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EVOM3
Impossibile caricare la disponibilità di ritiro
Prezzi validi solo negli Stati Uniti, in Canada e a Porto Rico.
Questo prodotto è fuori produzione. PASSA A EVOM™ MANUAL per una maggiore accuratezza, la registrazione automatica dei dati, un’interfaccia touchscreen e molte nuove funzionalità.
EVOM™ Manual sostituisce tutti i misuratori TEER manuali prodotti da WPI, inclusi EVOM3, EVOM2 e MilliCell® ERS-2, tutti fuori produzione.
Il sistema EVOM di WPI è molto diffuso nella comunità di ricerca e viene comunemente utilizzato per valutare la salute delle cellule di mammifero misurando la resistenza elettrica transepiteliale/transendoteliale (TEER o TER) degli strati cellulari.
EVOM3 si basa sullo stesso principio di funzionamento dei modelli EVOM precedenti (EVOMX, EVOM e EVOM2). Include funzioni avanzate per eseguire gli esperimenti più facilmente. Con il nuovo display touchscreen è ora possibile SALVARE I DATI in formato Microsoft® File Excel su un’unità flash USB. Basta rimuovere da EVOM3 l’unità flash con tutti i dati registrati e collegarla a un computer per accedere ai dati e creare grafici. È semplice proprio come sembra.
Gli ioni e la corrente elettrica possono essere trasportati attraverso le cellule (per via transcellulare) e attraverso lo spazio tra cellule adiacenti (per via paracellulare), come illustrato nell’immagine seguente.

Le linee tratteggiate mostrano il percorso transcellulare del flusso ionico o della corrente elettrica. Le linee continue illustrano il percorso paracellulare del flusso ionico o della corrente.
La resistenza elettrica (cioè la TEER) di uno strato cellulare è l’inverso della conduttanza elettrica attraverso lo strato cellulare. Un valore TEER elevato indica che il monostrato cellulare è integro e suggerisce una bassa permeabilità o una permeabilità limitata di ioni e molecole (cioè una bassa conduttanza). Analogamente, una diminuzione del valore TEER suggerisce una compromissione della funzione di barriera e indica un aumento della permeabilità. Gli studi sulla permeabilità dei tessuti richiedono uno strato cellulare confl uente, e la misurazione della TEER viene generalmente utilizzata per confermare la formazione di un monostrato confluente.

Inizialmente, 24 ore dopo la semina delle cellule nella transwell, i valori TEER sono generalmente bassi, perché la corrente può passare facilmente tra le cellule. Col tempo, le cellule si moltiplicano e iniziano a coprire gli spazi vuoti. Alla fine si forma un monostrato cellulare confluente. A quel punto, la membrana permeabile è completamente ricoperta di cellule e non consente il facile passaggio della corrente elettrica. Il risultato è un valore TEER elevato.
I valori TEER dei monostrati cellulari confluenti possono variare a seconda del tipo cellulare. I monostrati di alcuni tipi cellulari (ad esempio, il tipo cellulare A), che in genere presentano valori TEER bassi, hanno solitamente giunzioni strette relativamente permeabili. I monostrati di altri tipi cellulari (ad esempio, il tipo cellulare B) presentano valori TEER elevati e questi tipi cellulari sono noti per avere giunzioni strette stabili. È noto che ioni e molecole attraversano più facilmente gli strati cellulari permeabili rispetto a quelli più compatti. La presenza di un maggior numero di canali ionici transcellulari nelle cellule può facilitare ulteriormente il flusso di ioni o di corrente elettrica attraverso la via transcellulare, riducendo così i valori TEER.

Il tipo cellulare A consente a maggiori quantità di corrente e ioni di passare tra le cellule e produce un valore TEER basso. Grazie alle giunzioni più strette, i monostrati di cellule di tipo B presentano un valore TEER più alto. Anche se entrambi i monostrati sono confluenti, i valori di resistenza TEER possono differire notevolmente in base alla natura delle cellule stesse.
WPI è stata la prima azienda a introdurre, con EVOM, una tecnica semplificata per la misurazione del TEER. Ancora oggi, il sistema EVOM di WPI è il dispositivo più diffuso per misurare i valori TEER nelle transwell. EVOM3 è la versione più recente dei voltmetri per epiteli e offre diverse funzionalità avanzate. L'interfaccia touchscreen rende EVOM3 semplice da usare. La misurazione del TEER con un EVOM è un metodo non invasivo per monitorare la salute cellulare. EVOM3, insieme al nuovo elettrodo STX2PLUS, consente analisi dei campioni più accurate e offre funzionalità rapide e semplici per archiviare i dati su un'unità flash USB.
