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EVOM3
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Prix valables uniquement aux États-Unis, au Canada et à Porto Rico.
Ce produit a été arrêté. MISE À NIVEAU VERS EVOM™ MANUEL pour une précision accrue, l'enregistrement automatique des données, une interface tactile et de nombreuses nouvelles fonctionnalités.
Le manuel EVOM™ remplace tous les compteurs TEER manuels fabriqués par WPI, y compris EVOM3, EVOM2 et MilliCell® ERS-2, qui ont tous été arrêtés.
Le système EVOM de WPI est populaire dans la communauté de recherche, et il est couramment utilisé pour l'évaluation de la santé cellulaire des mammifères en mesurant la résistance électrique transepitheliale/transendothéliale (TEER ou TER) des couches cellulaires.
L'EVOM3 fonctionne selon le même principe de base que les anciens modèles EVOM (EVOMX, EVOM et EVOM2). Il dispose de fonctionnalités avancées pour réaliser les expériences plus facilement. Avec le nouvel écran tactile, vous pouvez maintenant STOCKER LES DONNÉES sous Microsoft® Fichiers Excel sur une clé USB. Il suffit de retirer la clé USB avec toutes vos données enregistrées depuis l'EVOM3 et de la brancher sur un ordinateur pour accéder à vos données et les tracer. C'est aussi simple que cela.
Les ions et le courant électrique peuvent être transportés à travers les cellules (transcellulaire) et à travers l'espace entre les cellules adjacentes (paracellulaire) comme illustré dans l'image ci-dessous.

Les lignes pointillées montrent la voie transcellulaire du flux d'ions ou de courant électrique. Les lignes pleines démontrent la voie paracellulaire du flux d'ions ou de courant.
La résistance électrique (c.-à-d. TEER) d'une couche cellulaire est la présentation inverse de la conductance électrique à travers la couche cellulaire. Une valeur TEER élevée de la couche cellulaire indique un monocouche cellulaire intacte et suggère une perméabilité faible ou restreinte aux ions et aux molécules (c.-à-d. faible conductance). De même, une diminution de la valeur TEER suggère une fonction de barrière compromise et indique une perméabilité accrue. Les études de perméabilité tissulaire nécessitent une couche cellulaire confluente, et la mesure TEER est généralement utilisée pour confirmer la formation d'un monocouche confluente.

Initialement, 24 heures après l'ensemencement des cellules dans le transwell, les valeurs TEER sont généralement faibles, car le courant peut passer facilement entre les cellules. Avec le temps, les cellules se multiplient et commencent à couvrir les espaces. Finalement, une monocouche cellulaire confluente est formée. À ce moment, la membrane perméable est entièrement recouverte de cellules et ne permet pas le passage facile du courant électrique. Cela se traduit par une valeur TEER élevée.
Les valeurs TEER des monocouches cellulaires confluentes peuvent varier selon le type cellulaire. Les monocouches de certains types cellulaires (par exemple, type cellulaire A), qui montrent normalement de faibles valeurs TEER, ont généralement des jonctions serrées relativement perméables. Les monocouches d'autres types cellulaires (par exemple, type cellulaire B) montrent des valeurs TEER élevées, et ces types cellulaires sont connus pour avoir des jonctions serrées étanches. Il est connu que les ions et les molécules passent assez facilement à travers les couches cellulaires perméables comparées aux couches cellulaires plus serrées. La présence de plus de canaux ioniques transcellulaires sur les cellules peut permettre un flux plus facile d'ions ou de courant électrique via la voie transcellulaire, ce qui peut en outre diminuer les valeurs TEER.

Le type cellulaire A permet à des quantités plus importantes de courant et d'ions de passer entre les cellules et donne une faible valeur TEER. Avec ses jonctions plus serrées, les monocouches cellulaires de type B afficheront une valeur TEER plus élevée. Bien que les deux monocouches soient confluentes, les valeurs de résistance TEER peuvent être nettement différentes selon la nature même des cellules.
