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EVM-EL-03-01-01
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Prix valables uniquement aux États-Unis, au Canada et à Porto Rico.
Mesure TEER dans des puits individuels
Utilisation des WPI Manuel EVOM™ mètre de résistance, Endohm les chambres fournissent des mesures de résistance reproductibles des monocouches endothéliales et épithéliales dans des cupules de culture. Transférez les cupules de leurs puits de culture vers la Endohm chambre pour la mesure plutôt que d’utiliser des électrodes portatives. La chambre et le couvercle contiennent chacun une paire d’électrodes concentriques : une pastille de détection de tension en argent/chlorure d’argent au centre ainsi qu’une électrode annulaire de courant. La hauteur de l’électrode supérieure peut être ajustée pour s’adapter aux cupules de culture cellulaire de différents fabricants.
Pour trouver les chambres EndOhm équivalentes compatibles avec EVOM, EVOM2™ et Millicell® ERS et ERS2, consultez la page du produit ici.
| Code de commande | Description |
| EVM-EL-03-01-01 | EndOhm pour cupules de culture de 6 mm (24 puits par plaque) |
| EVM-EL-03-01-02 | EndOhm pour cupules de culture de 12 mm (12 puits par plaque) |
| EVM-EL-03-01-03 | EndOhm pour cupules de culture de 24 mm et Costar Snapwell (6 puits par plaque) |


Effectuez des mesures plus précises avec EndOhms
Les électrodes à disque circulaire d’EndOhm, disposées en opposition symétrique au-dessus et au-dessous de la membrane, permettent une densité de courant plus uniforme à travers la membrane qu’avec les électrodes de base STX4. La résistance de fond d’un insert vierge passe de 150 Ω (avec les électrodes portatives STX4 de WPI) à moins de 5 Ω. Grâce à la géométrie fixe des électrodes d’EndOhm, la variation des mesures sur un échantillon donné passe de 10-30 Ω avec les électrodes STX4 (selon l’expérience de l’utilisateur) à 1-2 Ω. Comparé aux autres méthodes de mesure de résistance, EndOhm associé à un appareil EVOM offre une solution bien plus pratique et économique pour la mesure des « tissus perméables ». Grâce à la densité uniforme du courant alternatif à onde carrée de l’EVOM™ Manual, les erreurs dues à la polarisation des électrodes ou à la capacité de la membrane sont largement éliminées. EndOhm associé à l’EVOM™ Manual offre le ohmmètre pour endothélium le plus précis et le plus économique disponible à ce jour. À ce jour, les cupules de Corning, Millipore, Nunc, Greiner et BD Falcon ont été testées. Les chambres EndOhm peuvent être stérilisées à l’oxyde d’éthylène, à l’alcool ou avec un bactéricide ; elles ne sont pas autoclavables.
REMARQUE : Les chambres EndOhm sont équipées d’électrodes Ag/AgCl. Si vous prévoyez d’effectuer un enregistrement continu des données sur une période prolongée, vous devrez peut-être tenir compte des effets cytotoxiques potentiels d’une exposition prolongée à l’argent sur votre type de cellule spécifique.
L’ENDOHM-6 (#EVM-EL-03-01-01) est compatible avec les chambres suivantes :
| Corning | Millipore | Matériau | Diamètre de la membrane (mm) | Surface de croissance (cm²) | Taille des pores de la membrane (μm) |
| 3470 | 6.5 | 0.33 | 0.4 | ||
| 3472 | PITP01250 | 6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| 3413 | Insert PCF | 6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| 3415 | PITP 01250 Insert PCF |
6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| 3421 | 6.5 | 0.33 | 5.0 | ||
| 3422 | PIEP 01250 Insert PCF |
6.5 | 0.33 | 8.0 | |
| 3495 | PIHT12R48* Insert en PET |
6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| PIHA012 50 | Insert HA | 6.5 | 0.33 | 0.45 | |
| PICM012 50 | Insert CM | 6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| 3496 | PISP12R48* Insert en PET |
6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| PIRP12R48* Insert en PET |
6.5 | 0.33 | 1.0 | ||
| PIMP12R48* Insert en PET |
6.5 | 0.33 | 5.0 | ||
| PIEP12R48* Insert en PET |
6.5 | 0.33 | 8.0 | ||
| PIXP01250 Insert PCF |
6.5 | 0.33 | 12 | ||
| PIHP01250 | 1.0 | ||||
| PITT01250 | 3.0 |
* Les pieds à trois supports dépassent du bord de la chambre et le puits ne peut pas être maintenu parallèle aux électrodes.
