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ENDOHM-12G
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Preise gelten nur in den USA, Kanada und Puerto Rico.
Diese Zellkulturbecherkammern werden bei der TEER-Messung für austauschbare Kulturbechersysteme mit EVOM2-Messgeräten für Endothel- und Epithelzellkulturen verwendet.
HINWEIS: Diese EndOhms sind für die Verwendung mit älteren EVOM™-Messgeräten bestimmt. Für EndOhms, die mit dem neuen EVOM™ Manual (oder EVOM3) verwendet werden, siehe EVOM™ Elektroden für TEER.
EndOhm-Kammern liefern reproduzierbare Widerstandsmessungen von endothelialen und epithelialen Monoschichten in Kulturbechern. Übertragen Sie die Becher zur Messung aus ihren Kulturvertiefungen in die EndOhm-Kammer, anstatt Handelektroden zu verwenden. Die Kammer und die Kappe enthalten jeweils ein Paar konzentrischer Elektroden: eine spannungsempfindliche Silber/Silberchlorid-Pille in der Mitte sowie eine ringförmige Stromelektrode. Die Höhe der oberen Elektrode kann an Zellkulturgefäße verschiedener Hersteller angepasst werden.
Um mehr über unsere Garantieoptionen zu erfahren, klicken Sie hier.
Um die passenden EndOhm-Kammern zu finden, die mit EVOM3 oder dem EVOM™ Handbuch kompatibel sind, besuchen Sie die Produktseite hier.
| Bestellcode | Beschreibung |
| ENDOHM-24G-SNAP | EndOhm für 24mm und Costar Snapwell Kulturtöpfe (6 Wells pro Platte) |
| ENDOHM-12G | EndOhm für 12mm Kulturtöpfe (12 Wells pro Platte) |
| ENDOHM-6G | EndOhm für 6mm Kulturtöpfe (24 Wells pro Platte) |


Verwendung von WPI’s EVOM2 Widerstandsmessgerät, Endohm-Kammern liefern reproduzierbare Widerstandsmessungen von Endothel- und Epithel-Monolayern in Kulturbechern. Überführen Sie Becher aus ihren Kulturbrunnen in die Endohm-Kammer zur Messung, anstatt handgehaltene Elektroden zu verwenden. Die Kammer und der Deckel enthalten jeweils ein Paar konzentrischer Elektroden: ein spannungssensitives Silber/Silberchlorid-Pellet in der Mitte sowie eine ringförmige Stromelektrode. Die Höhe der oberen Elektrode kann angepasst werden, um Zellkulturbecher verschiedener Hersteller aufzunehmen.
Machen Sie präzisere Messungen mit Endohms
Endohm’s symmetrisch gegenüberliegende kreisförmige Scheibenelektroden, die oberhalb und unterhalb der Membran angeordnet sind, ermöglichen eine gleichmäßigere Stromdichte über die Membran als mit STX2 Elektroden reduziert. Der Hintergrundwiderstand eines leeren Einsatzes wird von 150 Ω (bei Verwendung des handgehaltenen STX2 Elektroden) auf weniger als 5 Ω. Mit der festen Elektrodengeometrie von Endohm wird die Variation der Messwerte an einer Probe von 10-30 Ω mit STX2 Elektroden (abhängig von der Erfahrung des Anwenders) auf 1-2 Ω. Im Vergleich zu anderen Widerstandsmessmethoden bietet Endohm mit EVOM2™ eine viel bequemere und wirtschaftlichere Lösung zur Messung von „leckendem Gewebe“. Aufgrund der gleichmäßigen Dichte des AC-Rechteckstroms von EVOM2, Fehler durch Elektrodenpolarisation oder Membrankapazität werden weitgehend eliminiert. Endohm zusammen mit EVOM2 bietet jetzt das genaueste und wirtschaftlichste Endothel-Ohmmeter an. Bisher wurden Becher von Corning, Millipore, Nunc, Greiner und BD Falcon getestet. Endohm-Kammern können mit EtO, Alkohol oder einem Bakterizid sterilisiert werden; nicht autoklavierbar.