WPI a été le pionnier dans l'introduction de la technique simplifiée de mesure TEER utilisant EVOM, et à ce jour, le système EVOM de WPI reste l'appareil le plus populaire pour mesurer les valeurs TEER dans les transwells. L'EVOM3 est la version la plus récente des voltmètres épithéliaux, avec plusieurs fonctionnalités avancées. L'EVOM3 dispose d'une interface tactile qui le rend simple à utiliser. La mesure TEER avec un EVOM est une méthode non invasive de surveillance de la santé cellulaire. L'EVOM3 avec la nouvelle électrode STX2PLUS offre une analyse d'échantillon plus précise et des fonctionnalités de stockage rapide et simple des données via une clé USB.
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Pour une analyse quantitative des échantillons avec une plus grande précision et un stockage facile des données, considérez EVOM3. La méthode non invasive de détection EVOM3 permet d'utiliser le même échantillon pour d'autres analyses expérimentales.
Voici trois applications où la mesure TEER est couramment utilisée. Lors de la mesure de la fonction de barrière cellulaire, l’augmentation des valeurs TEER est généralement corrélée à une fonction de barrière accrue. De même, l’élévation de la valeur TEER au niveau maximal peut indiquer que la couche cellulaire a atteint la confluence. La cytotoxicité cellulaire peut être évaluée en mesurant le TEER. Des valeurs TEER élevées indiquent une couche cellulaire en meilleure santé. À mesure que les cellules meurent, des lacunes peuvent se former dans la couche cellulaire, et la valeur TEER peut chuter.

Le système EVOM de WPI a été largement utilisé pour étudier la santé et la fonction des tissus 2D ou 3D in vitro. Ces dernières années, pour le criblage médicamenteux à haut débit et l’étude des maladies, la recherche s’est davantage concentrée sur la création de tissus 3D in vitro qui ressemblent aux tissus in vivo et présentent des propriétés fonctionnelles cohérentes. La mesure TEER est utilisée comme l’une des méthodes pour évaluer et comparer la capacité des tissus in vitro à imiter de manière constante les tissus in vivo. L’EVOM3 peut être utilisé dans des modèles 3D in vitro, tels que la barrière hémato-encéphalique (BBB), l’infection par le virus Ling, ainsi que les tissus intestinaux, rénaux et hépatiques. La section Références liste quelques publications sélectionnées.


De courtes vidéos mettent en avant certaines des principales nouveautés de l’EVOM3. Cliquez sur l’onglet Ressources de cette page pour voir toutes les vidéos EVOM3.
WPI propose une gamme de produits pour l’étude de la physiologie épithéliale, incluant une variété d’électrodes, les compteurs EVOM et le système robotisé automatisé pour le criblage à haut débit (HTS). Découvrez les détails sur les options d’électrodes dans l’article « Comment sélectionner les électrodes pour effectuer des mesures TEER. »
L'EVOM3 offre une meilleure efficacité de travail, des mesures plus stables et répétables par rapport aux compteurs traditionnels de Résistance Électrique Transépithéliale (TEER). Fournissant aux utilisateurs un retour vital pendant les mesures expérimentales, le grand écran de l'EVOM3 propose plusieurs vues informatives. Les nouveaux affichages graphiques pour l'analyse des tendances et les valeurs de mesure aident les scientifiques à appliquer une méthodologie simple et progressive lors des mesures expérimentales. L'interface tactile offre aux utilisateurs un menu intuitif et facile à utiliser pour la configuration.
Éliminant le besoin de consigner les données manuellement, l'EVOM3 écrit les informations de résistance ou de tension sur une clé USB au format CSV pour un transfert facile vers des tableurs et des programmes d'analyse de données. Utilisé avec l'interrupteur au pied, il permet un enregistrement mains libres des mesures.