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Per analizzare i campioni in modo quantitativo, con maggiore accuratezza e una facile archiviazione dei dati, scegli EVOM3. Il metodo di misurazione non invasivo di EVOM3 consente di utilizzare lo stesso campione per altre analisi sperimentali.
Ecco tre applicazioni in cui si misura comunemente il TEER. Quando si misura la funzione di barriera cellulare, l'aumento dei valori TEER è generalmente correlato a un miglioramento della funzione di barriera. Analogamente, il raggiungimento del valore TEER massimo può indicare che lo strato cellulare è diventato confluente. La citotossicità cellulare può essere valutata misurando il TEER. Valori TEER elevati indicano uno strato cellulare più sano. Quando le cellule muoiono, nello strato cellulare possono formarsi delle lacune e il valore TEER può diminuire.

Il sistema EVOM di WPI è stato ampiamente utilizzato per studiare la salute e la funzionalità dei tessuti in vitro bidimensionali (2D) o tridimensionali (3D). Negli ultimi anni, per lo screening ad alto rendimento dei farmaci e lo studio delle malattie, la ricerca si è concentrata maggiormente sulla creazione di tessuti in vitro 3D che assomiglino ai tessuti in vivo e presentino proprietà funzionali costanti. La misurazione del TEER è uno dei metodi utilizzati per valutare e confrontare quanto i tessuti in vitro riescano a riprodurre in modo costante quelli in vivo. EVOM3 può essere utilizzato con modelli in vitro 3D, come la barriera emato-encefalica (BBB), l'infezione virale polmonare e i tessuti intestinali, renali ed epatici. La sezione Riferimenti riporta alcune pubblicazioni selezionate.


Brevi video illustrano alcune delle principali nuove funzionalità di EVOM3. Fai clic sulla scheda Risorse in questa pagina per vedere tutti i video di EVOM3.
WPI offre una linea di prodotti per lo studio della fisiologia epiteliale, che comprende una varietà di elettrodi, i misuratori EVOM e il sistema robotico automatizzato per lo screening ad alto rendimento (HTS). Scopri di più sulle opzioni degli elettrodi nell'articolo "Come selezionare gli elettrodi per misurare il TEER."
L’EVOM3 migliora l’efficienza del flusso di lavoro e offre misurazioni più stabili e ripetibili rispetto ai tradizionali misuratori della resistenza elettrica transepiteliale (TEER). Lo schermo grande fornisce agli utenti informazioni essenziali durante le misurazioni sperimentali, offrendo diverse visualizzazioni informative. I nuovi grafici per l’analisi delle tendenze e i valori di misurazione aiutano gli scienziati ad applicare una metodologia semplice e graduale durante gli esperimenti. L’interfaccia touchscreen offre un menu intuitivo e facile da usare per la configurazione.
Per eliminare la necessità di registrare i dati a mano, l’EVOM3 salva le informazioni sulla resistenza o sulla tensione su un’unità USB in formato CSV, facilitandone il trasferimento a fogli di calcolo e programmi di analisi dei dati. Se utilizzato con il pedale, consente di registrare le misurazioni a mani libere.
Il cuore dell’EVOM3 è il nostro processore e circuito più recenti, che forniscono letture rapide, semplici e affidabili grazie alla stabilizzazione veloce, alla media automatica di venti campioni e al design a basso rumore. La funzione di selezione automatica della resistenza consente misurazioni rapide, mentre la visualizzazione del fuori scala elimina le letture errate. L’EVOM3 offre livelli di corrente regolabili in tre intervalli fissi, con due intervalli inferiori per membrane sensibili e intervalli di resistenza elevata fino a 100 KΩ.
