POMPE A SIRINGA ALADDIN

Nell’ampio panorama delle linee cellulari studiate negli ambienti preclinici degli organ-on-a-chip (OOC), sono disponibili numerose soluzioni di pompaggio di fascia alta, media e base. Sebbene possano essere interessanti diverse soluzioni di fascia alta, che offrono la massima precisione di flusso (entro l’1%) per periodi di osservazione prolungati, questo livello di precisione potrebbe non essere indispensabile per ottenere la confluenza con tutte le linee cellulari, aprendo la strada a risultati promettenti per molti utenti finali che desiderano semplificare i propri flussi di lavoro.

Scopri i diversi modi in cui la linea di pompe a siringa Aladdin di WPI ha risposto alle esigenze dei laboratori e degli organ-on-a-chip:

1. Abbasi, R., LeFevre, T. B., Benjamin, A. D., Thornton, I. J., & Wilking, J. N. (2021). Accoppiamento del flusso del fluido ai dispositivi fluidici in idrogel con connessioni reversibili "pop-it". Lab on a Chip, 21(10), 2050–2058. https://doi.org/10.1039/d1lc00135c
2. Busek, M., Nøvik, S., Aizenshtadt, A., Amirola-Martinez, M., Combriat, T., Grünzner, S., & Krauss, S. (2021). Dispositivi ibridi in elastomero termoplastico (TPE)-poli(metilmetacrilato) (PMMA) per il pompaggio attivo di sistemi organ-on-a-chip senza PDMS. Biosensors, 11(5), 162. https://doi.org/10.3390/bios11050162
3. Carvalho, D. J., Kip, A. M., Romitti, M., Nazzari, M., Tegel, A., Stich, M., Krause, C., Caiment, F., Costagliola, S., Moroni, L., & Giselbrecht, S. (2023). Tiroide-on-a-Chip: una piattaforma organoide per la valutazione in vitro dell'interferenza endocrina. Advanced healthcare materials, 12(8), e2201555. https://doi.org/10.1002/adhm.202201555
4. Chen, Z., Huang, J., Zhang, J., Xu, Z., Li, Q., Ouyang, J., Yan, Y., Sun, S., Ye, H., Wang, F., Zhu, J., Wang, Z., Chao, J., Pu, Y., & Gu, Z. (2023). Una tempesta in una tazza -- Un sistema microfisiologico polmonare biomimetico combinato con un algoritmo di apprendimento profondo per monitorare le reazioni patologiche e infiammatorie polmonari. Biosensors & Bioelectronics, 219, 114772. https://doi.org/10.1016/j.bios.2022.114772
5. Conde, A. J., Keraite, I., Ongaro, A. E., & Kersaudy-Kerhoas, M. (2020). Micromiscelatore acustico ibrido versatile con dimostrazione dell'estrazione di DNA libero circolante da campioni di plasma inferiori a un ml. Lab on a Chip, 20(4), 741–748. https://doi.org/10.1039/c9lc01130g
6. Deli, M.A., Porkoláb, G., Kincses, A., Mészáros, M., Szecskó, A., Kocsis, A.E., Vigh, J.P., Valkai, S., Veszelka, S., Walter, F.R., & Dér, A. Modelli lab-on-a-chip della barriera emato-encefalica: evoluzione, problemi, prospettive. Lab on a Chip, 24(5), 1030-1063. https://doi.org/10.1039/D3LC00996C
7. Elitas, M., Dhar, N., & McKinney, J. D. (2021). Rivelazione della tolleranza agli antibiotici del mutante Mycobacterium smegmatis della permeasi xantina/uracile tramite microfluidica e analisi di singole cellule. Antibiotics (Basel), 10(7), 794. https://doi.org/10.3390/antibiotics10070794
8. Liu, E.Y., Jung, S., Weitz, D.A., Yi, H., & Choi, C.H. (2018). Produzione microfluidica ad alta produttività di microsfere di idrogel basata su doppie emulsioni, con funzionalità chimiche regolabili per la coniugazione biomolecolare. Lab on a Chip, 18(2), 323-334. https://doi.org/10.1039/C7LC01088E
9. Mazzarda, F., D'Elia, A., Massari, R., De Ninno, A., Bertani, F. R., Businaro, L., Ziraldo, G., Zorzi, V., Nardin, C., Peres, C., Chiani, F., Tettey-Matey, A., Raspa, M., Scavizzi, F., Soluri, A., Salvatore, A. M., Yang, J., & Mammano, F. (2020). Il modello organ-on-chip mostra che il rilascio di ATP attraverso gli emicanali della connessina guida la segnalazione spontanea di Ca2+ nelle cellule non sensoriali della cresta epiteliale superiore nella coclea in via di sviluppo. Lab on a Chip, 20(16), 3011–3023. https://doi.org/10.1039/d0lc00427h
10. McMillan, K.S., Boyd, M., & Zagnoni, M. (2016). Transizione dalla microfluidica multifase a quella monofase per la coltura e il trattamento a lungo termine di sferoidi multicellulari. Lab on a Chip, 16(18), 3548-3557. https://doi.org/10.1039/C6LC00884D
11. Nguyen, A., Brandt, M., Muenker, T. M., & Betz, T. (2021). La micror reologia a multi-oscillazione tramite spettroscopia di forza acustica consente misurazioni dipendenti dalla frequenza su cellule endoteliali ad alta produttività. Lab on a Chip, 21(10), 1929–1947. https://doi.org/10.1039/d0lc01135e
12. Protopapa, G., Bono, N., Visone, R., D'Alessandro, F., Rasponi, M., & Candiani, G. (2023). Una nuova piattaforma microfluidica per la preparazione altamente riproducibile di complessi per la somministrazione genica non virale. Lab on a Chip, 23(1), 136-145. https://doi.org/10.1039/D2LC00744D
13. Stanley, C.E., Shrivastava, J., Brugman, R., Heinzelmann, E., van Swaay, D., & Grossmann, G. (2018). Dual-flow-RootChip rivela gli adattamenti locali delle radici all'asimmetria ambientale a livello fisiologico e genetico. New Phytol, 217(3): 1357-1369. https://doi.org/10.1111/nph.14887
14. Wang, Y., Deng, R., Yanga, L., & Bain, C.D. (2019). Fabbricazione di monostrati di particelle polimeriche uniformi mediante stampa a getto d'inchiostro di emulsioni monodisperse prodotte tramite microfluidica. Lab on a Chip, 19(18), 3077-3085. https://doi.org/10.1039/C9LC00588A
15. Wang, H., Enders, A., Preuss, J. A., Bahnemann, J., Heisterkamp, A., & Torres-Mapa, M. L. (2021). Dispositivo microfluidico lab-on-a-chip stampato in 3D per la manipolazione ottica a doppio fascio basata su fibre. Scientific Reports, 11(1), 14584. https://doi.org/10.1038/s41598-021-93205-9
16. Zecong, F., Ding, Y., Zhang, Z., Wang, F., Wang, Z., Wange, H., & Pan, T. (2020). Contatore digitale microfluidico su chip. Lab on a Chip, 20(4), 722-733. https://doi.org/10.1039/C9LC00989B
17. Zhuang, Y., Cheng, S., Kovalchuk, N.M., Simmons, M.J., Matar, O.K., Guo, Y., & Arcucci, R. (2022). Assimilazione latente d'insieme con modello surrogato di deep learning: applicazione all'interazione tra gocce in un dispositivo microfluidico. Lab on a Chip, 22(17), 3187-3202. https://doi.org/10.1039/D2LC00303A