Au cœur de l'EVOM3 se trouve notre dernier processeur et circuit, offrant aux utilisateurs des lectures rapides, faciles et fiables grâce à sa stabilisation rapide, sa moyenne automatique sur vingt échantillons et son faible bruit. La fonction de résistance à plage automatique permet des mesures rapides, et l'affichage de dépassement de plage élimine les lectures erronées. L'EVOM3 dispose de niveaux de courant réglables dans trois plages fixes avec deux plages inférieures pour membranes sensibles et des plages de haute résistance jusqu'à 100 KΩ.
L'électrode STX2-PLUS a été conçue pour une insertion facile dans de nombreuses plaques de 24 puits. Elle est repositionnable dans l'insert pour des mesures répétables et cohérentes. Les nouvelles électrodes blindées sont désormais conçues pour minimiser les interférences électriques et être plus faciles à entretenir.
| Ce qui est inclus avec l'EVOM3 | QTE |
| EVOM3 Voltmètre Ohmètre Épithélial | 1 |
| Ensemble d'électrodes STX2-PLUS | 1 |
| 300749 Clé USB 32 Go (Utilisée pour le stockage. Contient également un programme Python 3.8 pour la surveillance numérique continue d'un insert cible). | 1 |
| 503535 Câble USB | 1 |
| 99673 Kit d'étalonnage, Résistance de test 1000Ω | 1 |
| 803025 Cordon d'alimentation A/C et chargeur | 1 |
| 13142 Interrupteur au pied | 1 |
REMARQUE : Un adaptateur d'électrode 99672 EVOM2 vers EVOM3 est vendu séparément. Les STX2, STX3 et tous les STX100 nécessitent l'utilisation de cet adaptateur avec l'EVOM3.


La confluence d’un monocouche cellulaire est déterminée par une augmentation ou un plateau de la résistance tissulaire détectée grâce au circuit électronique unique de l’EVOM3 et à la nouvelle électrode STX2-PLUS. L’EVOM3 mesure qualitativement la santé du monocouche cellulaire et mesure quantitativement la confluence cellulaire. L’EVOM3 produit un courant alternatif faible qui évite les dépôts métalliques sur les électrodes et les effets indésirables sur les tissus qui peuvent autrement être causés par des courants continus plus élevés. L’EVOM3 utilise de faibles courants et tensions et est conçu pour des tests non destructifs de la confluence des monocouches épithéliales en cultures cellulaires. De plus, les lectures de résistance ne sont pas affectées par la capacité de la membrane ni par la tension membranaire. La précision et la répétabilité du système EVOM3-STX2-PLUS font de cet instrument un outil idéal pour les études de perméabilité, PD et autres études détaillées de membranes.
| Réf. # | Descriptions |
| STX2-PLUS | Jeu d’électrodes de remplacement |
| STX2* | Jeu d’électrodes de remplacement (Nécessite 99672 pour utilisation avec l’EVOM3) |
| STX3* | Jeu d’électrodes réglable pour puits peu profonds, profondeur 5-9 mm |
| 3993* | Adaptateur 2 mm pour EVOM2 |
*(Nécessite 99672 pour utilisation avec l’EVOM3)
Les nouvelles chambres EndOhm incluent le câble EVOM3 99916.
| Réf. # | Descriptions |
| ENDOHM-6G | EndOhm pour coupelle de culture de 6 mm (24 puits par plaque) |
| ENDOHM-12G | EndOhm pour coupelle de culture de 12 mm (12 puits par plaque) |
| ENDOHM-24G | EndOhm pour inserts de 24 mm et coupelle Costar Snapwell (6 puits par plaque) |
Techniques de mesure TEER pour les systèmes modèles de barrières in vitro
Manuel d’instructions STX2-PLUS
Télécharger la mise à jour du manuel EVOM3/EVOM™ (Publié en février 2025)
Package de sortie numérique Python
Oui, mais l’adaptateur 99672 est requis ou le nouveau câble EVOM3 99916.
