UltraMicroPompe UMP3

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UMP3-1


Système

Prix valables uniquement aux États-Unis, au Canada et à Porto Rico.

Avec son contrôleur numérique, l'UltraMicroPump III peut injecter de manière répétée aussi peu que 25nL. Les seringues peuvent être remplies à l'extérieur puis insérées dans la pompe ou remplies par l'avant tout en étant montées sur la pompe.

Compatible avec toutes les seringues en verre microlitre commercialement disponibles majeures telles que : NanoFil de WPI™, Hamilton, SGE et ILS.

**Pour une expérience optimale sans fuite de gaz et sans volume mort, découvrez la seringue NanoFil™ de WPI et aiguille système. Découvrez pourquoi notre système de seringue est un révolutionnaire pour un ciblage d'échantillon contrôlé— et un design unique en son genre.

ACCESSOIRES




Détails

Caractéristiques

  • Injecteur à pompe à microseringue UMP3 polyvalent, utilisant des microseringues pour distribuer des volumes en microlitres et en nanolitres
  • Les seringues s’installent facilement : il suffit d’enclencher le corps dans les pinces
  • Une tige filetée entraîne le piston de la seringue, permettant un mouvement fluide et précis

Garantie premium disponible

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Options

Code de commande Description
UMP3 Tête de pompe UMP3 seule, sans contrôleur
UMP3-1 Une pompe UMP3 avec contrôleur
UMP3-2 Deux pompes UMP3 avec contrôleur
UMP3-3 Trois pompes UMP3 avec contrôleur
UMP3-4 Quatre pompes UMP3 avec contrôleur
SYS-MICRO4 Contrôleur à 4 canaux UNIQUEMENT


REMARQUE : UMP3 La pompe à seringue de micro-injection comprend uniquement la tête de pompe. Pour plus d’informations sur le contrôleur, consultez Micro4. 

Volumes nanolitriques

Grâce à son contrôleur numérique, l’UltraMicroPump III peut distribuer seulement 600 picolitres par avance incrémentielle du piston de la seringue (avec une seringue de 0,5 μL). Les seringues peuvent être remplies à l’extérieur, puis insérées dans la pompe, ou remplies lorsqu’elles sont installées dans la pompe. Les fluides injectés ou retirés restent entièrement dans la microseringue, afin de maintenir un faible volume mort de fluide dans la micropompe.

Positionnement

Pour le positionnement, l’UltraMicroPump III peut être fixé à l’un des plusieurs micromanipulateurs WPI, tels que le M3301 (manuel), le DC3001 (motorisé) ou tout manipulateur stéréotaxique manuel.

Contrôleur intelligent

Un contrôleur à microprocesseur, le MICRO4, constitue un composant essentiel du système de pompe à seringue de micro-injection UMPIII. Il fournit une interface « intelligente » et facile à utiliser pour contrôler jusqu’à quatre pompes à seringue. Les paramètres de fonctionnement se règlent à l’aide du clavier à membrane et de l’écran LCD. Le clavier permet de sélectionner les fonctions suivantes :

  • régler la pompe à seringue microlitres en mode injection ou retrait
  • saisir le volume à injecter ou à retirer, le débit et le type de seringue
  • synchroniser le démarrage et l’arrêt de toute combinaison de pompes à seringue

Les paramètres utilisateur peuvent être stockés dans la mémoire « non volatile » du contrôleur pour être rappelés instantanément à la mise sous tension de l’appareil. Un pédalier en option peut être branché sur un connecteur situé à l’arrière du contrôleur afin de permettre le démarrage et l’arrêt « mains libres ».

Commande par ordinateur

Un port RS-232 situé à l’arrière du contrôleur peut être utilisé pour le connecter à un ordinateur et le piloter à l’aide de programmes de commande informatique.

Le 503207 Le kit est idéal pour être utilisé avec une pompe à seringue de micro-injection UMP3, comme illustré ci-dessous.

Le kit 503207 est idéal pour être utilisé avec un UMP3

 

Les images suivantes présentent différentes configurations pour la micro-injection. Gardez à l’esprit que les pièces sont interchangeables. Par exemple :

  • La base magnétique M10 ou M9 peut être utilisée.
  • Le microscope PZMIV peut être utilisé à la place du PZMIII.
  • Les micromanipulateurs M330l ou KITE peuvent être utilisés et placés de chaque côté. (Notez toutefois que si vous souhaitez utiliser un KITE du côté droit de la configuration ci-dessous, vous devez commander un KITE-R (main droite), ou si vous souhaitez utiliser un M3301 du côté gauche, vous devez commander un M3301-L.)
  • Les bases magnétiques 5479 ou 5052 sont pratiquement interchangeables.
  • Un ou deux systèmes Nanoliter, un ou deux systèmes UMPIII, ou un système Nanoliter et un système UMPIII peuvent être utilisés, selon les besoins.

