivati in piastre multiwell. La misurazione della TEER con l’Epithelial Voltohmmeter (EVOM) di WPI è considerata il gold standard grazie alla sua affidabilità e alle numerose citazioni in letteratura relative a diversi tipi di cellule. L’EVOM™ Manual e l’EVOM™ Auto, insieme alle diverse opzioni di elettrodi (STX4, STX HTS per lo screening ad alta processività, camere EndOhm e array multielettrodo per EVOM™ Auto), consentono ai ricercatori di analizzare campioni cellulari in inserti rimovibili da 6, 12 e 24 pozzetti e in piastre multiwell HTS da 24 e 96 pozzetti. Tra le principali difficoltà che i ricercatori possono incontrare durante gli studi per misurare la TEER figurano:
· Letture instabili
· Valori fuori intervallo
· Misurazioni incoerenti tra repliche o lotti di campioni.
Considera i seguenti fattori per superare eventuali problemi di misurazione della TEER e ottenere misurazioni accurate e affidabili.
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