Dispositif Cellulaire Implantable TheraCyte

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Le dispositif TheraCyte délivre des protéines de haut poids moléculaire d'au moins 900 000 Daltons, et il peut être utilisé pour toute recherche sur des cellules de la même espèce, sans suppression immunitaire, ou sur des xénogreffes avec suppression immunitaire. Il est parfait pour la délivrance de protéines instables et difficiles à fabriquer ou à purifier. Les dispositifs TheraCyte offrent une délivrance continue de protéines.



Détails

Dispositif d'encapsulation cellulaire à usage général

Caractéristiques

  • Protège les cellules dans le dispositif contre la destruction auto-immune
  • Inhibe le contact cellulaire et les signaux cellulaires associés
  • Haute perméabilité de la membrane à l'oxygène, aux nutriments et aux protéines sécrétées 

Options

Code de commande Description Taille Stérile
505395 Dispositif cellulaire implantable TheraCyte, 17,5 mm X 7,0 mm X 2 mm 4,5 μL Oui
505396 Dispositif cellulaire implantable TheraCyte, 22 mm X 11,2 mm X 3 mm 20 μL Oui
505397 Dispositif cellulaire implantable TheraCyte, 44,2 mm X 11,2 mm X 3 mm 40 μL Oui
505398 Dispositif cellulaire implantable TheraCyte, 44,2 mm X 11,2 mm X 3 mm, 4 ports 40 μL Oui

AVANTAGES

  • Aucune immunosuppression nécessaire pour protéger les cellules transplantées
  • Permet l'implantation facile de toutes les cellules en une seule procédure
  • Les évaluations de médicaments/protéines peuvent être arrêtées par le retrait du dispositif
  • La possibilité d'effectuer un retrait complet des cellules, en extrayant le dispositif, offre un avantage significatif en matière de sécurité
  • Permet aux cellules d'être nourries par l'apport sanguin normal de l'hôte

APPLICATIONS

  • Diabète
  • Thérapie génique
  • Administration thérapeutique de protéines
  • Découverte de protéines
  • Recherche immunologique
  • Administration d'anticorps
  • Transplantation cellulaire
  • Différenciation cellulaire
  • Thérapie par cytokines
  • Gestion de la douleur
  • Immunothérapie
  • Thérapie contre le cancer
  • Diagnostic in vivo
  • Distribution continue de protéines

 

20 ans de recherches publiées et évaluées par des pairs

TheraCyte est le seul dispositif d'encapsulation cellulaire à usage général de marque disponible dans le monde entier pour tous les chercheurs. C'est le dispositif d'encapsulation cellulaire de référence avec 20 ans de recherches publiées et évaluées par des pairs. Avec une technique et un processus éprouvés pour soutenir le développement de nouvelles lignées cellulaires et la recherche sur les protéines, TheraCyte a acquis une réputation internationale en tant que marque de haute qualité.

Les dispositifs d'encapsulation cellulaire TheraCyte permettent le développement de produits thérapeutiques à base de cellules pour traiter des maladies chroniques et récurrentes, y compris le diabète, le contrôle des infections, les déficiences en protéines et les troubles immunologiques. 

Le système TheraCyte™ pour l'encapsulation et la transplantation de cellules est une chambre polymérique à base de membrane fine. Il est fabriqué à partir de membranes biocompatibles qui protègent les cellules allogéniques du rejet par le receveur et, lorsqu'il est implanté sous-cutanément, induit le développement de capillaires sanguins proches des membranes. Cette caractéristique de vascularisation fournit un apport sanguin riche pour nourrir les tissus à l'intérieur des membranes, facilite la communication des cellules implantées avec l'hôte et assure une absorption rapide des molécules thérapeutiques.

Theracyte Theracyte 

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Ressources

Références

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Masse fonctionnelle de cellules bêta à partir d’endoderme pancréatique dérivé de hESC encapsulé dans un dispositif, atteignant un contrôle métabolique. Robert T, De Mesmaeker I, Stange GM, Suenens KG, Ling Z, Kroon EJ, Pipeleers DG. j.stemcr.2018.01.040. doi.org/10.1016. 

Macrocapsule poreuse en polyamide imprimée en 3D combinée à des microcapsules d’alginate pour des thérapies cellulaires plus sûres. Saenz del Burgo L, Ciriza J, Espona-Noguera A, Illa X, Cabruja E, Orive G, Hernandez RM, Villa R, Pedraz JL, Alvarez M. Scientific Reports (2018) 8:8512. DOI:10.1038/s41598-018-26869-5. 

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Tissu ovarien allogénique encapsulé dans du poly (éthylène glycol)-vinyl sulfone synthétique (PEG-VS) et TheraCyte immunoisolent le tissu ovarien allogénique et restaurent la fonction endocrine chez des souris ovariectomisées. David A, Day JR, Cichon A, Lefferts A, Cascalho M, Shikanov A. Tissue Engineering Part A Vol 22: S150-S150. 