La fonction blanc est utilisée lorsque vous souhaitez soustraire toute mesure qui ne provient pas de la membrane, comme les résistances des électrodes et du fluide.
Non, la mesure TEER nécessite un calcul de surface. Pour calculer le TEER, multipliez la résistance mesurée par la surface appropriée (ci-dessous). Par exemple, un insert de 12 mm mesure 565 Ω, le TEER est 565 Ω × 1,13 cm2 = 638,5 Ω- cm2Voici les surfaces généralement applicables aux différents formats de transwell/insert : plaque 6 puits (inserts de 24 mm) 4,52 cm2, plaque 12 puits (inserts 12 mm) 1,13 cm2, plaque 24 puits (inserts 6,5 mm) 0,33 cm2, plaque 96 puits (inserts 4,3 mm) 0,14 cm2.
Effacez toutes les données en mémoire en ouvrant les paramètres, le menu de stockage, puis en appuyant sur nouvelle plaque, cela effacera toutes les lectures précédentes. Revenez à l'écran principal, ouvrez l'écran d'aperçu, sélectionnez chaque puits à mesurer (la sélection devient verte), placez l'électrode, puis mesurez. Une fois que vous avez terminé de mesurer les puits sélectionnés, ouvrez les paramètres, appuyez sur le menu d'écran de stockage, puis appuyez sur enregistrer nouveau pour sauvegarder les données de la plaque sur la clé USB.
Sortez l'EVOM3 de la hotte à flux laminaire après utilisation. La prochaine fois, allumez la lumière UV à l'intérieur de la hotte. Une fois la hotte désinfectée par UV, éteignez les UV, puis vaporisez de l'éthanol ou de l'isopropanol à 70-100 % sur un essuie-tout et essuyez l'EVOM3. Ne vaporisez pas d'alcool directement sur l'EVOM3.
L'électrode dans l'air ou partiellement immergée dans le liquide peut afficher des tirets car elle enregistre des lectures instables. La partie de la pointe de l'électrode (zone de détection) doit rester entièrement immergée. Vous pouvez également remarquer des lectures instables lorsque la pointe de l'électrode n'est pas complètement immergée. Assurez-vous de sélectionner des volumes apicaux et basolatéraux pour que la pointe de l'électrode reste entièrement immergée. Vous devez utiliser des volumes apicaux et basolatéraux supérieurs à ceux suggérés par le fabricant de l'insert. Par exemple, pour le Transwell Corning-24 puits (exemple Corning 3470), nous recommandons un minimum de 300 µL en haut (apical) et 850 µL en bas (basolatéral). [Ces volumes sont un peu plus élevés que le minimum requis pour l'électrode STX2-PLUS.]
Voici les étapes :

Figure 1 : Réglage de la hauteur de l'électrode STX2-PLUS. Tournez la bague avant dans le sens des aiguilles d'une montre pour que l'électrode puisse pénétrer à la profondeur maximale à l'intérieur du puits.

Figure 2 : Pointe de l'électrode STX2-PLUS et exigences en volume de liquide. Assurez-vous que la pointe de détection de l'électrode (parties encadrées en rouge) sur les deux lames reste entièrement immergée dans un liquide conducteur, tel que le milieu de culture cellulaire ou un tampon, pendant la mesure. Vous devez disposer de volumes apicaux et basolatéraux adéquats pour obtenir une lecture stable. Comme le STX2-PLUS reste suspendu, le volume augmenté doit être utilisé pour garantir que la zone de détection de l'électrode soit entièrement immergée.
REMARQUE : Vous devez utiliser des volumes de liquide supérieurs à ceux recommandés par le fabricant de l'insert. Les volumes recommandés par le fabricant de l'insert ne maintiendront pas la pointe de l'électrode entièrement immergée.
[As mentioned as an example previously, for Corning-24 well Transwell (e.g., Corning 3470) we recommend using minimum 300 µL on top (apical) and 850 µL on bottom (basolateral). These volumes are a little more than the least required for STX2-PLUS electrode. You can check visually to make sure the apical and basolateral volumes are adequate to keep the electrode tips fully immersed, and then consistently use those volumes.]