| Nunc | Taille des pores (μm) | Surface de culture (cm²) |
| 140620 | 0.4 | 0.47 |
| 140627 | 3.0 | 0.47 |
| 140629 | 8.0 | 0.47 |
| ThinCertTM | Matériau de la membrane | Taille des pores [µm] | Densité des pores [cm-2] | Propriétés optiques de la membrane | Traitement de surface de la plaque de culture tissulaire/Stérile | Plaques multipuits/ThinCertTM par boîte |
| 662640 | PET | 0.4 | 1 x 108 | translucide | +/+ | 2/48 |
| 662641 | PET | 0.4 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 2/48 |
| 662610 | PET | 1.0 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 2/48 |
| 662630 | PET | 3.0 | 0.6 x 106 | transparent | +/+ | 2/48 |
| 662631 | PET | 3.0 | 2 x 106 | translucide | +/+ | 2/48 |
| 662638 | PET | 8.0 | 0.15 x 106 | translucide | +/+ | 2/48 |
| Millicell | Taille des pores (μm) | Qté/emb. |
| MCHT24H48 | 0.4 | 48 |
| MCRP24H48 | 1.0 | 48 |
| MCSP24H48 | 3.0 | 48 |
| MCMP24H48 | 5.0 | 48 |
| MCEP24H48 | 8.0 | 48 |
| BD Falcon | Matériau de la membrane | Taille des pores [µm] | Densité des pores [cm-2] | Propriétés optiques de la membrane | Plaque de culture tissulaire (nombre de puits) |
| 353095 | PET | 0.4 | 2.0 ± 0.2 x 106 | transparent | 24 |
| 353104 | PET | 1.0 | 1.6 ± 0.6 x 106 | transparent | 24 |
| 353096 | PET | 3.0 | 8 ± 2 x 105 | transparent | 24 |
| 353097 | PET | 8.0 | 6 ± 2 x 104 | translucide | 24 |
| 353495 | PET | 0.4HD | 100 ± 10 x 106 | translucide | 24 |
| 353492 | PET | 3.0HD | 2.0 ± 0.2 x 105 | translucide | 24 |
L’ENDOHM-12 (#EVM-EL-03-01-02) est compatible avec les chambres suivantes :
| Corning | Millipore | Diamètre de la membrane (mm) | Surface de croissance (cm²) | Taille des pores de la membrane (μm) |
| 3401 | 12 | 1.12 | 0.4 | |
| 3402 | PITP01250 | 12 | 1.12 | 3.0 |
| PITT01250 | 12 | 1.12 | 3.0 | |
| 3493 | 12 | 1.12 | 0.4 | |
| 3494 | 12 | 1.12 | 3.0 | |
| 3460 | PIHT15R48* Insert en PET |
12 | 1.12 | 0.4 |
| PIRP15R48* Insert en PET |
12 | 1.12 | 1.0 | |
| 3462 | PISP15R48* Insert en PET |
12 | 1.12 | 3.0 |
| PIMP15R48* Insert en PET |
12 | 1.12 | 5.0 | |
|
PIEP30R48* PIEP15R48* Insert en PET |
12 | 1.12 | 8.0 |
* Les pieds à trois supports doivent être équilibrés correctement afin que le filtre soit parallèle aux électrodes.
| Nunc | Taille des pores (μm) | Surface de culture (cm²) |
| 140652 | 0.4 | 1.13 |
| 140654 | 3.0 | 1.13 |
| 140656 | 8.0 | 1.13 |
| ThinCertTM | Matériau de la membrane | Taille des pores [µm] | Densité des pores [cm-2] | Propriétés optiques de la membrane | Traitement de surface de la plaque de culture tissulaire/Stérile | Plaques multipuits/ThinCertTM par boîte |
| 665640 | PET | 0.4 | 1 x 108 | translucide | +/+ | 4/48 |
| 665641 | PET | 0.4 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 4/48 |
| 665610 | PET | 1.0 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 4/48 |
| 665630 | PET | 3.0 | 0.6 x 106 | transparent | +/+ | 4/48 |
| 665631 | PET | 3.0 | 2 x 106 | translucide | +/+ | 4/48 |
| 665638 | PET | 8.0 | 0.15 x 106 | translucide | +/+ | 4/48 |
| Millicell | Taille des pores (μm) | Qté/emb. |
| MCHT12H48 | 0.4 | 48 |
| MCRP12H48 | 1.0 | 48 |
| MCSP12H48 | 3.0 | 48 |
| MCMP12H48 | 5.0 | 48 |
| MCEP12H48 | 8.0 | 48 |
| BD Falcon | Matériau de la membrane | Taille des pores [µm] | Densité des pores [cm-2] | Propriétés optiques de la membrane | Plaque de culture tissulaire (nombre de puits) |
| 353180 | PET | 0.4 | 2.0 ± 0.2 x 106 | transparent | 12 |
| 353103 | PET | 1.0 | 1.6 ± 0.6 x 106 | transparent | 12 |
| 353181 | PET | 3.0 | 8 ± 2 x 105 | transparent | 12 |
| 353182 | PET | 8.0 | 6 ± 2 x 104 | translucide | 12 |
| 353494 | PET | 0.4HD | 100 ± 10 x 106 | translucide | 12 |
| 353292 | PET | 3.0HD | 2.0 ± 0.2 x 105 | translucide | 12 |
Le modèle ENDOHM-24 (#EVM-EL-03-01-03) est compatible avec les chambres suivantes :
| Corning | Millipore | Matériau de la membrane | Taille des pores (µm) |
| 3407 | Polycarbonate | 0.4 | |
| 3801 | Polycarbonate | 0.4 | |
| Polycarbonate | 3.0 | ||
| 3412 | PIHT30R48* | Polycarbonate | 0.4 |
| 3414 | Polycarbonate | 3.0 | |
| PITT03050 | Polycarbonate | 3.0 | |
| 3428 | Polycarbonate | 8.0 | |
| 3450 | Polyester | 0.4 | |
| 3452 | Polyester | 3.0 | |
| 3491 | Collagène | 0.4 | |
| 3492 | Collagène | 3.0 | |
| PICMORG50 | Insert organotypique | 0.4 | |
| PIHA03050 | Insert HA | 0.45 | |
| PIHP03050 | Insert PCF | 0.4 | |
| PICM03050 | Esters mixtes de cellulose HA | 0.4 | |
| PIHT30R48* | Insert en PET | 0.4 | |
| PIRP30R48* | Insert en PET | 1.0 | |
| PISP30R48* | Insert en PET | 3.0 | |
| PIMP30R48* | Insert en PET | 5.0 | |
| PIEP30R48* | Insert en PET | 8.0 |
* Les pieds de support tripodes doivent être correctement équilibrés afin que le filtre soit parallèle aux électrodes.
