EVOM™ Elektrode für TEER

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EVM-EL-03-01-01

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Preise gelten nur in den USA, Kanada und Puerto Rico.

TEER-Messung in einzelnen Cups

Mit dem Widerstandsmessgerät EVOM™ Manual von WPI liefern die Endohm-Kammern reproduzierbare Widerstandsmessungen von Endothel- und Epithelmonolayern in Kulturgefäßen. Übertragen Sie die Gefäße zur Messung aus ihren Kulturwells in die Endohm-Kammer, anstatt Handelektroden zu verwenden. Die Kammer und der Deckel enthalten jeweils ein Paar konzentrischer Elektroden: ein spannungsempfindliches Silber/Silberchlorid-Pellet in der Mitte sowie eine ringförmige Stromelektrode. Die Höhe der oberen Elektrode kann an Zellkulturgefäße verschiedener Hersteller angepasst werden.

Neugierig, wie die EndOhm-Kammer die Reproduzierbarkeit bei TEER-Experimenten verbessert?

Entdecken Sie die Vorteile hier!

Einzelheiten

Für TEER-Messungen von epithelialen und endothelialen Zellkulturen

  • Die neue obere Halterung der EndOhm-Kammer besteht aus Polycarbonat und ist unempfindlich gegenüber Alkohol
  • Die Glaskammer ist leichter zu reinigen und kratzfester als die vorherigen Versionen. Der EndOhm wird aufgrund des Risikos von Glasbruch nicht für den Inkubator empfohlen.
  • Verstellbare Höhe der apikalen Elektrode
  • Kristallklare Glaskammer ermöglicht die Visualisierung der Positionierung der apikalen Elektrode
  • Neuer Einsatzhalter mit 120º-Dreifachstützen für Dreibein-Einsätze
  • Drei Größen decken eine Bandbreite von Well-Cup-Größen verschiedener Hersteller ab
  • Kompatibel mit EVOM3 und EVOM™ Manual

Um die entsprechenden EndOhm-Kammern zu finden, die mit EVOM, EVOM2™ und Millicell® ERS und ERS2 kompatibel sind, besuchen Sie die Produktseite hier.

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Bestellcode Beschreibung
EVM-EL-03-01-01 EndOhm für 6mm Kulturtassen (24 Wells pro Platte)
EVM-EL-03-01-02 EndOhm für 12mm Kulturtassen (12 Wells pro Platte)
EVM-EL-03-01-03 EndOhm für 24mm und Costar Snapwell Kulturtassen (6 Wells pro Platte)

Vorteile

  • Stabilität und Reproduzierbarkeit überlegen gegenüber den STX4-Elektroden mit 1% Toleranz
  • Kann mit 6-, 12- oder 24-Well-Platten mit abnehmbaren Einsätzen verwendet werden
  • Symmetrisches Elektrodenmuster verteilt den Teststrom gleichmäßig
  • Dreibeinige Stützen bieten mechanische Stabilität und die Membran wird parallel zu den Elektroden gehalten
  • Einfache Testprozedur zur Überprüfung der Elektrodenleistung

Anwendungen

  • TEER-Messung für abnehmbare Kulturtassen-Systeme mit EVOM™ Manual-Messgeräten für endotheliale und epitheliale Zellkulturen