Même si la lecture instable ou le problème de tirets est toujours visible, l'électrode a très probablement besoin d'être chlorée. La chloration consiste à maintenir les pointes de l'électrode immergées dans une solution de 3-6 % d'hypochlorite de sodium ou d'eau de Javel pendant 10-15 minutes, suivie d'un rinçage à l'eau distillée. C'est une partie de l'entretien du STX2-PLUS et un processus d'entretien critique. Veuillez vous référer à l'instruction d'entretien ci-dessous (étape 1). **
Vous pouvez vous attendre à voir un changement des valeurs de résistance brute. Cependant, vous soustrayez les valeurs de blanc (Transwell blanc sans cellules) des valeurs d'échantillon (Transwell avec cellules). De cette façon, vous soustrayez la valeur de blanc avec volume augmenté des échantillons avec volume augmenté. Ainsi, tout changement de résistance dû à l'augmentation du volume est éliminé. Utilisez systématiquement les mêmes volumes pour tous vos échantillons dans une expérience.
Voici les étapes à suivre pour le nettoyage ou l'entretien du STX2-PLUS. Assurez-vous d'utiliser un niveau de liquide suffisant pendant le nettoyage ou l'entretien, au moins jusqu'à la zone encadrée en rouge.

1. Avant de les utiliser, chlorurez l'électrode en maintenant les pointes de l'électrode immergées dans une solution de 3-6 % d'hypochlorite de sodium (eau de Javel) pendant 10-15 minutes. La chloration doit être effectuée tous les 3 jours lorsque les électrodes sont utilisées fréquemment ou après plus d'une semaine de stockage. **
2. Rincez avec de l'eau DI stérile/tampon.
3. Étape optionnelle : trempage rapide dans 70 % d'éthanol ou d'isopropanol puis trempage rapide dans de l'eau DI/tampon.
4. Utilisez l'électrode pour les mesures.
5. Étape optionnelle entre les mesures d'échantillons : trempage rapide dans 70 % d'éthanol ou d'isopropanol puis trempage rapide dans de l'eau DI/tampon.
6. Après les mesures, faites tremper/immergez les pointes de l'électrode dans 70 % d'isopropanol ou d'éthanol pendant 5-10 minutes.
7. Rincez à l'eau DI. Laissez sécher à l'air. Rangez l'électrode sèche et dans un endroit à l'abri de la lumière/lumière minimale.
8. Lors d'une utilisation fréquente, faites tremper les pointes de l'électrode chaque semaine dans 1 % de Tergazyme pendant 15 minutes. Suivez d'un rinçage à l'eau DI.
9. Ensuite, chlorurez en maintenant les pointes de l'électrode immergées dans une solution de 3-6 % d'hypochlorite de sodium (eau de Javel) pendant 10-15 minutes. (Même que l'étape n°1.)
10. Rincez avec de l'eau DI stérile/tampon.
11. Utilisez pour les mesures.
12. Répétez à partir de l'étape 5.
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NE PAS tenir l'électrode par le câble. Cela peut progressivement casser physiquement les connexions internes. |
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Tenez l'électrode par la zone fléchée (plastique). |
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Limitez le niveau d'immersion ou de pulvérisation du liquide jusqu'ici (maximum). Vous ne voulez pas que le liquide pénètre à l'intérieur et atteigne les câbles ou connecteurs internes, c'est pourquoi. Vous pouvez essuyer le reste de l'électrode avec un essuie-tout vaporisé d'isopropanol ou d'éthanol (ne pas vaporiser directement). |
Le système de mesure TEER EVOM3 permet aux chercheurs de réaliser des expériences plus efficacement en améliorant le flux de travail et en augmentant la stabilité et la précision des lectures par rapport à l'EVOM2. Si vous préférez lire les détails, consultez l'article "Pourquoi choisir un EVOM3 plutôt qu'un EVOM2."