UN NANOLITRE/UN UMP3-1

UN NANOLITRE/UN UMP3-1

 

UN UMP3-1

UN UMP3-1

Ressources

Manuel d’instructions de l’UMP3 avec MICRO4


Feuille de calcul du volume de la seringue - Utilisez cette feuille de calcul .XLS pour calculer le volume de votre seringue lorsque vous utilisez un UMP3, un DMP, un MMP ou un PV820/PV830.

Spécifications

Mode normal

Nombre total de pas 20 000 (course de 63 mm)
Volume minimal de distribution 25 nL
Déplacement linéaire par pas 3,175 μm
Poids 325 g (11,5 oz)
Diamètres des tiges de montage 7,9 mm (0,31 po)
Exigences d’alimentation du contrôleur 2 A, 12 VCC
Dimensions Ø32 mm x 190 mm (1,3 po x 7,5 po)

Mode micro-pas

La précision est multipliée par huit.

Références

Zhou, Z., Luther, N., Singh, R., Boockvar, J. A., Souweidane, M. M., & Greenfield, J. P. (2017). Les sphéroïdes de glioblastome produisent des gliomes infiltrants dans le tronc cérébral du rat. Child’s Nervous System, 1–10. http://doi.org/10.1007/s00381-017-3344-y

Ye, H.-L., Li, D.-R., Yang, J.-S., Chen, D.-F., De Vos, S., Vuylsteke, M., … Yang, W.-J. (2017). Caractérisation moléculaire et analyses fonctionnelles d’un gène apparenté au récepteur de l’hormone de diapause chez Artemia parthénogénétique. Peptides. http://doi.org/10.1016/j.peptides.2017.01.008

Wofford, K. L., Harris, J. P., Browne, K. D., Brown, D. P., Grovola, M. R., Mietus, C. J., … Cullen, D. K. (2017). Réponse neuro-inflammatoire rapide localisée aux neurones lésés après un traumatisme crânien diffus chez le porc. Experimental Neurology, 290, 85–94. http://doi.org/10.1016/j.expneurol.2017.01.004

Qi, Y., Purtell, L., Fu, M., Zhang, L., Zolotukhin, S., Campbell, L., & Herzog, H. (2017). La réintroduction spécifique de Snord116 dans l’hypothalamus de souris autrement dépourvues de Snord116 augmente la dépense énergétique. Journal of Neuroendocrinology. http://doi.org/10.1111/jne.12457

Mosberger, A. C., Miehlbradt, J. C., Bjelopoljak, N., Schneider, M. P., Wahl, A.-S., Ineichen, B. V., … Schwab, M. E. (2017). Les neurones corticospinaux axotomisés augmentent l’innervation supralésionnelle et restent essentiels pour atteindre des objets avec précision après une pyramidotomie bilatérale. Cerebral Cortex, 137, 1716–1732. http://doi.org/10.1093/cercor/bhw405

Job, M. O., & Kuhar, M. J. (2017). Le peptide CART dans le noyau accumbens régule les psychostimulants : corrélations entre les effets des psychostimulants et du peptide CART. Neuroscience, 348, 135–142. http://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2017.02.012

Eleftheriadou, I., Dieringer, M., Poh, X. Y., Sanchez-Garrido, J., Gao, Y., Sgourou, A., … Mazarakis, N. D. (2017). Transduction sélective de sous-populations astrocytaires et neuronales du SNC par des vecteurs lentiviraux pseudotypés avec l’enveloppe du virus Chikungunya. Biomaterials, 123, 1–14. http://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2017.01.023

Augestad, I. L., Nyman, A. K. G., Costa, A. I., Barnett, S. C., Sandvig, A., Håberg, A. K., & Sandvig, I. (2017). Effets de la co-transplantation de cellules souches neurales et de cellules engainantes olfactives sur le remodelage tissulaire après une ischémie cérébrale focale transitoire chez le rat adulte. Neurochemical Research, 1–11. http://doi.org/10.1007/s11064-016-2098-3

Lin, P., Fang, Z., Liu, J., & Lee, J. H. (2016). IRM fonctionnelle optogénétique. Journal of Visualized Experiments, (110), e53346–e53346. http://doi.org/10.3791/53346

Vacca, O., El Mathari, B., Darche, M., Sahel, J.-A., Rendon, A., & Dalkara, D. (2015). Utilisation du virus adéno-associé comme outil pour étudier les barrières rétiniennes dans les maladies. Journal of Visualized Experiments, (98), e52451–e52451. http://doi.org/10.3791/52451