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Xénogreffe de porc à primate : passé, présent et futur. Liu Z, Hu W, He T, Dai Y, Hara H, Bottino R, Cooper DKC, Cai Z, Mou L. Cell Transplant. 2017 Jun; 26(6): 925–947. doi: 10.3727/096368917X694859 

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Macroencapsulation des îlots pancréatiques utilisant des membranes microporeuses à puits. Skrzypek K, Nibbelink MG, vanLente J, Buitinga M, Engelse MA, deKoning EJP, Karperien M, vanApeldoorn A, Stamatialis D. Scientific Reports volume 7, Article number: 9186(2017) 

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La co-encapsulation et la co-transplantation de cellules souches mésenchymateuses réduisent la fibrose péricapsulaire et améliorent la survie et la fonction des îlots encapsulés lors d’allogreffes. Vaithilingam V, Evans MDM, Lewy DM, Bean PA, Bal S, Tuch BE Scientific Reports volume 7, Article number: 10059(2017). doi:10.1038/s41598-017-10359-1. 

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Dispositifs hydrogel robustes activés par nanofibres pour l’encapsulation et la délivrance d’îlots, An D, Ma M. Front. Bioeng. Biotechnol. Résumé de conférence : 10e Congrès mondial des biomatériaux. doi: 10.3389/conf.FBIOE.2016.01.02609.   

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L’hypothyroïdie altère la maturation des cellules progénitrices pancréatiques dérivées de cellules souches humaines chez la souris. Bruin JE, Saber N, O’Dwyer S, Fox JK, Mojibian M, Arora P, Rezania A, Kieffer TJ. Diabetes 2016;65:1297–1309. DOI: 10.2337/db15-1439. 

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La greffe de pseudo-îlots bêta humains 1-1B4 améliore le contrôle glycémique chez des souris diabétiques sévèrement immunodéficientes combinées. Green AD,Vasu S, McClenaghan NH, Flatt PR. World J Diabetes. 15 nov. 2016;7(19): 523-533. doi: 10.4239/wjd.v7.i19.523. 

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Progrès et défis des approches de macroencapsulation pour le traitement du diabète de type 1 (T1D) : cellules, biomatériaux et dispositifs. Song S et Roy S. Biotechnol Bioeng. Juil 2016 ; 113(7) : 1381–1402. doi: 10.1002/bit.25895. 

Contrôle glycémique à long terme utilisant des cellules B dérivées de cellules souches humaines encapsulées dans un polymère chez des souris immunocompétentes. Vegas A, Veiseh O, Gurtler M, Millman JR, Pagliuca FW, Bader AR, Doloff JC, Li J, Chen M, Olejnik K, Tam HH, Jhunjhunwala S, Langan et al. Nat Med. Mars 2016 ; 22(3) : 306–311. doi:10.1038/nm.4030. 

Caractérisation quantitative du collagène dans la capsule fibreuse entourant des microparticules polymériques implantées par imagerie de génération d'harmoniques secondaires. Akilbekova D, Bratlie KM. PLoS ONE 10(6): e0130386. doi:10.1371/journal.pone.0130386. 

Réponse de l'hôte aux biomatériaux : l'impact de la réponse de l'hôte sur la sélection des biomatériaux. Badylak, SF. New York, NY : Academic Press, 2015. 470 pp. 

Le tissu pancréatique transplanté dans des dispositifs d'encapsulation TheraCyte est protégé et prévient l'hyperglycémie dans un modèle murin de diabète à médiation immunitaire. Boettler T, Schneider D, Cheng Y, Kadoya K, von Herrath M. Cell Transplantation 08/2015; 25(3). DOI: 10.3727/096368915X688920. 

Immunité innée et biomatériaux au carrefour : amis ou ennemis ? Christo SN, Diener KR, Bachhuka A, Vasilev K, Hayball JD. BioMed Research International Volume 2015, Article ID 342304, 23 pages. http://dx.doi.org/10.1155/2015/342304. 

Cellules souches bio-ingénierées comme alternative à la transplantation de cellules d’îlots. Moore SJ, Gala-Lopez BL, Pepper AR, Pawlick RL, Shapiro AM J. World J Transplant.Mar 24, 2015;5(1): 1-10. 

Dispositifs d’encapsulation cellulaire en film mince de polycaprolactone micro- et nanoporeux. Nyitray CE, Chang R, Faleo G, Lance KD, Bernards DA, Tang Q, Desai TA. ACS Nano, 2015, 9 (6), pp 5675–5682. DOI: 10.1021/acsnano.5b00679. 

Macroencapsulation des progéniteurs pancréatiques – Une nouvelle ère dans la thérapie du diabète ? Polidori GP. 2015, Vol. 1 No. 1: 5. DOI: 10.21767/2472-1964.100005. 

