Se vend rapidement !
Procurez-vous le vôtre tant qu'il en reste.
Votre panier est vide
Continuer les achatsVotre panier
Total estimé
$0.00 USD
Livraison gratuite pour les commandes en ligne de plus de 50 $ ! (États-Unis uniquement. Certaines exclusions s'appliquent.) Livraison gratuite pour les commandes en ligne de plus de 50 $ ! (États-Unis uniquement. Certaines exclusions s'appliquent.)
SYS-773
Impossible de charger la disponibilité du service de retrait
Prix valables uniquement aux États-Unis, au Canada et à Porto Rico.
Le Duo773 dispose de deux canaux pour ISE différentiel ou intracellulaire avec un générateur de courant continu intégré et une entrée de contrôle externe. Il possède un filtre passe-bas intégré. Le circuit d'équilibrage de pont annule la chute de tension de l'électrode. De plus, il intègre un circuit "tickler" avec une technologie brevetée de vibration d'électrode. Il comprend des ports de test intégrés pour chaque canal et des compensations de capacité doubles avec contrôles de décalage de sortie. Le Duo773 est livré complet avec deux têtes de sonde, généralement une haute impédance et une basse impédance.
Découvrez ce que vous devez savoir avant d'acheter un amplificateur.
Pour les études intracellulaires doubles ou différentielles, le Duo773 dispose de commandes séparées de capacité négative et d'un filtrage actif intégré qui permet l'équilibrage précis des constantes de temps pour une mesure différentielle sans artefact. Livré complet avec deux têtes de sonde, des sondes 1015Ω et 1011Ω pour surveiller les signaux des microélectrodes ion-spécifiques ainsi que des électrodes remplies de KCl.
Deux sondes actives miniatures plaquées or et scellées à l'époxy peuvent être positionnées directement sur le site de mesure. Les supports de microélectrodes contenant des demi-cellules électrochimiques Ag/AgCl se branchent directement sur les sondes. La capacité parasite peut être réduite en plaçant le blindage de garde piloté inclus sur le support de microélectrode à l'extrémité de la sonde.
Le canal A peut compenser jusqu'à 10 pF de capacité de dérivation d'électrode et le canal B peut compenser jusqu'à 50 pF.
Un circuit de stimulation (Tickler) aide à la pénétration cellulaire. La fréquence et l'amplitude des oscillations peuvent être ajustées selon l'épaisseur de la membrane ou la taille de la cellule. La durée de la stimulation peut être contrôlée soit par l'interrupteur momentané, un pédalier, ou en appliquant un signal à l'entrée distante du circuit de stimulation.
Les réglages passe-bas sur un filtre actif à -40 dB/décade varient la coupure de 1 à 30 kHz. Les sorties de la sonde ou du pont peuvent être sélectionnées pour le filtrage.
Le canal B peut éjecter du courant à travers le microélectrode en appliquant un signal de commande à la prise d'entrée de stimulation. La sortie résultante de la sonde sera une réplique de courant constant du signal d'entrée. Deux plages de livraison de courant sont fournies : 50 nA et 500 nA ou par une source externe. Cette source peut être utile pour délivrer des courants hyperpolarisants afin de stabiliser le potentiel de membrane cellulaire et comme courant de maintien pour la microiontophorèse.
Soustrait la tension d'électrode excédentaire associée à la livraison de courant à travers la micropipette d'enregistrement. Les résistances d'électrode jusqu'à 1000 MΩ peuvent être équilibrées sur deux plages. Le signal équilibré est disponible à partir des connecteurs de sortie x10 ou x50 en façade.
Le Duo773 dispose d'une sortie pour chaque sonde indépendante du gain, du filtrage ou de l'équilibrage. De plus, le Duo773 possède une sortie 10x et une sortie 50x pour une intégration facile à la plupart des programmes d'acquisition de données.

Voir Câbles et connecteurs.
Voir électrodes de référence Dri-Ref.