L’elettrodo STX2-PLUS è progettato per essere inserito facilmente in molte piastre da 24 pozzetti. La sua posizione nell’inserto può essere riprodotta per ottenere misurazioni ripetibili e uniformi. I nuovi elettrodi schermati sono progettati per ridurre al minimo le interferenze elettriche e facilitarne la manutenzione.
| Contenuto della confezione EVOM3 | Q.tà |
| Misuratore di volt-ohm epiteliale EVOM3 | 1 |
| Set di elettrodi STX2-PLUS | 1 |
| Unità USB 300749 da 32 GB (utilizzata per l’archiviazione. Contiene anche un programma Python 3.8 per il monitoraggio digitale continuo di un inserto target). | 1 |
| Cavo USB 503535 | 1 |
| Kit di calibrazione 99673, resistore di prova da 1000 Ω | 1 |
| Cavo di alimentazione CA e caricabatterie 803025 | 1 |
| Pedale 13142 | 1 |
NOTA: l’adattatore per elettrodi EVOM2-EVOM3 99672 è venduto separatamente. Per utilizzare EVOM3 con STX2, STX3 e tutti gli STX100 è necessario questo adattatore.


La confluenza di un monostrato cellulare è determinata da un aumento o da un plateau della resistenza tissutale, rilevati tramite l’esclusivo circuito elettronico dell’EVOM3 e il nuovo elettrodo STX2-PLUS. L’EVOM3 misura qualitativamente lo stato di salute del monostrato cellulare e quantitativamente la confluenza cellulare. L’EVOM3 genera una corrente alternata a bassa intensità che evita la deposizione di metalli sugli elettrodi e gli effetti avversi sui tessuti che possono essere causati da correnti continue di intensità maggiore. L’EVOM3 utilizza correnti e tensioni basse ed è progettato per test non distruttivi della confluenza dei monostrati epiteliali nelle colture cellulari. Inoltre, le letture della resistenza non sono influenzate dalla capacità o dalla tensione della membrana. La precisione e la ripetibilità del sistema EVOM3-STX2-PLUS rendono questo strumento ideale per studi dettagliati sulla permeabilità, il PD e altre analisi di membrana.
| N. parte | Descrizioni |
| STX2-PLUS | Set di elettrodi sostitutivo |
| STX2* | Set di elettrodi sostitutivo (richiede 99672 per l’uso con EVOM3) |
| STX3* | Set di elettrodi regolabile per pozzetti poco profondi, profondità 5-9 mm |
| 3993* | Adattatore da 2 mm per EVOM2 |
*(Richiede 99672 per l’uso con EVOM3)
Le nuove camere EndOhm includono il cavo EVOM3 99916.
| N. parte | Descrizioni |
| ENDOHM-6G | EndOhm per pozzetto di coltura da 6 mm (24 pozzetti per piastra) |
| ENDOHM-12G | EndOhm per pozzetto di coltura da 12 mm (12 pozzetti per piastra) |
| ENDOHM-24G | EndOhm per pozzetto da 24 mm e Snapwell Costar (6 pozzetti per piastra) |
Tecniche di misurazione TEER per sistemi modello di barriera in vitro
Manuale di istruzioni STX2-PLUS
Scarica l’aggiornamento manuale EVOM3/EVOM™ (rilasciato a febbraio 2025)
Pacchetto di output digitale Python
Sì, ma è necessario l’adattatore 99672 oppure il nuovo cavo EVOM3 99916.
La funzione di azzeramento viene utilizzata quando si desidera sottrarre qualsiasi misurazione che non provenga dalla membrana, come le resistenze degli elettrodi e del fluido.
No, la misurazione TEER richiede il calcolo dell’area. Per calcolare il TEER, moltiplica la resistenza misurata per l’area superficiale appropriata (riportata di seguito). Per esempio, un inserto da 12 mm misura 565 Ω; il TEER è 565 Ω × 1.13 cm2 = 638.5 Ω- cm2Ecco le aree superficiali generalmente applicabili ai diversi formati di transwell/inserto: piastra a 6 pozzetti (inserti da 24 mm) 4.52 cm2, piastra a 12 pozzetti (inserti da 12 mm) 1.13 cm2, piastra a 24 pozzetti (inserti da 6.5 mm) 0.33 cm2, piastra a 96 pozzetti (inserti da 4.3 mm) 0.14 cm2.
Cancellare tutti i dati in memoria aprendo le impostazioni, il menu di archiviazione e premendo «Nuova piastra»; così si cancellano le letture precedenti. Tornare alla schermata principale, aprire la schermata di anteprima e selezionare ogni pozzetto da misurare (la selezione diventa verde), posizionare l'elettrodo e misurare. Dopo aver misurato i pozzetti selezionati, aprire le impostazioni, premere il menu della schermata di archiviazione, quindi premere «Salva nuova» per salvare i dati della piastra sull'unità USB.
