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MICRO-EPORE
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Il nuovo microperforatore cellulare di precisione WPI MICRO-ePORE™ è un sistema semplice e versatile, utilizzabile per iniettare in modo efficiente un’ampia gamma di composti e biomolecole negli ovociti e negli embrioni di mammifero in fase preimpianto. La tecnologia brevettata Flutter Electrode Technology consente di perforare la membrana in modo preciso, pulito e con un’apertura ridotta, senza lacerarla né danneggiarla, durante la microiniezione per la creazione di animali transgenici o la manipolazione cellulare.
Supporti per elettrodi a filo di platino (venduti separatamente) disponibili!
NOTA: la pompa per microiniezione e gli altri accessori mostrati nell’immagine del sistema sono venduti separatamente.
Per saperne di più sulle opzioni di garanzia, clicca qui.
*Nota: non tentare di prendere un’impugnatura acquistata con Femtojet e avvitarci la testina di plastica ePORE: le filettature sono diverse e danneggerebbero il componente.
Il nuovo MICRO-ePORE™ Pinpoint Cell Penetrator di WPI è un sistema semplice e versatile, utilizzabile per eseguire in modo efficiente la microiniezione di un’ampia varietà di composti e biomolecole negli ovociti e negli embrioni di mammiferi in fase preimpianto. La tecnologia brevettata Flutter Electrode, in attesa di brevetto, favorisce una penetrazione della membrana precisa, pulita e circoscritta, senza lacerarla né danneggiarla, durante la microiniezione per la creazione di animali transgenici o la manipolazione cellulare.

L’elettroporazione usa un impulso elettrico in un mezzo per aprire pori nelle membrane cellulari delle cellule presenti nella cuvetta per elettroporazione, così da attraversare la membrana cellulare e introdurre materiale genetico.
Il MICRO-ePORE™ Pinpoint Cell Penetrator di WPI offre diversi vantaggi rispetto all’elettroporazione tradizionale per la microiniezione cellulare.
I sistemi elettrofisiologici che utilizzano la capacità negativa sono stati regolarmente impiegati per la microiniezione cellulare di diverse biomolecole negli ovociti di mammifero, nonché in embrioni preimpianto e postimpianto negli studi di biologia dello sviluppo. Il sistema non più disponibile, l’amplificatore intracellulare WPI Cyto721, consente all’ago di perforare la membrana cellulare con un trauma fisico minimo. Più recentemente, questa tecnica è stata applicata al trasferimento genetico tramite microiniezione di reagenti CRISPR/Cas9 in embrioni di topo allo stadio di due cellule. Gli autori hanno dimostrato che il loro metodo aumenta significativamente l’efficienza di knock-in e garantisce un’elevata vitalità degli embrioni.
Il nuovo penetratore cellulare puntiforme MICRO-ePORE™ offre una soluzione esclusiva per la microiniezione cellulare, con conseguente elevata vitalità embrionale. Lo strumento genera un campo elettrico oscillante in un punto localizzato della membrana, immediatamente sotto il sito di iniezione. MICRO-ePORE™ crea piccoli pori reversibili nella membrana plasmatica, attraverso i quali viene microiniettato il materiale. Il ricercatore determina l’ampiezza e la frequenza del segnale più adatte all’applicazione. A differenza della microiniezione cellulare convenzionale, nella microiniezione mirata con MICRO-ePORE™ la membrana non si lacera, consentendo così una vitalità embrionale superiore. La tecnica è semplice ed elegante. Il nuovo prototipo di penetratore cellulare MICRO-ePORE™ è stato testato con successo su embrioni preimpianto di topo e primati, oltre che per il silenziamento genico nelle code di zebrafish.
MICRO-ePORE™ è stato progettato per una serie di applicazioni, tra cui la generazione di topi knock-in CRISPR/Cas9 con grandi inserzioni mediante microiniezione in embrioni allo stadio di due cellule, con un’elevata vitalità.7 MICRO-ePORE™ ha consentito la microiniezione precisa di oligomeri morfolino (knockdown antisenso) nelle code di zebrafish.


Questo mostra l’elettrodo di riferimento a sonda con un iniettore Eppendorf, di Fangtao Chi dell’UCLA/MCDB e Utpal Banerjee.

