¡Se está vendiendo rápido!
Consigue el tuyo mientras puedas.
Tu carrito esta vacío
Seguir comprandoTu carrito
Total estimado
$0.00 USD
¡Envío gratis en pedidos web superiores a $50! (Solo EE. UU. Algunas exclusiones.) ¡Envío gratis en pedidos web superiores a $50! (Solo EE. UU. Algunas exclusiones.)
Ahorra en EVOM™ con los paquetes de Corning®!
UMP3-1
No se pudo cargar la disponibilidad de retiro
Precios válidos solo en EE. UU., Canadá y Puerto Rico.
Con su controlador digital, UltraMicroPump III puede inyectar repetidamente tan solo 25nL. Las jeringas pueden llenarse externamente y luego insertarse en la bomba o llenarse por el frente mientras están montadas en la bomba.
Compatible con todas las principales jeringas de vidrio microlitro comercialmente disponibles, como: NanoFil de WPI™, Hamilton, SGE y jeringas ILS.
**Para la mejor experiencia hermética al gas y sin volumen muerto, consulte el sistema de jeringa NanoFil™ de WPI y con aguja . Descubra por qué nuestro sistema de jeringas es un cambio radical para el diseño de muestreo controlado— y en una clase propia.
Haga clic aquí para ver la ficha técnica actual.
| Código de pedido | Descripción |
| UMP3 | SOLO cabezal de una bomba UMP3, sin controlador |
| UMP3-1 | Una bomba UMP3 con controlador |
| UMP3-2 | Dos bombas UMP3 con controlador |
| UMP3-3 | Tres bombas UMP3 con controlador |
| UMP3-4 | Cuatro bombas UMP3 con controlador |
| SYS-MICRO4 | SOLO controlador de 4 canales |
NOTA: la bomba de jeringa para microinyección UMP3 incluye únicamente el cabezal de la bomba. Para obtener información sobre el controlador, consulte Micro4.
Con su controlador digital, la UltraMicroPump III puede dispensar tan solo 600 picolitros por cada avance incremental del émbolo de la jeringa (con una jeringa de 0,5 μL). Las jeringas se pueden llenar externamente y luego insertarse en la bomba, o llenarse mientras están montadas en la bomba. Los líquidos inyectados o extraídos permanecen completamente dentro de la microsiringa para mantener un volumen muerto de líquido reducido en la microp bomba.
Para el posicionamiento, la UltraMicroPump III se puede acoplar a cualquiera de varios micromanipuladores de WPI, como el M3301 (manual), el DC3001 (motorizado) o cualquier manipulador estereotáxico manual.
Un componente integral del sistema de bomba de jeringa para microinyección UMPIII es el controlador MICRO4, basado en microprocesador, que ofrece una interfaz «inteligente» y fácil de usar para hasta cuatro bombas de jeringa. Los parámetros de funcionamiento se configuran con el teclado de membrana y la pantalla LCD. Desde el teclado se pueden seleccionar las siguientes funciones:
Los parámetros del usuario se pueden almacenar en la memoria «no volátil» del controlador para recuperarlos al instante cuando se encienda la unidad. Se puede conectar un interruptor de pedal opcional a un conector en la parte posterior del controlador para iniciar/detener la operación «con las manos libres».
Se puede utilizar un puerto RS-232 en la parte posterior del controlador para conectarlo a una computadora y usar programas de control por computadora.
El kit 503207 es ideal para trabajar con una bomba de jeringa para microinyección UMP3, como se muestra a continuación.

Las siguientes imágenes muestran varios montajes para microinyección. Tenga en cuenta que las piezas son intercambiables. Por ejemplo:


Manual de instrucciones del UMP3 con MICRO4
Hoja de cálculo para calcular el volumen de la jeringa - Use esta hoja de cálculo .XLS para calcular el volumen de su jeringa cuando utilice un UMP3, DMP, MMP o PV820/PV830.
| Número total de pasos | 20,000 (recorrido de 63mm) |
| Volumen mínimo de dispensación | 25nL |
| Movimiento lineal por paso | 3.175μm |
| Peso | 325g (11.5 oz.) |
| Diámetros de las varillas de montaje | 7.9mm (0.31 in.) |
| Requisitos de alimentación del controlador | 2A, 12VDC |
| Dimensiones | Ø32mm x 190mm (1.3 in. x 7.5 in.) |
La precisión aumenta ocho veces.