Lai, J., Legault, M.-A., Thomas, S., & Casanova, C. (2015). Enregistrement électrophysiologique simultané et micro-injections d’agents inhibiteurs dans le cerveau des rongeurs. Journal of Visualized Experiments, (101), e52271–e52271. http://doi.org/10.3791/52271

Robinson, S., & Adelman, J. S. (2015). Méthode pour réduire au silence à distance l’activité neuronale chez les rongeurs pendant des phases distinctes de l’apprentissage. Journal of Visualized Experiments, (100), e52859–e52859. http://doi.org/10.3791/52859

Platt, R. J., Chen, S., Zhou, Y., Yim, M. J., Swiech, L., Kempton, H. R., … Zhang, F. (2014). Souris knock-in CRISPR-Cas9 pour l’édition du génome et la modélisation du cancer. Cell, 159(2), 440–55. http://doi.org/10.1016/j.cell.2014.09.014

Pierce, A. M., & Keating, A. K. (2014). Création de xénogreffes intracrâniennes anatomiquement précises et reproductibles de tumeurs cérébrales humaines. Journal of Visualized Experiments, (91), e52017–e52017. http://doi.org/10.3791/52017

Paveliev, M., Kislin, M., Molotkov, D., Yuryev, M., Rauvala, H., & Khiroug, L. (2014). Traumatisme cérébral aigu chez la souris suivi d’une imagerie longitudinale à deux photons. Journal of Visualized Experiments : JoVE, (avril), 1–8. http://doi.org/10.3791/51559

Nakamura, S., Baratta, M. V., & Cooper, D. C. (2013). Méthode pour un contrôle optogénétique haute fidélité de neurones pyramidaux individuels <em>In vivo</em> Journal of Visualized Experiments, (79), e50291–e50291. http://doi.org/10.3791/50291

Inquimbert, P., Moll, M., Kohno, T., & Scholz, J. (2013). Injection stéréotaxique d’un vecteur viral pour la manipulation conditionnelle de gènes dans la moelle épinière de la souris. Journal of Visualized Experiments, (73), e50313–e50313. http://doi.org/10.3791/50313

Hewing, N. J., Weskamp, G., Vermaat, J., Farage, E., Glomski, K., Swendeman, S., … Blobel, C. P. (2013). L’injection intravitréenne de TIMP3 ou de l’inhibiteur de l’EGFR, l’erlotinib, protège contre la rétinopathie induite par l’oxygène chez la souris. Investigative Ophthalmology & Visual Science, 54(1), 864–70. http://doi.org/10.1167/iovs.12-10954

Salt, A. N., Hartsock, J. J., Gill, R. M., Piu, F., & Plontke, S. K. (2012). Pharmacocinétique périlymphatique de marqueurs et de dexaméthasone administrés et prélevés au niveau du canal semi-circulaire latéral. Journal of the Association for Research in Otolaryngology, 13(6), 771–783. http://doi.org/10.1007/s10162-012-0347-y

Nickerson, J. M., Goodman, P., Chrenek, M. A., Bernal, C. J., Berglin, L., Redmond, T. M., & Boatright, J. H. (2012). Administration sous-rétinienne et électroporation dans les yeux de souris adultes pigmentés et non pigmentés. Methods in Molecular Biology (Clifton, N.J.), 884, 53–69. http://doi.org/10.1007/978-1-61779-848-1_4

Beier, K., & Cepko, C. (2012). Traçage viral des circuits neuronaux définis génétiquement. Journal of Visualized Experiments, (68), e4253–e4253. http://doi.org/10.3791/4253

Goel, M., Sienkiewicz, A. E., Picciani, R., Wang, J., Lee, R. K. et Bhattacharya, S. K. (2012). La cochline, la régulation de la pression intraoculaire et la mécanosensation. PloS One, 7(4), e34309. http://doi.org/10.1371/journal.pone.0034309

Abdelwahab, M. G., Sankar, T., Preul, M. C. et Scheck, A. C. (2011). Implantation intracrânienne suivie d’une imagerie bioluminescente 3D In Vivo de gliomes murins. Journal of Visualized Experiments, (57), e3403–e3403. http://doi.org/10.3791/3403

Lowery, R. L. et Majewska, A. K. (2010). Injection intracrânienne de vecteurs viraux associés à l’adénovirus. Journal of Visualized Experiments, (45), e2140–e2140. http://doi.org/10.3791/2140

Kinkel, M. D., Eames, S. C., Philipson, L. H. et Prince, V. E. (2010). Injection intrapéritonéale chez le poisson-zèbre adulte. Journal of Visualized Experiments : JoVE, (42), e2126. http://doi.org/10.3791/2126