Développement d’une thérapie à base de cellules souches encapsulées pour le diabète. Tomei AA, Villa C, Ricordi C. Expert Opinion on Biological Therapy 15:9, 1321-1336. DOI: 10.1517/14712598.2015.1055242. 

Minirevue : Différenciation dirigée et encapsulation des cellules B des îlots – Progrès récents et considérations futures. Tse HM, Kozlovskaya V, Kharlampieva E, Hunter CS. Molecular Endocrinology October 2015, 29(10):1388–1399. doi: 10.1210/me.2015-1085. 

Réponse immunitaire au corps étranger dépendant de la taille et de la forme des matériaux implantés chez les rongeurs et les primates non humains. Veiseh O, Doloff JC, Ma M, Vegas AJ, Tam HH, Bader AR, Li J, Langan E, Wyckoff J, Loo WS, Jhunjhunwala S, Chiu A, Siebert S, Tang K, et al. Nat Mater. 2015 Jun; 14(6): 643–651. doi:10.1038/nmat4290. 

Traitement du diabète avec des îlots de porc encapsulés : mise à jour des développements actuels. Zhu H, Lu L, Liu X-Y, Yu L, Lyu Y, Wang B. Zhejiang Univ. Sci. B (2015) 16: https://doi.org/10.1631/jzus.B1400310. 

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Composition et fonction des implants macro-encapsulés dérivés de cellules souches embryonnaires humaines : comparaison avec les greffes cliniques de cellules d’îlots humains. Motte E, Szepessy E, Suenens K, Stange G, Pipeleers D. AJP Endocrinology and Metabolism 09/2014; 307(9). DOI:10.1152/ajpendo.00219.2014

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Îlots encapsulés pour la thérapie du diabète : histoire, progrès actuels et questions critiques à résoudre. Scharp DW, Marchetti P. Advanced Drug Delivery Reviews 67–68 (2014) 35–73. www.elsevier.com/locate/addr 

Revue : Macro-encapsulation des îlots dans un hydrogel de polyalcool vinylique [abstract]. Sumi S, Yanai G, Qi M, Sakata N, Qi Z, Yang K, Shirouzu Y, Hiura A, Gu Y, Inoue K. Med. Bio. Eng. 34(3): 204-210. doi: 10.5405/jmbe.1579

Revue : Régénération et différenciation des cellules B : à quel point sommes-nous proches du « Saint Graal » ? Tan G, Elefanty AG, Stanley EG. Molecular Endocrinology 2014 Déc;53(3):R119-29. doi: 10.1530/JME-14-0188. 

Enrichissement des cellules progénitrices pancréatiques exprimant NKX6.1 dérivées de cellules souches embryonnaires humaines accélère la maturation des cellules sécrétrices d’insuline in vivo. Rezania A, deBruin EC, Xu J, Narayan K, Kieffer TJ. Diabetologia 06/2013; 56(9). DOI:10.1007/s00125-013-2955-4. 

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Le dispositif TheraCyte protège contre le rejet d’allogreffe d’îlots chez des hôtes immunisés. Kumagai-Braesch M, Jacobsonb S, Moria H, Jiaa X, Tibella A. Cell Transplantation 10/2012; 22(7). DOI:10.3727/096368912X657486. 

Formation incohérente et non-fonction des cellules positives à l’insuline issues de l’endoderme pancréatique dérivé de cellules souches embryonnaires humaines chez des rats athymiques nus. Matveyenko AV, Georgia S, Bhushan A, Butler PC. AJP Endocrinology and Metabolism 299(5),e713-e720, 2010. https://doi.org/10.1152/ajpendo.00279.2010. 

Imagerie en temps réel par bioluminescence de fibroblastes macroencapsulés révélant la protection de l’allogreffe chez les singes rhésus (Macaca mulatta). Tarantal AF, Lee CC, Itkin-Ansari P. Transplantation. 2009 15 juil;88(1):38-41. PubMed PMID: 19584678. 

Les précurseurs des cellules bêta humaines mûrissent en cellules fonctionnelles productrices d’insuline dans un dispositif d’immunoisolation : implications pour les thérapies cellulaires du diabète. Lee SH, Hao E, Savinov AY, Geron I, Strongin AY, Itkin-Ansari P. Transplantation. 2009 15 avr;87(7):983-91. PubMed PMID: 19352116; PubMed Central PMCID: PMC2715156. 

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La préimplantation d’un dispositif immunoprotecteur peut réduire la dose curative d’îlots à celle de la transplantation d’îlots libres : études dans un modèle rongeur. Sörenby AK, Kumagai-Braesch M, Sharma A, Hultenby KR, Wernerson AM, Tibell AB. Transplantation. 2008 Jul 27;86(2):364-6. PubMed PMID: 18645504. 