Autres supports de microélectrodes
| TÊTE (SONDE) | 712P (rouge, port B) | 715P (bleu, port A) |
| IMPÉDANCE D'ENTRÉE DE LA SONDE ACTIVE | >1011 Ω | 1015 Ω |
| GAIN | x1, x10 | x1 |
| RÉSISTANCE DE SORTIE | 100 Ω | 100 Ω |
| PLAGE DE TENSION DE SORTIE | ±10 V | ±10 V |
| TENSION MAXIMALE D'ENTRÉE | ±15 V | ±15 V |
| COURANT DE FUITE DE LA SONDE | 5 X 10-12 A | 10-14 A |
| PLAGE DE RÉGLAGE DE POSITION DC | ± 300 mV | ± 300 mV |
| COURANT DE TEST DE RÉSISTANCE D'ÉLECTRODE | 1 nA | 1 pA, 1 nA sélectionnable |
| COMPENSATION DE CAPACITÉ D'ENTRÉE | +10 à -50 pF | 0 à -10 pF |
| BRUIT Entrée court-circuitée 712P Résistance carbone 20 MΩ |
<50 µV crête à crête bande passante 10 kHz <200 µV crête à crête bande passante 10 kHz |
<50 µV crête à crête bande passante 10 kHz <200 µV crête à crête bande passante 10 kHz |
| TEMPS DE MONTÉE 10-90% entrée directe petit signal 10-90% à travers 20 MΩ (-C « activé ») |
1 µs, typique 25 µs, typique |
|
| INJECTION DE COURANT (712P uniquement)** Courant continu interne Courant commandé externe 712P (rouge, port B) Facteur de commande de courant externe Moniteur de courant Conformité Équilibre du pont Gain de l'amplificateur pont |
± 50 nA plage basse, ± 500 nA plage haute ± 500 nA plage basse, ±5 µA plage haute 20 mV/nA plage basse, 2 mV/nA plage haute 100mV/nA plage basse, 10mV/nA plage haute 3V plage basse, 10V plage haute 0-100 MΩ, 0-1000 MΩ x 10, x 50 |
n/a |
| FILTRAGE PASSE-BAS | 40 dB/décade, variable en continu 1-30 kHz | |
| Fusible (anciens modèles) | 120 V : 0,5 A, rapide, 0,25x1,25” USA 230 V : 0,25 A, rapide, 0,25x1,25” USA |
|
| Fusible (modèles 2019) | 120 V : 0,5 A, rapide, 5 x 20 mm métrique 230 V : 0,25 A, rapide, 5 x 20 mm métrique |
|
| SECTION MÈTRE Affichage Plages Précision et résolution |
LED 3,5 chiffres 200 mV, 2000 mV, 20 V, 200 nA, 2000 nA 1 chiffre |
|
| DIMENSIONS : Instrument Sonde |
17 x 5,25 x 10 in. (43 x 13 x 25 cm) Diamètre : 12 mm Longueur : 34 mm |
|
| ALIMENTATION | 95-135 V ou 220-240 V, 50/60 Hz | |
| POIDS D'EXPÉDITION | 15 lb. (7 kg) | |
| CERTIFICATION | CE, CSA | |
* Bien que les courants injectés soient « constants », le courant maximal dans une situation donnée sera toujours limité par la conformité du système de 10 V.
**La tête 712P peut être utilisée sur les canaux A ou B, cependant les spécifications d'injection de courant ne s'appliquent pas lorsqu'elle est utilisée sur le canal A. La tête 715P ne peut pas être utilisée sur le canal B.