Dopo l'uso, togliere l'EVOM3 dalla cappa a flusso laminare. La volta successiva, accendere la luce UV all'interno della cappa. Una volta disinfettata la cappa con i raggi UV, spegnere la luce UV, quindi spruzzare etanolo o isopropanolo al 70-100% su un tovagliolo di carta e pulire l'EVOM3. Non spruzzare l'alcol direttamente sull'EVOM3.
Se l'elettrodo è esposto all'aria o parzialmente immerso nel liquido, il display può mostrare trattini perché registra letture instabili. La punta dell'elettrodo (zona di rilevamento) deve rimanere completamente immersa. Si possono notare letture instabili anche quando la punta dell'elettrodo non è completamente immersa. Assicurarsi di scegliere volumi apicali e basolaterali che mantengano la punta dell'elettrodo completamente immersa. È necessario usare volumi apicali e basolaterali maggiori di quelli suggeriti dal produttore dell'inserto. Ad esempio, per una piastra Transwell Corning a 24 pozzetti (ad esempio Corning 3470), consigliamo almeno 300 µL nella parte superiore (apicale) e 850 µL nella parte inferiore (basolaterale). [Questi volumi sono leggermente superiori al minimo necessario per l'elettrodo STX2-PLUS.]
Ecco i passaggi:

Figura 1: Regolazione dell'altezza dell'elettrodo STX2-PLUS. Ruotare l'anello anteriore in senso orario affinché l'elettrodo possa raggiungere la massima profondità all'interno del pozzetto.

Figura 2: Punta dell'elettrodo STX2-PLUS e requisiti di volume del liquido. Assicurarsi che la punta di rilevamento dell'elettrodo (parti racchiuse in rosso) di entrambe le lame rimanga completamente immersa in un liquido conduttivo, come il terreno di coltura cellulare o un tampone, durante la misurazione. Sono necessari volumi apicali e basolaterali adeguati per ottenere una lettura stabile. Poiché l'STX2-PLUS rimane sospeso, è necessario usare un volume maggiore per assicurarsi che la zona di rilevamento dell'elettrodo sia completamente immersa.
NOTA: È necessario usare volumi di liquido maggiori di quelli raccomandati dal produttore dell'inserto. I volumi raccomandati dal produttore dell'inserto non manterranno la punta dell'elettrodo completamente immersa.
[As mentioned as an example previously, for Corning-24 well Transwell (e.g., Corning 3470) we recommend using minimum 300 µL on top (apical) and 850 µL on bottom (basolateral). These volumes are a little more than the least required for STX2-PLUS electrode. You can check visually to make sure the apical and basolateral volumes are adequate to keep the electrode tips fully immersed, and then consistently use those volumes.]
Anche se persistono letture instabili o trattini, molto probabilmente è necessario clorurare l’elettrodo. La clorurazione consiste nel tenere le punte dell’elettrodo immerse in ipoclorito di sodio al 3-6% (candeggina) per 10-15 minuti, quindi risciacquarle con acqua distillata. È una parte della manutenzione dell’STX2-PLUS ed è una procedura fondamentale. Consulta le istruzioni per la manutenzione riportate di seguito (passaggio 1). **
È possibile che i valori di resistenza grezzi cambino. Tuttavia, sottrai i valori del bianco (Transwell senza cellule) dai valori dei campioni (Transwell con cellule). In questo modo, sottrai dai campioni con volume aumentato il valore del bianco con volume aumentato. Pertanto, viene esclusa qualsiasi variazione della resistenza dovuta all’aumento del volume. Usa volumi uguali per tutti i campioni di un esperimento.
Di seguito sono riportati i passaggi da seguire per la pulizia o la manutenzione dell’STX2-PLUS. Durante la pulizia o la manutenzione, assicurati che il livello del liquido sia sufficiente a raggiungere almeno la zona delimitata in rosso.