Il nuovo penetratore cellulare puntiforme WPI MICRO-ePORE™ è un sistema semplice e versatile, utilizzabile per la microiniezione efficiente di un’ampia varietà di composti e biomolecole negli ovociti e negli embrioni di mammifero in fase preimpianto. La tecnologia brevettata Flutter Electrode, in attesa di brevetto, consente di penetrare la membrana in modo preciso, pulito e delicato, senza lacerarla né danneggiarla. Qui Gabe configura il sistema e collega tutti i componenti.
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MICRO-ePORE™ Versione 2 Rev. 2 (per unità con numeri di serie a partire da 182508) |
MICRO-ePORE™ Versione 1 Rev. 1 (per unità con numeri di serie fino a 182508) |
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Manuale di istruzioni v2 Guida rapida v2 |
Manuale di istruzioni v1 Guida rapida v1 |
Disimballaggio del sistema MICRO-ePORE™
Collegamento del sistema MICRO-ePORE™
Collegamento dei portaeletrodi MICRO-ePORE™
(1) Controller MICRO-ePORE™
(1) Portaeletrodi con filo d'argento. A scelta tra:
• WPI #300863 Portaeletrodi WPI MICRO-ePORE
• WPI #300864 Portaeletrodi Femtojet® MICRO-ePORE
• WPI #300865 Narishige MICRO-ePORE™
(1) Cavo di interfaccia del portamicroelettrodi
(1) Elettrodo di riferimento a pozzetto
(1) Gruppo elettrodo di riferimento a sonda
(1) Interruttore a pedale 13142
(1) Cavo di alimentazione
(1) Cavo di messa a terra 99789 MICRO-ePORE™
(1) Manuale di istruzioni
| Specifiche | Descrizione |
| Parametri di tensione | 0–3.0 V, con incrementi di 1 mV |
| Parametri di frequenza | 50–3000 Hz, con incrementi di 1 Hz |
| Soglia massima dell'allarme di resistenza della pipetta | 500 MΩ |
| Dimensioni | 19.7 × 12.7 × 7.6 cm (7.75 × 5 × 3 in.) |
| Peso | 0.9 kg (2 lb.) |
| Certificazioni | CE, RoHS |
Bałakier H, Pedersen RA. Allocazione delle cellule alle linee della massa cellulare interna e del trofoectoderma negli embrioni di topo preimpianto. Dev Biol. 1982 Apr; 90(2):352-62. PMID: 7075865 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/7075865)
Lawson KA, Pedersen RA. Destino cellulare, movimento morfogenetico e cinetica delle popolazioni dell'endoderma embrionale al momento della formazione dei foglietti germinativi nel topo. Development. 1987 Nov;101(3):627-52. PMID:3502998 (https://www-ncbi-nlm-nih-gov.myaccess.library.utoronto.ca/pubmed/3502998)
Wianny F, Zernicka-Goetz M. Interferenza specifica con la funzione genica mediante RNA a doppio filamento nello sviluppo precoce del topo. Nat Cell Biol. 2000 Feb; 2(2):70-5. PMID:10655585 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10655585)
Chazaud C, Yamanaka Y, Pawson T, Rossant J. Segregazione precoce delle linee cellulari tra epiblasto ed endoderma primitivo nelle blastocisti di topo attraverso la via Grb2-MAPK. Dev Cell. 2006 May; 10(5):615- 24. PMID:16678776 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16678776)
Swann K, Campbell K, Yu Y, Saunders C, Lai FA. Uso di una chimera della luciferasi per monitorare l'espressione di PLCzeta negli ovociti di topo. Methods Mol Biol. 2009; 518:17-29. doi: 10.1007/978-1-59745-202-1_2. PMID:19085135 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19085135)
Posfai E, Petropoulos S, de Barros FRO, Schell JP, Jurisica I, Sandberg R, Lanner F, Rossant J. Plasticità dipendente dalla posizione e dalla segnalazione Hippo durante la segregazione delle linee cellulari nell'embrione precoce di topo. Elife. 2017 Feb 22; 6. pii: e22906. doi: 10.7554/eLife.22906. PMID: 28226240 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/28226240)
Gu B, Posfai E, Rossant J. Generazione efficiente di grandi inserzioni mirate mediante microiniezione in embrioni di topo allo stadio a due cellule. Nature Biotechnology 2018 Aug; 36(7):632-637. doi: 10.1038/nbt.4166. Epub 2018 Jun 11. PMID: 29889212 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/29889212)

Gli strumenti chirurgici con rivestimento nero non sono solo più attraenti dal punto di vista estetico rispetto a quelli in acciaio inossidabile, ma offrono anche diversi altri vantaggi, come indicato di seguito.
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