PLantes Utilisées Comme Dispositifs Capteurs | Projets | FP7-ICT | CORDIS | Commission européenne. (s.d.). Consulté le 27 novembre 2018, depuis https://cordis.europa.eu/project/rcn/103686_en.html
Zhang, J., Chen, M., Li, B., Lv, B., Jin, K., Zheng, S., … Long, C. (2016). Activité rythmique striatale altérée chez les souris knock-out pour la cylindromatose due à une inhibition GABAergique renforcée. Neuropharmacologie, 110, 260–267. https://doi.org/10.1016/j.neuropharm.2016.06.021
Cros, C., Chaigne, S., Pascarel-Auclerc, C., Benoist, D., Walton, R., Pasdois, P., … Brette, F. (2016). 0514 : Isolement de myocytes cardiaques du cœur humain. Archives des Maladies Cardiovasculaires Suppléments, 8(3), 230. https://doi.org/10.1016/S1878-6480(16)30430-X
Mañé, N., Viais, R., Martínez-Cutillas, M., Gallego, D., Correia-de-Sá, P., & Jiménez, M. (2016). Gradient inverse de la cotransmission inhibitrice nitrergique et purinergique dans le côlon de souris. Acta Physiologica, 216(1), 120–131. https://doi.org/10.1111/apha.12599
Chang, J.-H., Cheng, P.-Y., Hsu, C.-H., Chen, Y.-C., & Hong, P.-D. (2016). Effets de l'acétaminophène sur la contractilité de l'oreillette gauche. Acta Cardiologica Sinica, 32(4), 485–490. Consulté sur http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27471362
Huo, Q., Chen, M., He, Q., Zhang, J., Li, B., Jin, K., … Yang, L. (2016). La dysfonction GABAergique corticale préfrontale contribue à une durée aberrante de l'état UP chez les souris APP Knockout. Cortex Cérébral (New York, N.Y. : 1991). https://doi.org/10.1093/cercor/bhw218
Spong, K. E., Rodríguez, E. C., & Robertson, R. M. (2016). La dépolarisation propagée dans le cerveau de Drosophila est induite par l'inhibition de la Na+/K+-ATPase et atténuée par une diminution de l'activité de la protéine kinase G. Journal de Neurophysiologie, 116(3).
Mañé, N., Jiménez-Sábado, V., & Jiménez, M. (2016). BPTU, un antagoniste allostérique du récepteur P2Y1, bloque les réponses neuromusculaires inhibitrices médiées par les nerfs dans le tractus gastro-intestinal des rongeurs. Neuropharmacologie, 110, 376–385. https://doi.org/10.1016/j.neuropharm.2016.07.033
Bredeloux, P., Finday, I., Pasqualin, C., Yu, A., & Maupoil, V. (2016). 0194 : Conséquences fonctionnelles de l'activation des récepteurs -adrénergiques dans les veines pulmonaires et les oreillettes gauches du rat. Archives des Maladies Cardiovasculaires Suppléments, 8(3). https://doi.org/10.1016/S1878-6480(16)30431-1
Coskun, D., Britto, D. T., Kochian, L. V., & Kronzucker, H. J. (2016). Jusqu'où vont les flux ioniques ? Une réévaluation du modèle à deux mécanismes du transport de K+ dans les racines des plantes. Plant Science, 243, 96–104. https://doi.org/10.1016/j.plantsci.2015.12.003
Magown, P., Shettar, B., Zhang, Y., & Rafuse, V. F. (2015). Activation optique directe des fibres musculaires squelettiques contrôlant efficacement la contraction musculaire et atténuant l'atrophie par dénervation. Nature Communications, 6(1), 8506. https://doi.org/10.1038/ncomms9506
Yi, F., Ling, T.-Y., Lu, T., Wang, X.-L., Li, J., Claycomb, W. C., … Lee, H.-C. (2015). Régulation à la baisse des canaux potassiques activés par le calcium à petite conductance dans les oreillettes de souris diabétiques. The Journal of Biological Chemistry, 290(11), 7016–7026. https://doi.org/10.1074/jbc.M114.607952
van der Schoot, C., & Rinne, P. L. H. (2015). Cartographie des champs symplasmatiques au méristème apical de la pousse en utilisant l'iontophorèse et les mesures du potentiel de membrane (pp. 157–171). https://doi.org/10.1007/978-1-4939-1523-1_11
Chatterjee, S. K., Das, S., Maharatna, K., Masi, E., Santopolo, L., Mancuso, S., & Vitaletti, A. (2015). Exploration de stratégies pour la classification des stimuli externes utilisant les caractéristiques statistiques de la réponse électrique des plantes. Journal of The Royal Society Interface, 12(104), 20141225–20141225. https://doi.org/10.1098/rsif.2014.1225