Molotkov, D. A., Yukin, A. Y., Afzalov, R. A. et Khiroug, L. S. (2010). Délivrance génique au cerveau de rat après la naissance par injection et électroporation plasmidiques non ventriculaires. Journal of Visualized Experiments, (43), e2244–e2244. http://doi.org/10.3791/2244

Marker, D. F., Tremblay, M.-E., Lu, S.-M., Majewska, A. K. et Gelbard, H. A. (2010). Technique de fenêtre à crâne aminci pour l’imagerie chronique à deux photons In vivo de la microglie murine dans des modèles de neuroinflammation. Journal of Visualized Experiments, (43), e2059–e2059. http://doi.org/10.3791/2059

Eames, S. C., Philipson, L. H., Prince, V. E. et Kinkel, M. D. (2010). La mesure de la glycémie chez le poisson-zèbre révèle la dynamique de l’homéostasie du glucose. Zebrafish, 7(2), 205–13. http://doi.org/10.1089/zeb.2009.0640

Jasnow, A. M., Rainnie, D. G., Maguschak, K. A., Chhatwal, J. P. et Ressler, K. J. (2009). Construction de lentivirus dotés de promoteurs spécifiques à certains types cellulaires pour guider optiquement les enregistrements électrophysiologiques et assurer une délivrance génique ciblée (p. 199–213). http://doi.org/10.1007/978-1-59745-559-6_13

Christiana J. Johnson, Lennart Berglin, Micah A. Chrenek, T. M. Redmond, Jeffrey H. Boatright, J. M. N. (2008). Note technique : injection sous-rétinienne et électroporation dans les yeux de souris adultes. Molecular Vission, 14, 2211–2226. Consulté à l’adresse http://www.molvis.org/molvis/v14/a259/

Takayama, K., Torashima, T., Horiuchi, H. et Hirai, H. (2008). Transduction préférentielle des cellules de Purkinje par des vecteurs lentiviraux dotés du promoteur du virus des cellules souches murines. Neuroscience Letters (vol. 443).

Torashima, T., Yamada, N., Itoh, M., Yamamoto, A. et Hirai, H. (2006). L’exposition de vecteurs lentiviraux à un pH inférieur au pH neutre déplace le tropisme des cellules de Purkinje vers la glie de Bergmann. European Journal of Neuroscience, 24(2), 371–380. http://doi.org/10.1111/j.1460-9568.2006.04927.x

Torashima, T., Okoyama, S., Nishizaki, T. et Hirai, H. (2006). Transduction in vivo des cellules de Purkinje cérébelleuses murines par des vecteurs lentiviraux dérivés du VIH. Brain Research, 1082(1), 11–22. http://doi.org/10.1016/j.brainres.2006.01.104

Dancause, N., Barbay, S., Frost, S. B., Plautz, E. J., Chen, D., Zoubina, E. V, … Nudo, R. J. (s. d.) (2005). Développement/Plasticité/Réparation : réorganisation corticale étendue après une lésion cérébrale. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.3256-05.2005

Cherezov, V., Peddi, A., Muthusubramaniam, L., Zheng, Y. F. et Caffrey, M. (2004). Système robotisé pour la cristallisation de protéines membranaires et solubles dans des mésophases lipidiques. Acta Crystallographica Section D Biological Crystallography, 60(10), 1795–1807. http://doi.org/10.1107/S0907444904019109

Bernd, A. S., Aihara, M., Lindsey, J. D. et Weinreb, R. N. (2004). Influence du poids moléculaire sur le déplacement intracamérulaire du dextran vers le segment postérieur de l’œil de souris. Investigative Opthalmology & Visual Science, 45(2), 480. http://doi.org/10.1167/iovs.03-0462

Shawgo, R. S. (2004). Activation in vivo et biocompatibilité d’un dispositif MEMS de délivrance de médicaments à micro-réservoir. Consulté le 16 novembre 2016, à partir de https://dspace.mit.edu/handle/1721.1/17678

Sturbaum, G. D., Reed, C., Hoover, P. J., Jost, B. H., Marshall, M. M. et Sterling, C. R. (2001). Détection spécifique de l’espèce par PCR nichée et polymorphisme de longueur des fragments de restriction de simples oocystes de Cryptosporidium parvum. MICROBIOLOGIE APPLIQUÉE ET ENVIRONNEMENTALE, 67(6), 2665–2668. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11375178

Nelson, B. P., Grimsrud, T. E., Liles, M. R., Goodman, R. M. et Corn, R. M. (s. d.) (2001). Mesures par imagerie de la résonance des plasmons de surface de l’adsorption de l’hybridation de l’ADN et de l’ARN sur des microréseaux d’ADN. https://doi.org/10.1021/ac0010431


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