EVOM-Handbuch-EndOhm

ENDOHM-Anwendung

Führen Sie präzisere Messungen mit EndOhms durch

Die symmetrisch gegenüberliegenden kreisförmigen Scheibenelektroden von EndOhm, die oberhalb und unterhalb der Membran angeordnet sind, ermöglichen eine gleichmäßigere Stromdichte über die Membran als mit dem einfachen STX4 Elektroden reduziert. Der Hintergrundwiderstand eines leeren Einsatzes wird von 150 Ω (bei Verwendung des handgehaltenen STX4 von WPI) reduziert Elektroden) auf weniger als 5 Ω. Mit der festen Elektrodengeometrie von EndOhm wird die Variation der Messwerte an einer Probe von 10-30 Ω mit STX4 Elektroden (abhängig von der Erfahrung des Anwenders) auf 1-2 Ω. Im Vergleich zu anderen Widerstandsmessmethoden bietet EndOhm mit einem EVOM-Messgerät eine viel bequemere und wirtschaftlichere Lösung zur Messung von „leckendem Gewebe“. Aufgrund der gleichmäßigen Dichte des Wechselstrom-Quadratwellenstroms von EVOM™ Manual, Fehler durch Elektrodenpolarisation oder Membrankapazität werden weitgehend eliminiert. EndOhm zusammen mit EVOM™ Manual bietet das derzeit genaueste und wirtschaftlichste Endothel-Ohmmeter an. Bisher wurden Becher von Corning, Millipore, Nunc, Greiner und BD Falcon getestet. EndOhm-Kammern können mit EtO, Alkohol oder einem Bakterizid sterilisiert werden; nicht autoklavierbar.

HINWEIS: EndOhm-Kammern haben Ag/AgCl-Elektroden. Wenn Sie eine kontinuierliche Datenaufzeichnung über einen längeren Zeitraum planen, sollten Sie mögliche zytotoxische Effekte einer Langzeitexposition gegenüber Silber auf Ihren spezifischen Zelltyp berücksichtigen.

Kompatibilitätsübersichten

Der ENDOHM-6 (#EVM-EL-03-01-01) ist kompatibel mit den folgenden Kammern:

Corning  Millipore   Material Membrandurchmesser (mm) Wachstumsoberfläche (cm²) Porengröße der Membran (μm)
3470     6.5 0.33 0.4
3472 PITP01250   6.5 0.33 3.0
3413 PCF Einsatz   6.5 0.33 0.4
3415 PITP 01250
PCF Einsatz		   6.5 0.33 3.0
3421     6.5 0.33 5.0
3422 PIEP 01250
PCF Einsatz		   6.5 0.33 8.0
3495  PIHT12R48*
PET Einsatz		   6.5 0.33 0.4
  PIHA012 50 HA Einsatz 6.5 0.33 0.45
  PICM012 50 CM-Einsatz 6.5 0.33 0.4
3496 PISP12R48*
PET Einsatz		   6.5 0.33 3.0
  PIRP12R48*
PET Einsatz		   6.5 0.33 1.0
  PIMP12R48*
PET Einsatz		   6.5 0.33 5.0
  PIEP12R48*
PET Einsatz		   6.5 0.33 8.0
  PIXP01250
PCF Einsatz		   6.5 0.33 12
  PIHP01250       1.0
  PITT01250       3.0

* Die dreifachen Stützen ragen über den Kammerrand hinaus und die Vertiefung kann nicht parallel zu den Elektroden gehalten werden.

Nunc Porengröße (μm) Kulturfläche (cm²)
140620 0.4 0.47
140627 3.0 0.47
140629 8.0 0.47

 

ThinCertTM Membranmaterial Porengröße [µm] Porendichte [cm-2]-2] Optische Membraneigenschaften TC Oberflächenbehandlung/Steril Multiwell-Platten/ThinCertTM pro Karton
662640 PET 0.4 1 x 108 transluzent +/+ 2/48
662641 PET 0.4  2 x 106 transparent +/+ 2/48
662610 PET 1.0  2 x 106 transparent +/+ 2/48
662630 PET 3.0  0.6 x 106 transparent +/+ 2/48
662631 PET 3.0  2 x 106 transluzent +/+ 2/48
662638 PET 8.0  0.15 x 106 transluzent +/+ 2/48

 

Millicell Porengröße (μm) Menge/Packung
MCHT24H48 0.4 48
MCRP24H48 1.0 48
MCSP24H48 3.0 48
MCMP24H48 5.0 48
MCEP24H48 8.0 48

 