Pan, X., Zhang, Z., Huang, Y.-Y., Zhao, J., & Wang, L. (2015). Effets électrophysiologiques du dexmédétomidine sur les nœuds sino-auriculaires de lapins. Acta Cardiologica Sinica, 31(6), 543–549. Consulté sur http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27122920
Huang, J., Dosdall, D. J., Cheng, K., Li, L., Rogers, J. M., & Ideker, R. E. (2014). L'importance de l'activation de Purkinje dans la fibrillation ventriculaire de longue durée. Journal of the American Heart Association, 3(1), e000495. https://doi.org/10.1161/JAHA.113.000495
Altamirano, F., Eltit, J. M., Robin, G., Linares, N., Ding, X., Pessah, I. N., … López, J. R. (2014). L'influx de Ca 2+ via l'échangeur Na + /Ca 2+ est augmenté dans le muscle squelettique atteint d'hyperthermie maligne. Journal of Biological Chemistry, 289(27), 19180–19190. https://doi.org/10.1074/jbc.M114.550764
Altamirano, F., Perez, C. F., Liu, M., Widrick, J., Barton, E. R., Allen, P. D., … Lopez, J. R. (2014). L'accélération périodique du corps entier est une thérapie efficace pour améliorer la dystrophie musculaire chez les souris mdx. PLoS ONE, 9(9), e106590. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0106590
Liu, D.-H., Huang, X., Guo, X., Meng, X.-M., Wu, Y.-S., Lu, H.-L., … Xu, W.-X. (2014). Remodelage des canaux potassiques dépendants du voltage dans l'hypertrophie du muscle lisse intestinal murin induite par une obstruction partielle. PLoS ONE, 9(2), e86109. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0086109
Mousavi, S. A. R., Chauvin, A., Pascaud, F., Kellenberger, S., & Farmer, E. E. (2013). Les gènes GLUTAMATE RECEPTOR-LIKE médiatisent la signalisation de blessure feuille à feuille. Nature, 500(7463), 422–426. https://doi.org/10.1038/nature12478
Altamirano, F., Valladares, D., Henríquez-Olguín, C., Casas, M., López, J. R., Allen, P. D., & Jaimovich, E. (2013). Le traitement par nifédipine réduit la concentration calcique au repos, l'expression des gènes oxydatifs et apoptotiques, et améliore la fonction musculaire chez les souris mdx dystrophiques. PLoS ONE, 8(12), e81222. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0081222
Chen, J., Du, L., Xiao, Y.-T., & Cai, W. (2013). Perturbation des réseaux de cellules interstitielles de Cajal après une résection massive de l'intestin grêle. World Journal of Gastroenterology, 19(22), 3415. https://doi.org/10.3748/wjg.v19.i22.3415
Eltit, J. M., Ding, X., Pessah, I. N., Allen, P. D., & Lopez, J. R. (2013). Les canaux cationiques sarcolémmaux non spécifiques sont essentiels pour la pathogenèse de l'hyperthermie maligne. The FASEB Journal, 27(3), 991–1000. https://doi.org/10.1096/fj.12-218354
Hafke, J. B., Höll, S.-R., Kühn, C., & van Bel, A. J. E. (2013). Approche électrophysiologique pour déterminer les paramètres cinétiques de l'absorption du saccharose par des éléments criblés uniques ou des cellules parenchymateuses du phloème dans des plantes intactes de Vicia faba. Frontiers in Plant Science, 4, 274. https://doi.org/10.3389/fpls.2013.00274
Guo, X., Huang, X., Wu, Y., Liu, D., Lu, H., Kim, Y., … Xu, W. (2012). La régulation à la baisse de la biosynthèse du sulfure d'hydrogène accompagne la dysfonction des cellules interstitielles de Cajal murines dans l'obstruction iléale partielle. PLoS ONE, 7(11), e48249. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0048249
UEHLEIN, N., SPERLING, H., HECKWOLF, M., & KALDENHOFF, R. (2012). L'aquaporine PIP1;2 d'Arabidopsis régule l'absorption cellulaire de CO2. Plant, Cell & Environment, 35(6), 1077–1083. https://doi.org/10.1111/j.1365-3040.2011.02473.x
Altamirano, F., López, J. R., Henríquez, C., Molinski, T., Allen, P. D., & Jaimovich, E. (2012). L'augmentation du calcium intracellulaire au repos module l'expression génique de la synthase inductible de l'oxyde nitrique dépendante de NF-κB dans les myotubes dystrophiques mdx. Journal of Biological Chemistry, 287(25), 20876–20887. https://doi.org/10.1074/jbc.M112.344929