Zhou, Z., Luther, N., Singh, R., Boockvar, J. A., Souweidane, M. M., & Greenfield, J. P. (2017). Los esferoides de glioblastoma producen gliomas infiltrantes en el tronco encefálico de la rata. Child’s Nervous System, 1–10. http://doi.org/10.1007/s00381-017-3344-y
Ye, H.-L., Li, D.-R., Yang, J.-S., Chen, D.-F., De Vos, S., Vuylsteke, M., … Yang, W.-J. (2017). Caracterización molecular y análisis funcionales de un gen similar al receptor de la hormona de diapausa en Artemia partenogenética. Peptides. http://doi.org/10.1016/j.peptides.2017.01.008
Wofford, K. L., Harris, J. P., Browne, K. D., Brown, D. P., Grovola, M. R., Mietus, C. J., … Cullen, D. K. (2017). Respuesta neuroinflamatoria rápida localizada en las neuronas lesionadas tras un traumatismo craneoencefálico difuso en cerdos. Experimental Neurology, 290, 85–94. http://doi.org/10.1016/j.expneurol.2017.01.004
Qi, Y., Purtell, L., Fu, M., Zhang, L., Zolotukhin, S., Campbell, L., & Herzog, H. (2017). La reintroducción específica en el hipotálamo de Snord116 en ratones con deficiencia de Snord116 aumentó el gasto energético. Journal of Neuroendocrinology. http://doi.org/10.1111/jne.12457
Mosberger, A. C., Miehlbradt, J. C., Bjelopoljak, N., Schneider, M. P., Wahl, A.-S., Ineichen, B. V., … Schwab, M. E. (2017). Las neuronas corticoespinales axotomizadas aumentan la inervación supralesional y siguen siendo cruciales para el alcance preciso tras una piramidotomía bilateral. Cerebral Cortex, 137, 1716–1732. http://doi.org/10.1093/cercor/bhw405
Job, M. O., & Kuhar, M. J. (2017). El péptido CART en el núcleo accumbens regula los psicoestimulantes: correlaciones entre los efectos de los psicoestimulantes y del péptido CART. Neuroscience, 348, 135–142. http://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2017.02.012
Eleftheriadou, I., Dieringer, M., Poh, X. Y., Sanchez-Garrido, J., Gao, Y., Sgourou, A., … Mazarakis, N. D. (2017). Transducción selectiva de subpoblaciones astrocíticas y neuronales del SNC mediante vectores lentivirales pseudotipados con la envoltura del virus chikungunya. Biomaterials, 123, 1–14. http://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2017.01.023
Augestad, I. L., Nyman, A. K. G., Costa, A. I., Barnett, S. C., Sandvig, A., Håberg, A. K., & Sandvig, I. (2017). Efectos de los cotrasplantes de células madre neurales y células envolventes olfativas en la remodelación tisular tras una isquemia cerebral focal transitoria en la rata adulta. Neurochemical Research, 1–11. http://doi.org/10.1007/s11064-016-2098-3
Lin, P., Fang, Z., Liu, J., & Lee, J. H. (2016). Resonancia magnética funcional optogenética. Journal of Visualized Experiments, (110), e53346–e53346. http://doi.org/10.3791/53346
Vacca, O., El Mathari, B., Darche, M., Sahel, J.-A., Rendon, A., & Dalkara, D. (2015). Uso del virus adenoasociado como herramienta para estudiar las barreras retinianas en enfermedades. Journal of Visualized Experiments, (98), e52451–e52451. http://doi.org/10.3791/52451
Lai, J., Legault, M.-A., Thomas, S., & Casanova, C. (2015). Registro electrofisiológico e inyecciones simultáneos de agentes inhibidores en el cerebro de roedores. Journal of Visualized Experiments, (101), e52271–e52271. http://doi.org/10.3791/52271
Robinson, S., & Adelman, J. S. (2015). Un método para silenciar de forma remota la actividad neuronal en roedores durante fases discretas del aprendizaje. Journal of Visualized Experiments, (100), e52859–e52859. http://doi.org/10.3791/52859
Platt, R. J., Chen, S., Zhou, Y., Yim, M. J., Swiech, L., Kempton, H. R., … Zhang, F. (2014). Ratones knock-in CRISPR-Cas9 para la edición del genoma y el modelado del cáncer. Cell, 159(2), 440–55. http://doi.org/10.1016/j.cell.2014.09.014
Pierce, A. M., & Keating, A. K. (2014). Creación de xenoinjertos intracraneales anatómicamente precisos y reproducibles de tumores cerebrales humanos. Journal of Visualized Experiments, (91), e52017–e52017. http://doi.org/10.3791/52017
Paveliev, M., Kislin, M., Molotkov, D., Yuryev, M., Rauvala, H., & Khiroug, L. (2014). Traumatismo cerebral agudo en ratones seguido de obtención de imágenes longitudinales de dos fotones. Journal of Visualized Experiments : JoVE, (abril), 1–8. http://doi.org/10.3791/51559