HINWEIS: EndOhm-Kammern haben Ag/AgCl-Elektroden. Wenn Sie über längere Zeit messen, sollten Sie mögliche zytotoxische Auswirkungen einer Langzeitexposition gegenüber Silber auf Ihre Zellen berücksichtigen.
Der ENDOHM-6G ist kompatibel mit den folgenden Kammern:
| Corning | Millipore | Material | Membrandurchmesser (mm) | Wachstumsoberfläche (cm²) | Membranporengröße (μm) |
| 3470 | 6.5 | 0.33 | 0.4 | ||
| 3472 | PITP01250 | 6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| 3413 | PCF Einsatz | 6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| 3415 | PITP 01250 PCF Einsatz |
6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| 3421 | 6.5 | 0.33 | 5.0 | ||
| 3422 | PIEP 01250 PCF Einsatz |
6.5 | 0.33 | 8.0 | |
| 3495 | PIHT12R48* PET Einsatz |
6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| PIHA012 50 | HA Einsatz | 6.5 | 0.33 | 0.45 | |
| PICM012 50 | CM Einsatz | 6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| 3496 | PISP12R48* PET Einsatz |
6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| PIRP12R48* PET Einsatz |
6.5 | 0.33 | 1.0 | ||
| PIMP12R48* PET Einsatz |
6.5 | 0.33 | 5.0 | ||
| PIEP12R48* PET Einsatz |
6.5 | 0.33 | 8.0 | ||
| PIXP01250 PCF Einsatz |
6.5 | 0.33 | 12 | ||
| PIHP01250 | 1.0 | ||||
| PITT01250 | 3.0 |
* Die Dreifachstützen ragen über den Kammerrand hinaus, und der Brunnen kann nicht parallel zu den Elektroden gehalten werden.
| Nunc | Porengröße (μm) | Kulturfläche (cm²) |
| 140620 | 0.4 | 0.47 |
| 140627 | 3.0 | 0.47 |
| 140629 | 8.0 | 0.47 |
| ThinCertTM | Membranmaterial | Porengröße [µm] | Porendichte [cm-2]-2] | Optische Membraneigenschaften | TC Oberflächenbehandlung/Steril | Multiwell-Platten/ThinCertTM pro Karton |
| 662640 | PET | 0.4 | 1 x 108 | transluzent | +/+ | 2/48 |
| 662641 | PET | 0.4 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 2/48 |
| 662610 | PET | 1.0 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 2/48 |
| 662630 | PET | 3.0 | 0.6 x 106 | transparent | +/+ | 2/48 |
| 662631 | PET | 3.0 | 2 x 106 | transluzent | +/+ | 2/48 |
| 662638 | PET | 8.0 | 0.15 x 106 | transluzent | +/+ | 2/48 |
| Millicell | Porengröße (μm) | Menge/Packung |
| MCHT24H48 | 0.4 | 48 |
| MCRP24H48 | 1.0 | 48 |
| MCSP24H48 | 3.0 | 48 |
| MCMP24H48 | 5.0 | 48 |
| MCEP24H48 | 8.0 | 48 |
| BD Falcon | Membranmaterial | Porengröße [µm] | Porendichte [cm-2]-2] | Optische Membraneigenschaften | TC Platte (#Wells) |
| 353095 | PET | 0.4 | 2.0 ± 0.2 x 106 | transparent | 24 |
| 353104 | PET | 1.0 | 1.6 ± 0.6 x 106 | transparent | 24 |
| 353096 | PET | 3.0 | 8 ± 2 x 105 | transparent | 24 |
| 353097 | PET | 8.0 | 6 ± 2 x 104 | transluzent | 24 |
| 353495 | PET | 0.4HD | 100 ± 10 x 106 | transluzent | 24 |
| 353492 | PET | 3.0HD | 2.0 ± 0.2 x 105 | transluzent | 24 |
Der ENDOHM-12G ist kompatibel mit den folgenden Kammern:
| Corning | Millipore | Membrandurchmesser (mm) | Wachstumsoberfläche (cm²) | Membranporengröße (μm) |
| 3401 | 12 | 1.12 | 0.4 | |
| 3402 | PITP01250 | 12 | 1.12 | 3.0 |
| PITT01250 | 12 | 1.12 | 3.0 | |
| 3493 | 12 | 1.12 | 0.4 | |
| 3494 | 12 | 1.12 | 3.0 | |
| 3460 | PIHT15R48* PET Einsatz |
12 | 1.12 | 0.4 |
| PIRP15R48* PET Einsatz |
12 | 1.12 | 1.0 | |
| 3462 | PISP15R48* PET Einsatz |
12 | 1.12 | 3.0 |
| PIMP15R48* PET Einsatz |
12 | 1.12 | 5.0 | |
|
PIEP30R48* PIEP15R48* PET Einsatz |
12 | 1.12 | 8.0 |
* Die dreifachen Stützbeine müssen korrekt ausbalanciert sein, damit der Filter parallel zu den Elektroden liegt.