Hamaguchi, K., Yamamoto, N., Nakagawa, T., Furuyashiki, T., Narumiya, S., & Ito, J. (2012). Rôle du récepteur de type PGE4 dans la fonction auditive et la perte auditive induite par le bruit chez la souris. Neuropharmacology, 62(4), 1841–1847. https://doi.org/10.1016/j.neuropharm.2011.12.007
Armstrong, G. A. B., Rodríguez, E. C., & Meldrum Robertson, R. (2012). L'acclimatation au froid module l'homéostasie du K+ dans le cerveau de Drosophila melanogaster pendant le coma froid. Journal of Insect Physiology, 58(11), 1511–1516. https://doi.org/10.1016/J.JINSPHYS.2012.09.006
Tsai, C.-F., Chen, Y.-C., Lin, Y.-K., Chen, S.-A., & Chen, Y.-J. (2011). Effets électromécaniques de l'inhibiteur direct de la rénine (aliskiren) sur la veine pulmonaire et l'oreillette. Basic Research in Cardiology, 106(6), 979–993. https://doi.org/10.1007/s00395-011-0206-8
Han, Y., Huang, X., Guo, X., Wu, Y., Liu, D., Lu, H., … Xu, W. (2011). Preuve que le sulfure d'hydrogène endogène exerce un effet excitateur sur la motilité gastrique chez la souris. European Journal of Pharmacology, 673(1–3), 85–95. https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2011.10.018
Haugan, B. M., Halberg, K. A., Jespersen, Å., Prehn, L. R., & Møbjerg, N. (2010). Caractérisation fonctionnelle de l'uretère primaire des vertébrés : Structure et mécanismes de transport ionique du conduit pronéphrique chez les larves d'axolotl (Amphibia). BMC Developmental Biology, 10(1), 56. https://doi.org/10.1186/1471-213X-10-56
Li, H., Ding, X., Lopez, J. R., Takeshima, H., Ma, J., Allen, P. D., & Eltit, J. M. (2010). L'entrée de Ca 2+ au repos médiée par Orai1 altérée réduit la concentration cytosolique en [Ca 2+ ] et le chargement en Ca 2+ du réticulum sarcoplasmique dans les myotubes Junctophilin 1 Knock-out au repos. Journal of Biological Chemistry, 285(50), 39171–39179. https://doi.org/10.1074/jbc.M110.149690
Ruonala, R., Rinne, P. L. H., Kangasjarvi, J., & van der Schoot, C. (2008). L'expression de CENL1 dans le méristème de la côte affecte l'élongation de la tige et la transition vers la dormance chez Populus. THE PLANT CELL ONLINE, 20(1), 59–74. https://doi.org/10.1105/tpc.107.056721
Keller, C. P., Barkosky, R. R., Seil, J. E., Mazurek, S. A., & Grundstad, M. L. (2008). Réponse électrique des racines de Phaseolus vulgaris à une exposition brutale à l'hydroquinone. Plant Signaling & Behavior, 3(9), 633–640. Consulté sur http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19513254
McDonnell, B., Hamilton, R., Fong, M., Ward, S. M., & Keef, K. D. (2008). Preuve fonctionnelle d'une transmission neuromusculaire inhibitrice purinergique dans le sphincter anal interne de la souris. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology, 294(4), G1041–G1051. https://doi.org/10.1152/ajpgi.00356.2007
Lew, R. R. (2007). Courants ioniques et flux d'ions dans les hyphes de Neurospora crassa. Journal of Experimental Botany, 58(12), 3475–3481. https://doi.org/10.1093/jxb/erm204
Patterson, E., Po, S. S., Scherlag, B. J., & Lazzara, R. (2005). Déclenchement de décharges dans les veines pulmonaires initié par une stimulation nerveuse autonome in vitro. Heart Rhythm, 2(6), 624–631. https://doi.org/10.1016/j.hrthm.2005.02.012
Cho, S. Y., Beckett, E. A., Baker, S. A., Han, I., Park, K. J., Monaghan, K., … Koh, S. D. (2005). Une conductance potassique sensible au pH (TASK) et sa fonction dans le tractus gastro-intestinal murin. The Journal of Physiology, 565(Pt 1), 243–259. https://doi.org/10.1113/jphysiol.2005.084574
Kreindler, J. L., Jackson, A. D., Kemp, P. A., Bridges, R. J., & Danahay, H. (2005). Inhibition de la sécrétion de chlorure dans les cellules épithéliales bronchiques humaines par l'extrait de fumée de cigarette. American Journal of Physiology-Lung Cellular and Molecular Physiology, 288(5), L894–L902. https://doi.org/10.1152/ajplung.00376.2004