1. Prima di usare gli elettrodi, clorura le punte tenendole immerse in ipoclorito di sodio (candeggina) al 3-6% per 10-15 minuti. Se gli elettrodi vengono usati frequentemente, la clorurazione va eseguita ogni 3 giorni o dopo oltre una settimana di conservazione. **
2. Risciacqua con acqua DI sterile/buffer.
3. Passaggio facoltativo: immergi rapidamente in etanolo o isopropanolo al 70%, poi immergi rapidamente in acqua DI/buffer.
4. Usa l’elettrodo per le misurazioni.
5. Passaggio facoltativo tra la misurazione dei campioni: immergi rapidamente in etanolo o isopropanolo al 70%, poi immergi rapidamente in acqua DI/buffer.
6. Dopo le misurazioni, immergi le punte dell’elettrodo in isopropanolo o etanolo al 70% per 5-10 minuti.
7. Risciacqua con acqua DI. Lascia asciugare all’aria. Conserva l’elettrodo asciutto, al riparo dalla luce o con esposizione minima alla luce.
8. Se gli elettrodi vengono usati frequentemente, immergi le punte ogni settimana in Tergazyme all’1% per 15 minuti. Poi risciacqua con acqua DI.
9. Poi, clorura le punte dell’elettrodo tenendole immerse in ipoclorito di sodio (candeggina) al 3-6% per 10-15 minuti. (Come nel passaggio n. 1.)
10. Risciacqua con acqua DI sterile/buffer.
11. Usa per le misurazioni.
12. Ripeti dal passaggio 5.
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NON impugnare l’elettrodo afferrando il cavo. Col tempo, potrebbe danneggiare fisicamente i collegamenti interni. |
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Impugna l’elettrodo nella zona indicata dalla freccia (in plastica). |
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Limita l’immersione o l’esposizione agli schizzi di liquido fino a questo livello (massimo). Evita che il liquido penetri all’interno e raggiunga i cavi o i connettori interni. Puoi pulire il resto dell’elettrodo con un tovagliolo di carta inumidito con isopropanolo o etanolo (non spruzzare direttamente). |
Il sistema di misurazione TEER EVOM3 consente ai ricercatori di condurre esperimenti in modo più efficiente, migliorando il flusso di lavoro e aumentando la stabilità e la precisione delle letture rispetto a EVOM2. Per maggiori dettagli, consulta l'articolo "Perché scegliere EVOM3 invece di EVOM2".
Compatto e leggero - Questo è un confronto tra EVOM3 ed EVOM2. Con un peso inferiore a 1 lb, EVOM3 è leggero e portatile. Ha un design elegante con interfaccia touchscreen.
Visualizzazione intelligente dei dati e controllo con interruttore a pedale - Scopri quanto è facile configurare e usare l'interruttore a pedale per raccogliere dati.
Salvataggio dei dati su unità flash USB - Salva i dati come file Microsoft Excel sull'unità flash USB con la semplice pressione di un pulsante. Il file di dati è accessibile da un computer collegando l'unità flash a una porta USB.
Design dell'elettrodo migliorato - Confronta l'elettrodo STX2 con il NUOVO elettrodo STX2-PLUS. Il nuovo elettrodo resta in posizione verticale sulla piastra, garantendo letture stabili e coerenti.
Questa unità è conforme alle seguenti specifiche:
| Tipo | Descrizioni |
| Frequenza di campionamento del tessuto | 12,5 Hz |
| Media dei campioni | 20 campioni al secondo |
| Intervalli di resistenza |
|
| Modalità automatica | Da 1 a 100.000 Ω, corrente automatica 2 μA, 4 μA, 10 μA |