| Nunc | Porengröße (μm) | Kulturfläche (cm²) |
| 140652 | 0.4 | 1.13 |
| 140654 | 3.0 | 1.13 |
| 140656 | 8.0 | 1.13 |
| ThinCertTM | Membranmaterial | Porengröße [µm] | Porendichte [cm-2]-2] | Optische Membraneigenschaften | TC Oberflächenbehandlung/Steril | Multiwell-Platten/ThinCertTM pro Karton |
| 665640 | PET | 0.4 | 1 x 108 | transluzent | +/+ | 4/48 |
| 665641 | PET | 0.4 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 4/48 |
| 665610 | PET | 1.0 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 4/48 |
| 665630 | PET | 3.0 | 0.6 x 106 | transparent | +/+ | 4/48 |
| 665631 | PET | 3.0 | 2 x 106 | transluzent | +/+ | 4/48 |
| 665638 | PET | 8.0 | 0.15 x 106 | transluzent | +/+ | 4/48 |
| Millicell | Porengröße (μm) | Menge/Packung |
| MCHT12H48 | 0.4 | 48 |
| MCRP12H48 | 1.0 | 48 |
| MCSP12H48 | 3.0 | 48 |
| MCMP12H48 | 5.0 | 48 |
| MCEP12H48 | 8.0 | 48 |
| BD Falcon | Membranmaterial | Porengröße [µm] | Porendichte [cm-2]-2] | Optische Membraneigenschaften | TC Platte (#Wells) |
| 353180 | PET | 0.4 | 2.0 ± 0.2 x 106 | transparent | 12 |
| 353103 | PET | 1.0 | 1.6 ± 0.6 x 106 | transparent | 12 |
| 353181 | PET | 3.0 | 8 ± 2 x 105 | transparent | 12 |
| 353182 | PET | 8.0 | 6 ± 2 x 104 | transluzent | 12 |
| 353494 | PET | 0.4HD | 100 ± 10 x 106 | transluzent | 12 |
| 353292 | PET | 3.0HD | 2.0 ± 0.2 x 105 | transluzent | 12 |
Das ENDOHM-24SNAP ist kompatibel mit den folgenden Kammern:
| Corning | Millipore | Membranmaterial | Porengröße (µm) |
| 3407 | Polycarbonat | 0.4 | |
| 3801 | Polycarbonat | 0.4 | |
| Polycarbonat | 3.0 | ||
| 3412 | PIHT30R48* | Polycarbonat | 0.4 |
| 3414 | Polycarbonat | 3.0 | |
| PITT03050 | Polycarbonat | 3.0 | |
| 3428 | Polycarbonat | 8.0 | |
| 3450 | Polyester | 0.4 | |
| 3452 | Polyester | 3.0 | |
| 3491 | Kollagen | 0.4 | |
| 3492 | Kollagen | 3.0 | |
| PICMORG50 | Organotypischer Einsatz | 0.4 | |
| PIHA03050 | HA Einsatz | 0.45 | |
| PIHP03050 | PCF Einsatz | 0.4 | |
| PICM03050 | HA gemischte Celluloseester | 0.4 | |
| PIHT30R48* | PET Einsatz | 0.4 | |
| PIRP30R48* | PET Einsatz | 1.0 | |
| PISP30R48* | PET Einsatz | 3.0 | |
| PIMP30R48* | PET Einsatz | 5.0 | |
| PIEP30R48* | PET Einsatz | 8.0 |
* Die dreifachen Stützbeine müssen korrekt ausbalanciert sein, damit der Filter parallel zu den Elektroden liegt.