Verheule, S., Sato, T., Everett, T., Engle, S. K., Otten, D., Rubart-von der Lohe, M., … Olgin, J. E. (2004). Augmentation de la vulnérabilité à la fibrillation atriale chez des souris transgéniques présentant une fibrose atriale sélective causée par la surexpression de TGF-β1. Circulation Research, 94(11), 1458–1465. https://doi.org/10.1161/01.RES.0000129579.59664.9d
Hwang, H.-R., Shen, Y.-F., Chen, Y.-C., Liu, C.-P., & Lin, C.-I. (2004). Effets de l'acide cyclopiazonique sur les activités déclenchées dans le muscle ventriculaire et les cardiomyocytes isolés de cœurs de hamster. The Chinese Journal of Physiology, 47(3), 137–142. Consulté sur http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15612531
Ermilov, L. G., Schmalz, P. F., Miller, S. M., & Szurszewski, J. H. (2004). Modulation par le PACAP du réflexe côlon-ganglion mésentérique inférieur chez le cobaye. The Journal of Physiology, 560(1), 231–247. https://doi.org/10.1113/jphysiol.2004.070060
Bruusgaard, J. C., Liestøl, K., Ekmark, M., Kollstad, K., & Gundersen, K. (2003). Nombre et distribution spatiale des noyaux dans les fibres musculaires de souris normales étudiées in vivo. The Journal of Physiology, 551(Pt 2), 467–478. https://doi.org/10.1113/jphysiol.2003.045328
Lennon, V. A., Ermilov, L. G., Szurszewski, J. H., & Vernino, S. (2003). Immunisation avec le récepteur nicotinique neuronal de l'acétylcholine induit une maladie auto-immune neurologique. The Journal of Clinical Investigation, 111(6), 907–913. https://doi.org/10.1172/JCI17429
Chen, Y. J., Chen, S. A., Chang, M. S., & Lin, C. I. (2000). Activité arythmogène du muscle cardiaque dans les veines pulmonaires du chien : implication pour la genèse de la fibrillation atriale. Cardiovascular Research, 48(2), 265–273. Consulté sur http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11054473
Ward, S. M., Beckett, E. A., Wang, X., Baker, F., Khoyi, M., & Sanders, K. M. (2000). Les cellules interstitielles de Cajal médiatisent la neurotransmission cholinergique des neurones moteurs entériques. The Journal of Neuroscience : The Official Journal of the Society for Neuroscience, 20(4), 1393–1403. Consulté sur http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10662830
Kilb, W., & Schlue, W. R. (1999). Mécanisme de l'acidification intracellulaire induite par la kainate dans les neurones de Retzius de la sangsue. Brain Research, 824(2), 168–182. Consulté sur http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10196447
Hara, M., Shvilkin, A., Rosen, M. R., Danilo, P., & Boyden, P. A. (1999). Potentiels d'action en état stable et non stable dans l'oreillette canine fibrillante : adaptation anormale à la fréquence et ses mécanismes possibles. Cardiovascular Research, 42(2), 455–469. Récupéré de http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10533581
Muto, S., Asano, Y., Seldin, D., & Giebisch, G. (1999). La pompe Na+ basolatérale module les conductances apicales Na+ et K+ dans les tubules collecteurs corticaux de lapin. The American Journal of Physiology, 276(1 Pt 2), F143-58. Récupéré de http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/9887090
Hara, M., Danilo, P. R., & Rosen, M. R. (1998). Effets des stéroïdes gonadiques sur la repolarisation ventriculaire et sur la réponse à E4031. Indéfini. Récupéré de https://www.semanticscholar.org/paper/Effects-of-gonadal-steroids-on-ventricular-and-on-Hara-Danilo/1be02ac45630bf87ec224f8484890f68981572e3
Welsh, D. G., Jackson, W. F., & Segal, S. S. (1998). L'oxygène induit un couplage électromécanique dans les cellules musculaires lisses artériolaires : un rôle pour les canaux Ca 2+ de type L. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology, 274(6), H2018–H2024. https://doi.org/10.1152/ajpheart.1998.274.6.H2018
Kuwana, S., Okada, Y., & Natsui, T. (1998). Effets du calcium et du magnésium extracellulaires sur le contrôle respiratoire central dans le tronc cérébral-moelle épinière du rat nouveau-né. Brain Research, 786(1–2), 194–204. Récupéré de http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/9555011