Nakamura, S., Baratta, M. V., & Cooper, D. C. (2013). Un método para el control optogenético de alta fidelidad de neuronas piramidales individuales <em>in vivo</em> Journal of Visualized Experiments, (79), e50291–e50291. http://doi.org/10.3791/50291
Inquimbert, P., Moll, M., Kohno, T., & Scholz, J. (2013). Inyección estereotáxica de un vector viral para la manipulación génica condicional en la médula espinal del ratón. Journal of Visualized Experiments, (73), e50313–e50313. http://doi.org/10.3791/50313
Hewing, N. J., Weskamp, G., Vermaat, J., Farage, E., Glomski, K., Swendeman, S., … Blobel, C. P. (2013). La inyección intravítrea de TIMP3 o del inhibidor de EGFR erlotinib ofrece protección contra la retinopatía inducida por oxígeno en ratones. Investigative Ophthalmology & Visual Science, 54(1), 864–70. http://doi.org/10.1167/iovs.12-10954
Salt, A. N., Hartsock, J. J., Gill, R. M., Piu, F., & Plontke, S. K. (2012). Farmacocinética perilinfática de marcadores y dexametasona aplicados y muestreados en el canal semicircular lateral. Journal of the Association for Research in Otolaryngology, 13(6), 771–783. http://doi.org/10.1007/s10162-012-0347-y
Nickerson, J. M., Goodman, P., Chrenek, M. A., Bernal, C. J., Berglin, L., Redmond, T. M., & Boatright, J. H. (2012). Administración subretiniana y electroporación en ojos de ratones adultos pigmentados y no pigmentados. Methods in Molecular Biology (Clifton, N.J.), 884, 53–69. http://doi.org/10.1007/978-1-61779-848-1_4
Beier, K., & Cepko, C. (2012). Trazado viral de circuitos neuronales definidos genéticamente. Journal of Visualized Experiments, (68), e4253–e4253. http://doi.org/10.3791/4253
Goel, M., Sienkiewicz, A. E., Picciani, R., Wang, J., Lee, R. K., & Bhattacharya, S. K. (2012). Cochlin, regulación de la presión intraocular y mecanosensibilidad. PloS One, 7(4), e34309. http://doi.org/10.1371/journal.pone.0034309
Abdelwahab, M. G., Sankar, T., Preul, M. C., & Scheck, A. C. (2011). Implantación intracraneal con posterior obtención de imágenes bioluminiscentes 3D <em>in vivo</em> de gliomas murinos. Journal of Visualized Experiments, (57), e3403–e3403. http://doi.org/10.3791/3403
Lowery, R. L., & Majewska, A. K. (2010). Inyección intracraneal de vectores virales adenoasociados. Journal of Visualized Experiments, (45), e2140–e2140. http://doi.org/10.3791/2140
Kinkel, M. D., Eames, S. C., Philipson, L. H., & Prince, V. E. (2010). Inyección intraperitoneal en peces cebra adultos. Journal of Visualized Experiments : JoVE, (42), e2126. http://doi.org/10.3791/2126
Molotkov, D. A., Yukin, A. Y., Afzalov, R. A., & Khiroug, L. S. (2010). Transferencia génica al cerebro de ratas posnatales mediante inyección plasmídica no ventricular y electroporación. Journal of Visualized Experiments, (43), e2244–e2244. http://doi.org/10.3791/2244
Marker, D. F., Tremblay, M.-E., Lu, S.-M., Majewska, A. K., & Gelbard, H. A. (2010). Técnica de ventana de cráneo delgado para obtener imágenes crónicas de microglía murina <em>in vivo</em> mediante dos fotones en modelos de neuroinflamación. Journal of Visualized Experiments, (43), e2059–e2059. http://doi.org/10.3791/2059
Eames, S. C., Philipson, L. H., Prince, V. E., & Kinkel, M. D. (2010). La medición del azúcar en sangre en el pez cebra revela la dinámica de la homeostasis de la glucosa. Zebrafish, 7(2), 205–13. http://doi.org/10.1089/zeb.2009.0640
Jasnow, A. M., Rainnie, D. G., Maguschak, K. A., Chhatwal, J. P., & Ressler, K. J. (2009). Construcción de lentivirus con promotores específicos de tipo celular para guiar ópticamente registros electrofisiológicos y para la administración dirigida de genes (pp. 199–213). http://doi.org/10.1007/978-1-59745-559-6_13
Christiana J. Johnson, Lennart Berglin, Micah A. Chrenek, T.M. Redmond, Jeffrey H. Boatright, J. M. N. (2008). Nota técnica: inyección subretiniana y electroporación en ojos de ratones adultos. Molecular Vission, 14, 2211–2226. Consultado en http://www.molvis.org/molvis/v14/a259/
Takayama, K., Torashima, T., Horiuchi, H., & Hirai, H. (2008). Transducción preferencial de células de Purkinje mediante vectores lentivirales con el promotor del virus de células madre murinas. Neuroscience Letters (Vol. 443).