| Nunc | Porengröße (μm) | Kulturfläche (cm²) |
| 140640 | 0.4 | 3.14 |
| 140642 | 3.0 | 3.14 |
| 140644 | 8.0 | 3.14 |
| 140660 | 0.4 | 4.1 |
| 140663 | 3 | 4.1 |
| 140668 | 8 | 4.1 |
| ThinCertTM | Membranmaterial | Porengröße [µm] | Porendichte [cm-2]-2] | Optische Membraneigenschaften | TC Oberflächenbehandlung/Steril | Multiwell-Platten/ThinCertTM pro Karton |
| 657640 | PET | 0.4 | 1 x 108 | transluzent | +/+ | 4/24 |
| 657641 | PET | 0.4 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 4/24 |
| 657610 | PET | 1.0 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 4/24 |
| 657630 | PET | 3.0 | 0.6 x 106 | transparent | +/+ | 4/24 |
| 657631 | PET | 3.0 | 2 x 106 | transluzent | +/+ | 4/24 |
| 657638 | PET | 8.0 | 0.15 x 106 | transluzent | +/+ | 4/24 |
| Millicell | Porengröße (μm) | Menge/Packung |
| MCHT06H48 | 0.4 | 48 |
| MCRP06H48 | 1.0 | 48 |
| MCSP06H48 | 3.0 | 48 |
| MCMP06H48 | 5.0 | 48 |
| MCEP06H48 | 8.0 | 48 |
| BD Falcon | Membranmaterial | Porengröße [µm] | Porendichte [cm-2]-2] | Optische Membraneigenschaften | TC Platte (#Wells) |
| 353090 | PET | 0.4 | 2.0 ± 0.2 x 106 | transparent | 6 |
| 353102 | PET | 1.0 | 1.6 ± 0.6 x 106 | transparent | 6 |
| 353091 | PET | 3.0 | 8 ± 2 x 105 | transparent | 6 |
| 353093 | PET | 8.0 | 6 ± 2 x 104 | transluzent | 6 |
| 353493 | PET | 0.4HD | 100 ± 10 x 106 | transluzent | 6 |
| 353092 | PET | 3.0HD | 2.0 ± 0.2 x 105 | transluzent | 6 |
EndOhm-6G (EVM-EL-03-01-01) Kompatibilitätsdiagramme
EndOhm-12G (EVM-EL-03-01-02) Kompatibilitätsdiagramme
EndOhm-24G-SNAP (EVM-EL-03-01-03) Kompatibilitätsdiagramme
Fehlerbehebung bei instabilen Widerstandsmessungen mit einem ENDOHM
Eine unserer häufig gestellten Fragen (FAQs) betrifft TEER-Messungen mit einem EndOhm. Wenn die Widerstandswerte Ihres EndOhm nicht stabil sind, müssen Sie möglicherweise einige Fehlerbehebungen durchführen.
Testen Sie das manuelle EVOM™-Messgerät: Testen Sie zunächst Ihr EVOM™-Messgerät. Der 1000Ω-Testwiderstand (WPI # 91750) kann dafür verwendet werden. Stecken Sie den RJ-11-Stecker am Ende des Testwiderstands in den Eingangsanschluss des Messgeräts. Stellen Sie den Funktionsschalter auf Ohm. Trennen Sie das EVOM™-Messgerät vom Ladegerät und schalten Sie die Stromversorgung ein (I). Das Messgerät sollte 1000Ω anzeigen. Falls nicht, justieren Sie die R ADJ-Schraube mit einem kleinen Schlitzschraubendreher, bis das Messgerät einen Wert von 1000Ω anzeigt. Wenn das EVOM™-Messgerät 1000 ± 2-3 Ohm anzeigt und die Anzeige stabil bleibt, funktioniert das EVOM™-Messgerät korrekt.
