Electrodo EVOM™ para TEER

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EVM-EL-03-01-01

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Precios válidos solo en EE. UU., Canadá y Puerto Rico.

Medición TEER en pocillos individuales

Usando WPI’s Manual EVOM™ medidor de resistencia, Endohm las cámaras proporcionan mediciones reproducibles de resistencia de monocapas endoteliales y epiteliales en copas de cultivo. Transfiera las copas de sus pozos de cultivo a la Endohm cámara para la medición en lugar de usar electrodos manuales. La cámara y la tapa contienen cada una un par de electrodos concéntricos: un pellet sensor de voltaje de plata/cloruro de plata en el centro más un electrodo anular de corriente. La altura del electrodo superior se puede ajustar para adaptarse a copas de cultivo celular de diferentes fabricantes.

¿Tiene curiosidad sobre cómo la cámara EndOhm mejora la reproducibilidad en experimentos TEER?

¡Descubra los beneficios aquí!



Detalles

Para la medición TEER de cultivos de células epiteliales y endoteliales

  • El nuevo soporte superior de la cámara EndOhm está hecho de policarbonato y no se ve afectado por el alcohol
  • La cámara de vidrio es más fácil de limpiar y más resistente a rayaduras que las versiones anteriores. No se recomienda usar el EndOhm en incubadoras debido al riesgo de que el vidrio se agriete.
  • Altura ajustable del electrodo apical
  • La cámara de vidrio cristalino permite visualizar la posición del electrodo apical
  • Nuevo soporte para insertos con soportes triangulares de 120º para insertos de tres patas
  • Tres tamaños cubren una variedad de tamaños de copas de pocillos de varios fabricantes
  • Compatible con EVOM3 y EVOM™ Manual

Para encontrar las cámaras EndOhm equivalentes compatibles con EVOM, EVOM2™ y Millicell® ERS y ERS2, visite la página del producto aquí.

Opciones

Código de pedido Descripción
EVM-EL-03-01-01 EndOhm para copas de cultivo de 6mm (24 pocillos por placa)
EVM-EL-03-01-02 EndOhm para copas de cultivo de 12mm (12 pocillos por placa)
EVM-EL-03-01-03 EndOhm para copas de cultivo Costar Snapwell de 24mm (6 pocillos por placa)

Beneficios

  • Estabilidad y reproducibilidad superiores a los electrodos STX4 con una tolerancia del 1%
  • Puede usarse con placas de 6, 12 o 24 pocillos con insertos removibles
  • El patrón simétrico de electrodos dispersa la corriente de prueba uniformemente
  • Soportes de tres patas ofrecen estabilidad mecánica y la membrana se mantiene paralela a los electrodos
  • Procedimiento de prueba simple para verificar el rendimiento del electrodo

Aplicaciones

  • Medición TEER para sistemas de copas de cultivo removibles usando medidores EVOM™ Manual para cultivos de células endoteliales y epiteliales

EVOM-Manual-EndOhm

Aplicación ENDOHM

Realice mediciones más precisas con EndOhms

Los electrodos de disco circular simétricamente opuestos de EndOhm, situados por encima y por debajo de la membrana, permiten que una densidad de corriente más uniforme fluya a través de la membrana que con el STX4 básico electrodos. La resistencia de fondo de un inserto en blanco se reduce de 150 Ω (al usar el STX4 portátil de WPI) electrodos) a menos de 5 Ω. Con la geometría fija de los electrodos de EndOhm, la variación de las lecturas en una muestra dada se reduce de 10-30 Ω con STX4 electrodos (dependiendo de la experiencia del usuario) a 1-2 Ω. En comparación con otros métodos de medición de resistencia, EndOhm con un medidor EVOM ofrece una solución mucho más conveniente y económica para la medición de “tejido con fugas”. Debido a la densidad uniforme de la corriente de onda cuadrada AC de EVOM™ Manual, los errores debidos a la polarización del electrodo o la capacitancia de la membrana se eliminan en gran medida. EndOhm junto con EVOM™ Manual ofrece el ohmímetro endotelial más preciso y económico disponible actualmente. Hasta la fecha, se han probado copas de Corning, Millipore, Nunc, Greiner y BD Falcon. Las cámaras EndOhm pueden esterilizarse con EtO, alcohol o un bactericida; no son autoclavables.

NOTA: Las cámaras EndOhm tienen electrodos de Ag/AgCl. Si planea hacer grabación continua de datos por un período prolongado, debe considerar los posibles efectos citotóxicos de la exposición a largo plazo a la plata en su tipo celular específico.