| Nunc | Taille des pores (μm) | Surface de culture (cm²) |
| 140640 | 0.4 | 3.14 |
| 140642 | 3.0 | 3.14 |
| 140644 | 8.0 | 3.14 |
| 140660 | 0.4 | 4.1 |
| 140663 | 3 | 4.1 |
| 140668 | 8 | 4.1 |
| ThinCertTM | Matériau de la membrane | Taille des pores [µm] | Densité des pores [cm-2] | Propriétés optiques de la membrane | Traitement de surface de la plaque de culture tissulaire/Stérile | Plaques multipuits/ThinCertTM par boîte |
| 657640 | PET | 0.4 | 1 x 108 | translucide | +/+ | 4/24 |
| 657641 | PET | 0.4 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 4/24 |
| 657610 | PET | 1.0 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 4/24 |
| 657630 | PET | 3.0 | 0.6 x 106 | transparent | +/+ | 4/24 |
| 657631 | PET | 3.0 | 2 x 106 | translucide | +/+ | 4/24 |
| 657638 | PET | 8.0 | 0.15 x 106 | translucide | +/+ | 4/24 |
| Millicell | Taille des pores (μm) | Qté/emb. |
| MCHT06H48 | 0.4 | 48 |
| MCRP06H48 | 1.0 | 48 |
| MCSP06H48 | 3.0 | 48 |
| MCMP06H48 | 5.0 | 48 |
| MCEP06H48 | 8.0 | 48 |
| BD Falcon | Matériau de la membrane | Taille des pores [µm] | Densité des pores [cm-2] | Propriétés optiques de la membrane | Plaque de culture tissulaire (nombre de puits) |
| 353090 | PET | 0.4 | 2.0 ± 0.2 x 106 | transparent | 6 |
| 353102 | PET | 1.0 | 1.6 ± 0.6 x 106 | transparent | 6 |
| 353091 | PET | 3.0 | 8 ± 2 x 105 | transparent | 6 |
| 353093 | PET | 8.0 | 6 ± 2 x 104 | translucide | 6 |
| 353493 | PET | 0.4HD | 100 ± 10 x 106 | translucide | 6 |
| 353092 | PET | 3.0HD | 2.0 ± 0.2 x 105 | translucide | 6 |
Sheller, R. A., Cuevas, M. E., & Todd, M. C. (2017). Comparaison des techniques de mesure de la résistance transépithéliale : baguettes de mesure contre EndOhm. Biological Procedures Online, 19, 4. http://doi.org/10.1186/s12575-017-0053-6
Srinivasan, B., Kolli, A. R., Esch, M. B., Abaci, H. E., Shuler, M. L., & Hickman, J. J. (2015). Techniques de mesure du TEER pour les systèmes de modèles de barrières in vitro. Journal of Laboratory Automation, 20(2), 107–26. http://doi.org/10.1177/2211068214561025
TORRES, R., PIZARRO, L., CSENDES, A., GARCÍA, C., LAGOS, N., Pasdar, M., … Roskelley, C. (2007). LES ÉPIMÈRES GTX 2/3 TRAVERSENT L’INTESTIN PAR UNE VOIE PARACELLULAIRE. The Journal of Toxicological Sciences, 32(3), 241–248. http://doi.org/10.2131/jts.32.241
Patil, R. V., Han, Z., Yiming, M., Yang, J., Iserovich, P., Wax, M. B., & Fischbarg, J. (2001). Transport de fluides par des couches de cellules épithéliales ciliaires humaines non pigmentées en culture : un rôle homéostatique pour l’aquaporine-1. American Journal of Physiology - Cell Physiology, 281(4).

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