Testen Sie das EndOhm: Testen Sie als Nächstes das EndOhm. Sie können das EndOhm weiterhin qualitativ testen, indem Sie es unterschiedlichen KCl-Konzentrationen aussetzen. Die Messwerte sollten bei höheren Konzentrationen immer einen stabilen, niedrigeren TEER-Wert und bei niedrigeren Konzentrationen einen höheren, aber möglicherweise weniger stabilen Wert anzeigen. Im Allgemeinen bedeutet ein fallender TEER-Wert, dass der Strom einen alternativen Weg mit geringerer Resistenz als nur durch das Medium findet oder die Präparation auf irgendeine Weise eine Ladung annimmt. Wenn das Problem tatsächlich im EndOhm liegt, wird es typischerweise durch ein Leck von Kulturmedium unter den Elektrodenoberflächen verursacht, wo es Drahtverbindungen zu den Ag/AgCl-Scheiben angreifen kann. Eine verzögerte Reaktion kann Zeit benötigen, bis das Medium in sehr feine Risse eindringt, in denen die Klebeverbindung ihre Dichtheit verloren hat. Wenn der TEER-Wert kontinuierlich weit unter den erwarteten Wert absinkt, hat das EndOhm höchstwahrscheinlich ein Leck an der Elektrodenverbindung oder Korrosion irgendwo in den Strom- oder Spannungswegen. Wenn das EndOhm feine Risse entwickelt hat, muss es ersetzt werden.
Sheller, R. A., Cuevas, M. E., & Todd, M. C. (2017). Vergleich von Messmethoden für transepitheliale Resistenz: Chopsticks vs. Endohm. Biological Procedures Online, 19, 4. http://doi.org/10.1186/s12575-017-0053-6
Srinivasan, B., Kolli, A. R., Esch, M. B., Abaci, H. E., Shuler, M. L., & Hickman, J. J. (2015). TEER-Messmethoden für in vitro Barriere-Modellsysteme. Journal of Laboratory Automation, 20(2), 107–26. http://doi.org/10.1177/2211068214561025
TORRES, R., PIZARRO, L., CSENDES, A., GARCÍA, C., LAGOS, N., Pasdar, M., … Roskelley, C. (2007). GTX 2/3 EPIMERE DRINGEN ÜBER EINEN PARAZELLULÄREN WEG IN DEN DARM EIN. The Journal of Toxicological Sciences, 32(3), 241–248. http://doi.org/10.2131/jts.32.241
Patil, R. V., Han, Z., Yiming, M., Yang, J., Iserovich, P., Wax, M. B., & Fischbarg, J. (2001). Flüssigkeitstransport durch menschliche nicht pigmentierte ziliäre Epithelzellschichten in Kultur: eine homöostatische Rolle für Aquaporin-1. American Journal of Physiology - Cell Physiology, 281(4).

$2,250.00
53330-01
Die EndOhm-Serie von Kammern, die in Kombination mit dem EVOM2-Widerstandsmessgerät von WPI oder dem Millicell ERS verwendet werden, sind darauf ausgelegt, reproduzierbare und genaue Widerstandsmessungen von Endothelgewebe in Kulturtassen zu liefern. Die mit dem EndOhm erhaltenen Widerstandswerte stimmen mit denen überein, die mit einem gut konstruierten Ussing-Chamber erzielt werden.