Tablas de compatibilidad

El ENDOHM-6 (#EVM-EL-03-01-01) es compatible con las siguientes cámaras:

Corning  Millipore   Material Diámetro de la membrana (mm) Área de superficie de crecimiento [cm-2] Tamaño de poro de la membrana [µm]
3470     6.5 0.33 0.4
3472 PITP01250   6.5 0.33 3.0
3413 Inserto PCF   6.5 0.33 0.4
3415 PITP 01250
Inserto PCF
  6.5 0.33 3.0
3421     6.5 0.33 5.0
3422 PIEP 01250
Inserto PCF
  6.5 0.33 8.0
3495  PIHT12R48*
Inserto PET
  6.5 0.33 0.4
  PIHA012 50 Inserto HA 6.5 0.33 0.45
  PICM012 50 Inserto CM 6.5 0.33 0.4
3496 PISP12R48*
Inserto PET
  6.5 0.33 3.0
  PIRP12R48*
Inserto PET
  6.5 0.33 1.0
  PIMP12R48*
Inserto PET
  6.5 0.33 5.0
  PIEP12R48*
Inserto PET
  6.5 0.33 8.0
  PIXP01250
Inserto PCF
  6.5 0.33 12
  PIHP01250       1.0
  PITT01250       3.0

* Los tri-soportes sobresalen del borde de la cámara y el pozo no puede mantenerse paralelo a los electrodos.

Nunc Tamaño de poro (μm) Área de cultivo (cm²)
140620 0.4 0.47
140627 3.0 0.47
140629 8.0 0.47

 

ThinCertTM Material de la membrana Tamaño de poro [µm] Densidad de poros [cm-2]-2] Propiedades ópticas de la membrana Tratamiento de superficie TC/Esterilizado Placas multiwell/ThinCertTM por caja
662640 PET 0.4 1 x 108 translúcido +/+ 2/48
662641 PET 0.4  2 x 106 transparente +/+ 2/48
662610 PET 1.0  2 x 106 transparente +/+ 2/48
662630 PET 3.0  0.6 x 106 transparente +/+ 2/48
662631 PET 3.0  2 x 106 translúcido +/+ 2/48
662638 PET 8.0  0.15 x 106 translúcido +/+ 2/48

 

Millicell Tamaño de poro (μm) Cantidad/paquete
MCHT24H48 0.4 48
MCRP24H48 1.0 48
MCSP24H48 3.0 48
MCMP24H48 5.0 48
MCEP24H48 8.0 48

 

BD Falcon Material de la membrana Tamaño de poro [µm] Densidad de poros [cm-2]-2] Propiedades ópticas de la membrana Placa TC (#pozos)
353095 PET 0.4 2.0 ± 0.2 x 106 transparente 24
353104 PET 1.0 1.6 ± 0.6 x 106 transparente 24
353096 PET 3.0 8 ± 2 x 105 transparente 24
353097 PET 8.0 6 ± 2 x 104 translúcido 24
353495 PET 0.4HD 100 ± 10 x 106 translúcido 24
353492 PET 3.0HD 2.0 ± 0.2 x 105 translúcido 24

 


El ENDOHM-12 (#EVM-EL-03-01-02) es compatible con las siguientes cámaras:

Corning Millipore Diámetro de la membrana (mm) Área de superficie de crecimiento [cm-2] Tamaño de poro de la membrana [µm]
3401   12  1.12 0.4
3402 PITP01250 12   1.12 3.0
  PITT01250 12   1.12 3.0
3493   12 1.12 0.4
3494   12 1.12 3.0
3460 PIHT15R48*
Inserto PET
12 1.12 0.4
  PIRP15R48*
Inserto PET
12 1.12 1.0
3462 PISP15R48*
Inserto PET
12 1.12 3.0
  PIMP15R48*
Inserto PET
12 1.12 5.0
  PIEP30R48*
PIEP15R48*
Inserto PET
12 1.12 8.0

* Las patas de tri-soporte deben estar equilibradas correctamente para que el filtro esté paralelo a los electrodos.

Nunc Tamaño de poro (μm) Área de cultivo (cm²)
140652 0.4 1.13
140654 3.0 1.13
140656 8.0 1.13

 

ThinCertTM Material de la membrana Tamaño de poro [µm] Densidad de poros [cm-2]-2] Propiedades ópticas de la membrana Tratamiento de superficie TC/Esterilizado Placas multiwell/ThinCertTM por caja
665640 PET 0.4 1 x 108 translúcido +/+ 4/48
665641 PET 0.4  2 x 106 transparente +/+ 4/48
665610 PET 1.0  2 x 106 transparente +/+ 4/48
665630 PET 3.0  0.6  x 106 transparente +/+ 4/48
665631 PET 3.0  2 x 106 translúcido +/+ 4/48
665638 PET 8.0  0.15 x 106 translúcido +/+ 4/48

 

Millicell Tamaño de poro (μm) Cantidad/paquete
MCHT12H48 0.4 48
MCRP12H48 1.0 48
MCSP12H48 3.0 48
MCMP12H48 5.0 48
MCEP12H48 8.0 48

 