BD Falcon Membranmaterial Porengröße [µm] Porendichte [cm-2]-2] Optische Membraneigenschaften TC Platte (#Wells)
353095 PET 0.4 2.0 ± 0.2 x 106 transparent 24
353104 PET 1.0 1.6 ± 0.6 x 106 transparent 24
353096 PET 3.0 8 ± 2 x 105 transparent 24
353097 PET 8.0 6 ± 2 x 104 transluzent 24
353495 PET 0.4HD 100 ± 10 x 106 transluzent 24
353492 PET 3.0HD 2.0 ± 0.2 x 105 transluzent 24

 

Der ENDOHM-12 (#EVM-EL-03-01-02) ist kompatibel mit den folgenden Kammern:

Corning Millipore Membrandurchmesser (mm) Wachstumsoberfläche (cm²) Porengröße der Membran (μm)
3401   12  1.12 0.4
3402 PITP01250 12   1.12 3.0
  PITT01250 12   1.12 3.0
3493   12 1.12 0.4
3494   12 1.12 3.0
3460 PIHT15R48*
PET Einsatz		 12 1.12 0.4
  PIRP15R48*
PET Einsatz		 12 1.12 1.0
3462 PISP15R48*
PET Einsatz		 12 1.12 3.0
  PIMP15R48*
PET Einsatz		 12 1.12 5.0
  PIEP30R48*
PIEP15R48*
PET Einsatz 		12 1.12 8.0

* Die dreifachen Stützbeine müssen korrekt ausbalanciert werden, damit der Filter parallel zu den Elektroden ist.

Nunc Porengröße (μm) Kulturfläche (cm²)
140652 0.4 1.13
140654 3.0 1.13
140656 8.0 1.13

 

ThinCertTM Membranmaterial Porengröße [µm] Porendichte [cm-2]-2] Optische Membraneigenschaften TC Oberflächenbehandlung/Steril Multiwell-Platten/ThinCertTM pro Karton
665640 PET 0.4 1 x 108 transluzent +/+ 4/48
665641 PET 0.4  2 x 106 transparent +/+ 4/48
665610 PET 1.0  2 x 106 transparent +/+ 4/48
665630 PET 3.0  0.6  x 106 transparent +/+ 4/48
665631 PET 3.0  2 x 106 transluzent +/+ 4/48
665638 PET 8.0  0.15 x 106 transluzent +/+ 4/48

 

Millicell Porengröße (μm) Menge/Packung
MCHT12H48 0.4 48
MCRP12H48 1.0 48
MCSP12H48 3.0 48
MCMP12H48 5.0 48
MCEP12H48 8.0 48

 

BD Falcon Membranmaterial Porengröße [µm] Porendichte [cm-2]-2] Optische Membraneigenschaften TC Platte (#Wells)
353180 PET 0.4 2.0 ± 0.2 x 106 transparent 12
353103 PET 1.0 1.6 ± 0.6 x 106 transparent 12
353181 PET 3.0 8 ± 2 x 105 transparent 12
353182 PET 8.0 6 ± 2 x 104 transluzent 12
353494 PET 0.4HD 100 ± 10 x 106 transluzent 12
353292 PET 3.0HD 2.0 ± 0.2 x 105 transluzent 12

 

Der ENDOHM-24 (#EVM-EL-03-01-03) ist kompatibel mit den folgenden Kammern:

Corning Millipore  Membranmaterial Porengröße (µm)
3407   Polycarbonat 0.4
3801   Polycarbonat 0.4
    Polycarbonat 3.0
3412 PIHT30R48* Polycarbonat 0.4
3414   Polycarbonat 3.0
  PITT03050 Polycarbonat 3.0
3428   Polycarbonat 8.0
3450   Polyester 0.4
3452   Polyester 3.0 
3491   Kollagen 0.4
3492   Kollagen 3.0
  PICMORG50 Organotypischer Einsatz 0.4
  PIHA03050 HA Einsatz 0.45
  PIHP03050 PCF Einsatz 0.4
  PICM03050 HA gemischte Celluloseester 0.4 
  PIHT30R48* PET Einsatz 0.4
  PIRP30R48* PET Einsatz 1.0
  PISP30R48* PET Einsatz 3.0
  PIMP30R48* PET Einsatz 5.0
  PIEP30R48* PET Einsatz 8.0

* Die dreifachen Stützbeine müssen korrekt ausbalanciert sein, damit der Filter parallel zu den Elektroden liegt.