EVOM™ Auto ist die neueste Generation des automatisierten transepithelialen oder transendothelialen elektrischen Widerstandsmesssystems (TEER) von WPI. Es verwendet die bewährte Technologie aus dem EVOM™ Manual und REMS, kombiniert mit einer neuen Multi-Elektroden-Anordnung, einer Software-Schnittstelle und einem Steuerungssystem, und bietet unsere schnellste Workflow-Lösung bei gleichzeitig verbesserter TEER-Messgenauigkeit:
Im Jahr 2022 hat die US-amerikanische Food and Drug Administration (FDA) 37 neue Medikamente zugelassen, davon 20 chemische Wirkstoffe und 17 Biologika. Im Jahr 2023 bleibt die Wirkstoffforschung stark, mit vielen neuen Fortschritten, die auf veränderte Rahmenbedingungen sowohl bei den Arten der entwickelten Medikamente als auch bei den neuen und innovativen Assays zurückzuführen sind, die zur präklinischen Bewertung von Medikamenten eingeführt werden. Die therapeutische Entwicklung konzentriert sich weiterhin stark auf Krankheiten, die große Bevölkerungsgruppen betreffen und für die es an wirksamen Behandlungen mangelt. Die am meisten erwarteten Markteinführungen von Medikamenten im Jahr 2023 werden voraussichtlich in den Bereichen Krebs, Alzheimer-Krankheit, Herz-Kreislauf-Erkrankungen und Colitis ulcerosa liegen.
Im Jahr 2022 hat die US-amerikanische Food and Drug Administration (FDA) 37 neue Medikamente zugelassen, davon 20 chemische Wirkstoffe und 17 Biologika. Im Jahr 2023 bleibt die Wirkstoffforschung stark, mit vielen neuen Fortschritten, die auf veränderte Rahmenbedingungen sowohl bei den Arten der entwickelten Medikamente als auch bei den neuen und innovativen Assays zurückzuführen sind, die zur präklinischen Bewertung von Medikamenten eingeführt werden. Die therapeutische Entwicklung konzentriert sich weiterhin stark auf Krankheiten, die große Bevölkerungsgruppen betreffen und für die es an wirksamen Behandlungen mangelt. Die am meisten erwarteten Markteinführungen von Medikamenten im Jahr 2023 werden voraussichtlich in den Bereichen Krebs, Alzheimer-Krankheit, Herz-Kreislauf-Erkrankungen und Colitis ulcerosa liegen.
Die transepitheliale elektrische Resistenz (TEER) ist eine weit verbreitete Technik in den Lebenswissenschaften und der therapeutischen Entwicklung. Sie misst den elektrischen Widerstand über eine Zellmonolage und liefert Informationen über die Integrität und Funktionalität epithelialer Barrieren. TEER hat sich als wertvolles Werkzeug in verschiedenen Bereichen erwiesen, darunter Studien zur Arzneimittelabsorption, Gewebezüchtung und Krankheitsmodellierung. Dieser Artikel zielt darauf ab, die Vorteile von TEER und seine Anwendungen in unterschiedlichen Forschungsgebieten zu beleuchten.
Die Messung des transepithelialen/transe endotheliale elektrischen Widerstands (TEER) ist eine der am häufigsten verwendeten Methoden zur Bewertung der Zellgesundheit, wie z. B. Zellkonfluenz, Barriereintegrität oder Barrierefunktion von auf Multiwells gezüchteten Zellmonolayern. Die TEER-Messung mit dem Epithelial Voltohmmeter (EVOM) von WPI gilt als Goldstandard aufgrund ihrer zuverlässigen Messwerte und zahlreicher Literaturzitate mit verschiedenen Zelltypen. Das EVOM™ Manual und EVOM™ Auto sowie verschiedene Elektrodenoptionen (STX4, STX HTS High Throughput Screening, EndOhm-Kammern und Multielektroden-Array für EVOM™ Auto) ermöglichen es Forschern, Zellproben in 6, 12 und 24 entfernbaren Einsätzen sowie in 24- und 96-Well-HTS-Multiwellplattenformaten durchzuführen und zu analysieren. Die größten Herausforderungen, denen Forscher bei der Durchführung von Studien zur Erfassung der TEER-Messung begegnen können, umfassen:
· Instabile Messwerte
· Werte außerhalb des Messbereichs
· Inkonsistente Messwerte zwischen Probenreplikaten oder Chargen.
Berücksichtigen Sie die folgenden Faktoren, um Probleme bei der TEER-Messung zu überwinden und genaue sowie zuverlässige Messwerte zu erhalten.
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