BD Falcon Material de la membrana Tamaño de poro [µm] Densidad de poros [cm-2]-2] Propiedades ópticas de la membrana Placa TC (#pozos)
353180 PET 0.4 2.0 ± 0.2 x 106 transparente 12
353103 PET 1.0 1.6 ± 0.6 x 106 transparente 12
353181 PET 3.0 8 ± 2 x 105 transparente 12
353182 PET 8.0 6 ± 2 x 104 translúcido 12
353494 PET 0.4HD 100 ± 10 x 106 translúcido 12
353292 PET 3.0HD 2.0 ± 0.2 x 105 translúcido 12

 


El ENDOHM-24 (#EVM-EL-03-01-03) es compatible con las siguientes cámaras:

Corning Millipore  Material de la membrana Tamaño de poro (µm)
3407   Policarbonato 0.4
3801   Policarbonato 0.4
    Policarbonato 3.0
3412 PIHT30R48* Policarbonato 0.4
3414   Policarbonato 3.0
  PITT03050 Policarbonato 3.0
3428   Policarbonato 8.0
3450   Poliéster 0.4
3452   Poliéster 3.0 
3491   Colágeno 0.4
3492   Colágeno 3.0
  PICMORG50 Inserto organotípico 0.4
  PIHA03050 Inserto HA 0.45
  PIHP03050 Inserto PCF 0.4
  PICM03050 Ésteres mixtos de celulosa HA 0.4 
  PIHT30R48* Inserto PET 0.4
  PIRP30R48* Inserto PET 1.0
  PISP30R48* Inserto PET 3.0
  PIMP30R48* Inserto PET 5.0
  PIEP30R48* Inserto PET 8.0

* Las patas de soporte triple deben estar equilibradas correctamente para que el filtro esté paralelo a los electrodos.

Nunc Tamaño de poro (μm) Área de cultivo (cm²)
140640 0.4 3.14
140642 3.0 3.14
140644 8.0 3.14
140660 0.4 4.1
140663 3 4.1
140668 8 4.1

 

ThinCertTM Material de la membrana Tamaño de poro [µm] Densidad de poros [cm-2]-2] Propiedades ópticas de la membrana Tratamiento de superficie TC/Esterilizado Placas multiwell/ThinCertTM por caja
657640 PET 0.4 1 x 108 translúcido +/+ 4/24
657641 PET 0.4  2 x 106 transparente +/+ 4/24
657610 PET 1.0  2 x 106 transparente +/+ 4/24
657630 PET 3.0  0.6 x 106 transparente +/+ 4/24
657631 PET 3.0  2 x 106 translúcido +/+ 4/24
657638 PET 8.0  0.15 x 106 translúcido +/+ 4/24

 

Millicell Tamaño de poro (μm) Cantidad/paquete
MCHT06H48 0.4 48
MCRP06H48 1.0 48
MCSP06H48 3.0 48
MCMP06H48 5.0 48
MCEP06H48 8.0 48

 

BD Falcon Material de la membrana Tamaño de poro [µm] Densidad de poros [cm-2]-2] Propiedades ópticas de la membrana Placa TC (#pozos)
353090 PET 0.4 2.0 ± 0.2 x 106 transparente 6
353102 PET 1.0 1.6 ± 0.6 x 106 transparente 6
353091 PET 3.0 8 ± 2 x 105 transparente 6
353093 PET 8.0 6 ± 2 x 104 translúcido 6
353493 PET 0.4HD 100 ± 10 x 106 translúcido 6
353092 PET 3.0HD 2.0 ± 0.2 x 105 translúcido 6

 

Preguntas frecuentes

Recursos

Referencias

Sheller, R. A., Cuevas, M. E., & Todd, M. C. (2017). Comparación de técnicas para medir la resistencia transepitelial: Palillos vs. EndOhm. Biological Procedures Online, 19, 4. http://doi.org/10.1186/s12575-017-0053-6 

Srinivasan, B., Kolli, A. R., Esch, M. B., Abaci, H. E., Shuler, M. L., & Hickman, J. J. (2015). Técnicas de medición TEER para sistemas modelo de barrera in vitro. Journal of Laboratory Automation, 20(2), 107–26. http://doi.org/10.1177/2211068214561025

TORRES, R., PIZARRO, L., CSENDES, A., GARCÍA, C., LAGOS, N., Pasdar, M., … Roskelley, C. (2007). LOS EPÍMEROS GTX 2/3 PERMEAN EL INTESTINO A TRAVÉS DE UNA VÍA PARACELULAR. The Journal of Toxicological Sciences, 32(3), 241–248. http://doi.org/10.2131/jts.32.241 

Patil, R. V., Han, Z., Yiming, M., Yang, J., Iserovich, P., Wax, M. B., & Fischbarg, J. (2001). Transporte de fluidos por capas epiteliales ciliadas no pigmentadas humanas en cultivo: un papel homeostático para aquaporina-1. American Journal of Physiology - Cell Physiology, 281(4).


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