Botha, C. E. J., & Cross, R. H. M. (1997). Fréquence des plasmodesmes en relation avec le transport à courte distance et le chargement du phloème dans les feuilles d'orge (Hordeum vulgare). Le phloème n'est pas chargé directement depuis le symplasme. Physiologia Plantarum, 99(3), 355–362. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1997.tb00547.x
Keef, K. D., Murray, D. C., Sanders, K. M., & Smith, T. K. (1997). La libération basale d'oxyde nitrique induit un motif moteur oscillatoire dans le côlon canin. The Journal of Physiology, 499 ( Pt 3)(Pt 3), 773–786. Récupéré de http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/9130172
Felle, H. H., & Hepler, P. K. (1997). Le gradient de concentration cytosolique de Ca2+ des poils racinaires de Sinapis alba révélé par des tests au microélectrode sélective au Ca2+ et l’imagerie par rapport Fura-Dextran. Physiologie végétale, 114(1), 39–45. Consulté sur http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12223687
Lu, G., Qian, X., Berezin, I., Telford, G. L., Huizinga, J. D., & Sarna, S. K. (1997). L’inflammation module in vitro l’activité myoélectrique et contractile colique ainsi que les cellules interstitielles de Cajal. Le Journal américain de physiologie, 273(6 Pt 1), G1233-45. Consulté sur http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/9435548
Wang, R., & Crawford, N. M. (1996). Identification génétique d’un gène impliqué dans le transport constitutif à haute affinité du nitrate chez les plantes supérieures. Actes de l’Académie nationale des sciences des États-Unis d’Amérique, 93(17), 9297–9301. Consulté sur http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8799195
Woodruff, R. I., & Telfer, W. H. (1994). Gradient à l’état stable de l’activité des ions calcium à travers les ponts intercellulaires reliant les ovocytes et les cellules nourricières chez Hyalophora cecropia. Archives de biochimie et physiologie des insectes, 25(1), 9–20. https://doi.org/10.1002/arch.940250103
Keef, K. D., Du, C., Ward, S. M., McGregor, B., & Sanders, K. M. (1993). Régulation nerveuse inhibitrice entérique du muscle circulaire du côlon humain : rôle de l’oxyde nitrique. Gastroentérologie, 105(4), 1009–1016. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8104837
Stark, M. E., Bauer, A. J., & Szurszewski, J. H. (1991). Effet de l’oxyde nitrique sur le muscle circulaire de l’intestin grêle canin. Le Journal de Physiologie, 444, 743–761. Consulté sur http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1688034
Butt, A. M., Jones, H. C., & Abbott, N. J. (1990). Résistance électrique à travers la barrière hémato-encéphalique chez des rats anesthésiés : une étude développementale. Le Journal de Physiologie, 429, 47–62. Consulté sur http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/2277354
Wright, J. P., Fisher, D. B., Kelling, F., Furch, A. C. U., Gaupels, F., & Bel, A. J. E. van. (1981). Mesure du potentiel de la membrane du tube criblé. PHYSIOLOGIE VÉGÉTALE, 67(4), 845–848. https://doi.org/10.1104/pp.67.4.845

2547
3259
712P
715P
Plusieurs UGS
Toutes les cellules vivantes maintiennent une différence de charge électrique entre les solutions situées à l’intérieur et à l’extérieur des membranes cellulaires. La différence de potentiel à travers la membrane cellulaire est généralement à un niveau stable connu sous le nom de potentiel de membrane au repos. Le potentiel de membrane au repos est produit par la distribution différentielle des ions de part et d’autre de la membrane. Dans les fibres musculaires, la concentration de potassium à l’intérieur de la cellule est plus de 50 fois supérieure à la concentration de cet ion dans le liquide extracellulaire. En revanche, la concentration de sodium est 10 fois plus élevée à l’extérieur de la membrane qu’à l’intérieur. Le gradient de concentration du potassium est plus important et dans la direction opposée à celui du sodium. Les concentrations ioniques sont régies par trois facteurs :
Se vend rapidement !
Procurez-vous le vôtre tant qu'il en reste.