| Risoluzione della resistenza | 0,1 Ω (sotto 200 Ω); 1 Ω (sopra 200 Ω) |
| Precisione della resistenza |
|
| Risoluzione della tensione | 0,001 V, 0,1 mV |
| Precisione della resistenza | 0,1 Ω (200 Ω); 1 Ω (oltre 200 Ω) |
| Precisione della tensione | ± 0,1 mV |
| Livelli di corrente |
|
| Frequenza di aggiornamento del display | 0,5 secondi |
| Batteria | Ioni di litio da 3,7 V, 2500 mAh** |
| Tempo di ricarica | 5,5 ore (spento); 6 ore (durata di funzionamento) |
| Corrente di carica | 200 mA |
| Consumo energetico | ~250 mA |
| Certificazioni | CE |
** mAH indica milliampere-ora.
| Corning | Millipore | Materiale | Diametro della membrana (mm) | Area della superficie di crescita (cm²) | Dimensione dei pori della membrana (μm) |
| 3470 | 6.5 | 0.33 | 0.4 | ||
| 3472 | PITP01250 | 6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| 3413 | Inserto PCF | 6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| 3415 | PITP 01250 Inserto PCF |
6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| 3421 | 6.5 | 0.33 | 5.0 | ||
| 3422 | PIEP 01250 Inserto PCF |
6.5 | 0.33 | 8.0 | |
| 3495 | PIHT12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| PIHA012 50 | Inserto HA | 6.5 | 0.33 | 0.45 | |
| PICM012 50 | Inserto CM | 6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| 3496 | PISP12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| PIRP12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 1.0 | ||
| PIMP12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 5.0 | ||
| PIEP12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 8.0 | ||
| PIXP01250 Inserto PCF |
6.5 | 0.33 | 12 | ||
| PIHP01250 | 1.0 | ||||
| PITT01250 | 3.0 |
* Supporti tripli
| Nunc | Dimensione dei pori (μm) | Area di coltura (cm²) |
| 140620 | 0.4 | 0.47 |
| 140627 | 3.0 | 0.47 |
| 140629 | 8.0 | 0.47 |
| ThinCertTM | Materiale della membrana | Dimensione dei pori [µm] | Densità dei pori [cm-2] | Proprietà ottiche della membrana | Trattamento superficiale TC/sterile | Piastre multiwell/ThinCertTM per scatola |
| 662640 | PET | 0.4 | 1 x 108 | traslucido | +/+ | 2/48 |
| 662641 | PET | 0.4 | 2 x 106 | trasparente | +/+ | 2/48 |
| 662610 | PET | 1.0 | 2 x 106 | trasparente | +/+ | 2/48 |
| 662630 | PET | 3.0 | 0.6 x 106 | trasparente | +/+ | 2/48 |
| 662631 | PET | 3.0 | 2 x 106 | traslucido | +/+ | 2/48 |
| 662638 | PET | 8.0 | 0.15 x 106 | traslucido | +/+ | 2/48 |
| Millicell | Dimensione dei pori (μm) | Quantità/confezione |
| MCHT24H48 | 0.4 | 48 |
| MCRP24H48 | 1.0 | 48 |
| MCSP24H48 | 3.0 | 48 |
| MCMP24H48 | 5.0 | 48 |
| MCEP24H48 | 8.0 | 48 |
| BD Falcon | Materiale della membrana | Dimensione dei pori [µm] | Densità dei pori [cm-2] | Proprietà ottiche della membrana | Piastra TC (#pozzetti) |
| 353095 | PET | 0.4 | 2.0 ± 0.2 x 106 | trasparente | 24 |
| 353104 | PET | 1.0 | 1.6 ± 0.6 x 106 | trasparente | 24 |
| 353096 | PET | 3.0 | 8 ± 2 x 105 | trasparente | 24 |
| 353097 | PET | 8.0 | 6 ± 2 x 104 | traslucido | 24 |
| 353495 | PET | 0.4HD | 100 ± 10 x 106 | traslucido | 24 |
| 353492 | PET | 3.0HD | 2.0 ± 0.2 x 105 | traslucido | 24 |
Shaban, M. S., Müller, C., Mayr-Buro, C., Weiser, H., Meier-Soelch, J., Albert, B. V., … Kracht, M. (2021). Inibizione multilivello della replicazione del coronavirus mediante stress chimico del reticolo endoplasmatico. Nature Communications 2021 12:1, 12(1), 1–20. https://doi.org/10.1038/s41467-021-25551-1
Robinot, R., Hubert, M., de Melo, G. D., Lazarini, F., Bruel, T., Smith, N., … Chakrabarti, L. A. (2021). L’infezione da SARS-CoV-2 induce la dedifferenziazione delle cellule multiciliate e compromette la clearance mucociliare. Nature Communications 2021 12:1, 12(1), 1–16. https://doi.org/10.1038/s41467-021-24521-x
Pongkorpsakol, P., Turner, J. R., & Zuo, L. (2020). Coltura di monostrati di cellule epiteliali intestinali e loro utilizzo in saggi multiplex di permeabilità macromolecolare per l’analisi in vitro della selettività dimensionale delle giunzioni strette. Current Protocols in Immunology, 131(1). https://doi.org/10.1002/cpim.112
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