Compact et léger - Voici une comparaison entre l'EVOM3 et l'EVOM2. Pesant moins de 1 lb, l'EVOM3 est léger et portable. Il présente un design élégant avec une interface tactile.
Affichage intelligent des données et contrôle par pédale - Découvrez la facilité de configuration et d'utilisation de la pédale pour collecter les données.
Stockage des données sur clé USB - Enregistrez les données sous forme de fichiers Microsoft Excel sur la clé USB d'une simple pression sur un bouton. Le fichier de données peut être consulté sur un ordinateur en branchant la clé USB sur un port USB.
Conception améliorée de l'électrode - Comparez l'électrode STX2 et la NOUVELLE électrode STX2-PLUS. La nouvelle électrode se tient verticalement sur la plaque à puits, assurant des lectures stables et cohérentes.
Cet appareil est conforme aux spécifications suivantes :
| Type | Descriptions |
| Fréquence d'échantillonnage des tissus | 12,5 Hz |
| Moyenne des échantillons | 20 échantillons par seconde |
| Plages de résistance |
|
| Mode automatique | 1 à 100 000 Ω courant auto 2 μA, 4 μA, 10 μA |
| Résolution de la résistance | 0,1 Ω (sous 200 Ω) ; 1 Ω (au-dessus de 200 Ω) |
| Précision de la résistance |
|
| Résolution de la tension | 0,001 V, 0,1 mV |
| Précision de la résistance | 0,1 Ω (200 Ω) ; 1 Ω (au-dessus de 200 Ω) |
| Précision de la tension | ± 0,1 mV |
| Niveaux de courant |
|
| Fréquence de mise à jour de l'affichage | 0,5 seconde |
| Batterie | Batterie Li-ion 3,7 V 2500 mAh** |
| Période de charge | 5,5 heures (hors tension) ; 6 heures (durée de fonctionnement) |
| Courant de charge | 200 mA |
| Consommation d'énergie | ~250 mA |
| Certifications | CE |
** mAH signifie milliampères-heure.
| Corning | Millipore | Matériau | Diamètre de la membrane (mm) | Surface de croissance (cm²) | Taille des pores de la membrane (μm) |
| 3470 | 6.5 | 0.33 | 0.4 | ||
| 3472 | PITP01250 | 6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| 3413 | Insert PCF | 6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| 3415 | PITP 01250 Insert PCF |
6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| 3421 | 6.5 | 0.33 | 5.0 | ||
| 3422 | PIEP 01250 Insert PCF |
6.5 | 0.33 | 8.0 | |
| 3495 | PIHT12R48* Insert PET |
6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| PIHA012 50 | Insert HA | 6.5 | 0.33 | 0.45 | |
| PICM012 50 | Insert CM | 6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| 3496 | PISP12R48* Insert PET |
6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| PIRP12R48* Insert PET |
6.5 | 0.33 | 1.0 | ||
| PIMP12R48* Insert PET |
6.5 | 0.33 | 5.0 | ||
| PIEP12R48* Insert PET |
6.5 | 0.33 | 8.0 | ||
| PIXP01250 Insert PCF |
6.5 | 0.33 | 12 | ||
| PIHP01250 | 1.0 | ||||
| PITT01250 | 3.0 |
* Tri-supports
| Nunc | Taille des pores (μm) | Surface de culture (cm²) |
| 140620 | 0.4 | 0.47 |
| 140627 | 3.0 | 0.47 |
| 140629 | 8.0 | 0.47 |
| ThinCertTM | Matériau de la membrane | Taille des pores [µm] | Densité des pores [cm-2] | Propriétés optiques de la membrane | Traitement de surface TC/Stérile | Plaques Multi-puits/ThinCertTM par boîte |
| 662640 | PET | 0.4 | 1 x 108 | translucide | +/+ | 2/48 |