Nunc Porengröße (μm) Kulturfläche (cm²)
140640 0.4 3.14
140642 3.0 3.14
140644 8.0 3.14
140660 0.4 4.1
140663 3 4.1
140668 8 4.1

 

ThinCertTM Membranmaterial Porengröße [µm] Porendichte [cm-2]-2] Optische Membraneigenschaften TC Oberflächenbehandlung/Steril Multiwell-Platten/ThinCertTM pro Karton
657640 PET 0.4 1 x 108 transluzent +/+ 4/24
657641 PET 0.4  2 x 106 transparent +/+ 4/24
657610 PET 1.0  2 x 106 transparent +/+ 4/24
657630 PET 3.0  0.6 x 106 transparent +/+ 4/24
657631 PET 3.0  2 x 106 transluzent +/+ 4/24
657638 PET 8.0  0.15 x 106 transluzent +/+ 4/24

 

Millicell Porengröße (μm) Menge/Packung
MCHT06H48 0.4 48
MCRP06H48 1.0 48
MCSP06H48 3.0 48
MCMP06H48 5.0 48
MCEP06H48 8.0 48

 

BD Falcon Membranmaterial Porengröße [µm] Porendichte [cm-2]-2] Optische Membraneigenschaften TC Platte (#Wells)
353090 PET 0.4 2.0 ± 0.2 x 106 transparent 6
353102 PET 1.0 1.6 ± 0.6 x 106 transparent 6
353091 PET 3.0 8 ± 2 x 105 transparent 6
353093 PET 8.0 6 ± 2 x 104 transluzent 6
353493 PET 0.4HD 100 ± 10 x 106 transluzent 6
353092 PET 3.0HD 2.0 ± 0.2 x 105 transluzent 6

 

Häufig gestellte Fragen

Ressourcen

EndOhm (für EVOM Handbuch) Bedienungsanleitung

EndOhm (für EVOM Handbuch) Verkaufsblatt

EndOhm-6G (EVM-EL-03-01-01) Kompatibilitätsübersichten

EndOhm-12G (EVM-EL-03-01-02) Kompatibilitätsübersichten

EndOhm-24G-SNAP (EVM-EL-03-01-03) Kompatibilitätsübersichten

Video

 

Literaturverzeichnis

Sheller, R. A., Cuevas, M. E., & Todd, M. C. (2017). Vergleich von Messmethoden für transepitheliale Resistenz: Chopsticks vs. EndOhm. Biological Procedures Online, 19, 4. http://doi.org/10.1186/s12575-017-0053-6 

Srinivasan, B., Kolli, A. R., Esch, M. B., Abaci, H. E., Shuler, M. L., & Hickman, J. J. (2015). TEER-Messmethoden für in vitro Barriere-Modellsysteme. Journal of Laboratory Automation, 20(2), 107–26. http://doi.org/10.1177/2211068214561025

TORRES, R., PIZARRO, L., CSENDES, A., GARCÍA, C., LAGOS, N., Pasdar, M., … Roskelley, C. (2007). GTX 2/3 EPIMERE DRINGEN ÜBER EINEN PARAZELLULÄREN WEG IN DEN DARM EIN. The Journal of Toxicological Sciences, 32(3), 241–248. http://doi.org/10.2131/jts.32.241 

Patil, R. V., Han, Z., Yiming, M., Yang, J., Iserovich, P., Wax, M. B., & Fischbarg, J. (2001). Flüssigkeitstransport durch menschliche nicht pigmentierte ziliäre Epithelzellschichten in Kultur: eine homöostatische Rolle für Aquaporin-1. American Journal of Physiology - Cell Physiology, 281(4).
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