Torashima, T., Yamada, N., Itoh, M., Yamamoto, A., & Hirai, H. (2006). La exposición de vectores lentivirales a un pH subneutral cambia el tropismo de las células de Purkinje a la glía de Bergmann. European Journal of Neuroscience, 24(2), 371–380. http://doi.org/10.1111/j.1460-9568.2006.04927.x
Torashima, T., Okoyama, S., Nishizaki, T., & Hirai, H. (2006). Transducción in vivo de las células de Purkinje cerebelosas murinas mediante vectores lentivirales derivados del VIH. Brain Research, 1082(1), 11–22. http://doi.org/10.1016/j.brainres.2006.01.104
Dancause, N., Barbay, S., Frost, S. B., Plautz, E. J., Chen, D., Zoubina, E. V, … Nudo, R. J. (s. f.) (2005). Desarrollo/plasticidad/reparación: extensa reconexión cortical tras una lesión cerebral. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.3256-05.2005
Cherezov, V., Peddi, A., Muthusubramaniam, L., Zheng, Y. F., & Caffrey, M. (2004). Un sistema robótico para cristalizar proteínas de membrana y solubles en mesofases lipídicas. Acta Crystallographica Section D Biological Crystallography, 60(10), 1795–1807. http://doi.org/10.1107/S0907444904019109
Bernd, A. S., Aihara, M., Lindsey, J. D., & Weinreb, R. N. (2004). Influencia del peso molecular en el movimiento intracameral del dextrano hacia el segmento posterior del ojo del ratón. Investigative Opthalmology & Visual Science, 45(2), 480. http://doi.org/10.1167/iovs.03-0462
Shawgo, R. S. (2004). Activación in vivo y biocompatibilidad de un dispositivo de administración de fármacos con microdepósito MEMS. Consultado el 16 de noviembre de 2016, en https://dspace.mit.edu/handle/1721.1/17678
Sturbaum, G. D., Reed, C., Hoover, P. J., Jost, B. H., Marshall, M. M., & Sterling, C. R. (2001). Detección de ooquistes individuales de Cryptosporidium parvum mediante PCR anidada específica de especie y polimorfismo de longitud de fragmentos de restricción. MICROBIOLOGÍA APLICADA Y AMBIENTAL, 67(6), 2665–2668. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11375178
Nelson, B. P., Grimsrud, T. E., Liles, M. R., Goodman, R. M., & Corn, R. M. (s. f.) (2001). Mediciones de resonancia de plasmones superficiales de la adsorción por hibridación de ADN y ARN en micromatrices de ADN. https://doi.org/10.1021/ac0010431

15867
40500
503301
Múltiples SKUs
Múltiples SKUs
Múltiples SKUs
TBS
Las jeringas tienen una amplia gama de aplicaciones en un entorno de laboratorio debido a su capacidad para medir y dispensar líquidos con precisión. Los usos comunes en laboratorio incluyen transferir volúmenes precisos de muestras líquidas de un recipiente a otro para dilución, mezcla, preparación de reactivos y extracción de muestras. Puede que las esté utilizando para técnicas analíticas, como cromatografía (como cromatografía líquida de alta resolución (HPLC) o cromatografía de gases), espectrofotometría y titulación. Las jeringas se utilizan a menudo para la dosificación precisa y la administración de reactivos durante reacciones químicas y procesos de síntesis, o en la investigación en ciencias de la vida para aspirar medios, añadir factores de crecimiento o nutrientes, y transferir células. En la investigación médica y veterinaria, las jeringas se usan para la inyección o infusión de medicamentos, vacunas o agentes de contraste en modelos animales o cultivos celulares. Los investigadores pueden usar jeringas de laboratorio para recolectar muestras líquidas, especialmente en el monitoreo ambiental, análisis de calidad del agua o recolección de muestras biológicas. En aplicaciones microfluídicas y sistemas lab-on-a-chip, las jeringas son perfectas para el control preciso de volúmenes de fluido y tasas de flujo.
¡Se está vendiendo rápido!
Consigue el tuyo mientras puedas.