| 662641 | PET | 0.4 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 2/48 |
| 662610 | PET | 1.0 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 2/48 |
| 662630 | PET | 3.0 | 0.6 x 106 | transparent | +/+ | 2/48 |
| 662631 | PET | 3.0 | 2 x 106 | translucide | +/+ | 2/48 |
| 662638 | PET | 8.0 | 0.15 x 106 | translucide | +/+ | 2/48 |
| Millicell | Taille des pores (μm) | Qté/paquet |
| MCHT24H48 | 0.4 | 48 |
| MCRP24H48 | 1.0 | 48 |
| MCSP24H48 | 3.0 | 48 |
| MCMP24H48 | 5.0 | 48 |
| MCEP24H48 | 8.0 | 48 |
| BD Falcon | Matériau de la membrane | Taille des pores [µm] | Densité des pores [cm-2] | Propriétés optiques de la membrane | Plaque TC (#puits) |
| 353095 | PET | 0.4 | 2.0 ± 0.2 x 106 | transparent | 24 |
| 353104 | PET | 1.0 | 1.6 ± 0.6 x 106 | transparent | 24 |
| 353096 | PET | 3.0 | 8 ± 2 x 105 | transparent | 24 |
| 353097 | PET | 8.0 | 6 ± 2 x 104 | translucide | 24 |
| 353495 | PET | 0.4HD | 100 ± 10 x 106 | translucide | 24 |
| 353492 | PET | 3.0HD | 2.0 ± 0.2 x 105 | translucide | 24 |
Shaban, M. S., Müller, C., Mayr-Buro, C., Weiser, H., Meier-Soelch, J., Albert, B. V., … Kracht, M. (2021). Inhibition multi-niveaux de la réplication du coronavirus par le stress chimique du RE. Nature Communications 2021 12:1, 12(1), 1–20. https://doi.org/10.1038/s41467-021-25551-1
Robinot, R., Hubert, M., de Melo, G. D., Lazarini, F., Bruel, T., Smith, N., … Chakrabarti, L. A. (2021). L’infection par le SARS-CoV-2 induit la dédifférenciation des cellules multiciliées et altère le clairage mucociliaire. Nature Communications 2021 12:1, 12(1), 1–16. https://doi.org/10.1038/s41467-021-24521-x
Pongkorpsakol, P., Turner, J. R., & Zuo, L. (2020). Culture de monocouches de cellules épithéliales intestinales et leur utilisation dans des tests multiplex de perméabilité macromoléculaire pour l'analyse in vitro de la sélectivité de taille des jonctions serrées. Current Protocols in Immunology, 131(1). https://doi.org/10.1002/cpim.112
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Hollmann, E. K., Bailey, A. K., Potharazu, A. V., Neely, M. D., Bowman, A. B., & Lippmann, E. S. (2017). Différenciation accélérée des cellules souches pluripotentes induites humaines en cellules endothéliales de la barrière hémato-encéphalique. Fluids and Barriers of the CNS 2017 14:1, 14(1), 1–13. https://doi.org/10.1186/S12987-017-0059-0
Stanifer, M. L., Rippert, A., Kazakov, A., Willemsen, J., Bucher, D., Bender, S., … Boulant, S. (2016). Les particules subvirales intermédiaires du réovirus constituent une stratégie pour infecter les cellules épithéliales intestinales en exploitant la signalisation pro-survie dépendante de TGF-β. Cellular Microbiology, 18(12), 1831–1845. https://doi.org/10.1111/cmi.12626
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Ferguson, M. C., Saul, S., Fragkoudis, R., Weisheit, S., Cox, J., Patabendige, A., … Fazakerley, J. K. (2015). La capacité du virus arbovirus encéphalitique Semliki Forest à traverser la barrière hémato-encéphalique est déterminée par la charge de la glycoprotéine E2. Journal of Virology, 89(15), 7536–7549. https://doi.org/10.1128/jvi.03645-14
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