Traitement de l’ostéoporose avec des cellules parathyroïdiennes encapsulées dans TheraCyte : étude dans un modèle de rat. Chou FF, Huang SC, Chen SS, Wang PW, Huang PH, Lu KY. Osteoporos Int. 2006;17(6):936-41. Epub 2006 Apr 5. PubMed PMID: 16596462. 

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Transplantation d’îlots de porcelets micro- et macroencapsulés chez la souris et le singe. Elliott RB, Escobar L, Calafiore R, Basta G, Garkavenko O, Vasconcellos A, Bambra C. (2005) Transplant Proc. 2005 Jan-Feb;37(1):466-9. 

Expériences de thérapie génique cellulaire dans l’encéphalomyélite auto-immune expérimentale murine. Louie KA, Weiner LP, Du1 J, Kochounian HH, Fling SP, Wei1 W et McMillan M. (2005) Gene Therapy 2005, Jul;12, 1145-1153. (Article en vedette) 

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Correction de souris NOD diabétiques avec des insulinomes implantés dans des dispositifs d'immunoisolation Baxter. Loudovaris T., Jacobs S., Young S., Maryanov D., Brauker J. et Johnson RC. (1999). J. Mol. Med. vol 77, 219-222 

Renversement de l'hyperglycémie chez la souris après transplantation sous-cutanée d'îlots macroencapsulés. Tatarkiewicz K, Hollister-Lock J, Quickel RR, Colton CK, Bonner-Weir S, Weir GC. (1999). Transplantation, 15 mars;67(5):665-71 

Peptides antigéniques mineurs immunodominants reconnus par les lymphocytes T cytolytiques amorcés par présentation indirecte. Nevala WK, Paul C, et Wettstein PJ. (l998). Transplantation, 65: 559-69 

Fonction et survie des îlots syngéniques macroencapsulés transplantés chez des souris diabétiques induites par la streptozotocine. Suzuki K, Bonner-Weir S, Trivedi N, Yoon KH, Hollister-Lock J, Colton CK, Weir GC. (1998). Transplantation, Jul 15;66(1):21-8 

Expression soutenue de niveaux élevés du facteur humain IIX à partir de cellules humaines implantées dans un dispositif d'immunoisolation chez des rongeurs athymiques. Brauker, J., Frost, G., Dwarki, V., Carr-Brendel, V., Jasunas, C., Hodgett, D., Stone, W., et Johnson, R.C. (1998). Human Gene Therapy 9:879-888 

Utilisation d'un dispositif d'immunoisolation pour la transplantation cellulaire et l'immunothérapie. Geller, R.G., Loudovaris, T., Johnson, R.C., et Brauker, J.H. (1997). Ann N Y Acad Sci. Dec 31;831:438-51 

Immunoisolation des cellules tumorales : génération d'une immunité anti-tumorale par présentation indirecte de l'antigène. Geller, R.L., Neuenfeldt, S., Levon, S.A., Maryanov, D.A., Thomas, T.J., et Brauker, J.H. (1997). J. Immunother. 20(2):131-137. 

Transplantation de cellules dans un dispositif d'immunoisolation pour la thérapie génique. Carr-Brendel, V.E., Geller, R.L., Thomas, T.J., Boggs, D.R., Young, S.K., Crudele, J., Martinson, L.A., Maryanov, D.A., Johnson, R.C., et Brauker, J.H. (1997). Methods Mol Biol. 63:373-87. 

Réponse inflammatoire locale autour des chambres de diffusion contenant des xénogreffes : destruction non spécifique des tissus et diminution de la vascularisation locale. Brauker, J., Martinson, L.A., Young, S.K., et Johnson, R.C. (1996). Transplantation, Vol 61: No. 12, 1671-1677 

Destruction médiée par les cellules T CD4+ de xénogreffes dans des membranes imperméables aux cellules en l'absence de cellules T CD8+ et de cellules B. Loudovaris, T., Mandel, T.E., et Charlton, B. (1996). Transplantation, 61:1678-1684 

Structure et fonction des îlots pancréatiques humains et de rongeurs macroencapsulés transplantés chez des souris nues. Andersson A, Eizirik DL, Bremer C, Johnson RC, Pipeleers DG, Hellerstrom C. (1996). Horm Metab Res. Jun; 28(6):306-9 

Néovascularisation des membranes synthétiques dirigée par la microarchitecture de la membrane. Brauker, J. H., Carr-Brendel, V. E., Martinson, L.A., Crudele, J., Johnston, W.D., et Johnson, R.C. (1995). J. Biomed. Mat. Res., Vol. 29: 1517-1524 

Organes artificiels biohybrides implantables. Colton, CK. (1995). Cell Transplantation 4(4):415-436. Article de revue. Données TheraCyte, pp 427,432,433  


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