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El dispositivo TheraCyte entrega proteínas de alto peso molecular de al menos 900,000 Daltons, y puede usarse para cualquier investigación con células de la misma especie, sin supresión inmunológica o xenoinjertos con supresión inmunológica. Es perfecto para la administración de proteínas que son inestables y difíciles de fabricar o purificar. Los dispositivos TheraCyte ofrecen una entrega continua de proteínas.
| Código de pedido | Descripción | Tamaño | Estéril |
| 505395 | Dispositivo celular implantable TheraCyte, 17.5mm X 7.0mm X 2mm | 4.5 μL | Sí |
| 505396 | Dispositivo celular implantable TheraCyte, 22mm X 11.2mm X 3mm | 20 μL | Sí |
| 505397 | Dispositivo celular implantable TheraCyte, 44.2mm X 11.2mm X 3mm | 40 μL | Sí |
| 505398 | Dispositivo celular implantable TheraCyte, 44.2mm X 11.2mm X 3mm, 4 puertos | 40 μL | Sí |
TheraCyte es el único dispositivo de encapsulación celular de propósito general con marca disponible mundialmente para todos los investigadores. Es el dispositivo de encapsulación celular estándar de oro con 20 años de investigaciones publicadas y revisadas por pares. Con técnica y proceso comprobados para apoyar el desarrollo de nuevas líneas celulares e investigación de proteínas, TheraCyte ha desarrollado una reputación internacional como una marca de alta calidad.
Los dispositivos de encapsulación celular TheraCyte permiten el desarrollo de productos terapéuticos basados en células para tratar enfermedades crónicas y recurrentes, incluyendo diabetes, control de infecciones, deficiencias de proteínas y trastornos inmunológicos.
El sistema TheraCyte™ para encapsular y trasplantar células es una cámara polimérica basada en una membrana delgada. Está fabricado con membranas biocompatibles que protegen las células alogénicas del rechazo por parte del receptor y, cuando se implanta de forma subcutánea, induce el desarrollo de capilares sanguíneos cerca de las membranas. Esta característica de vascularización proporciona un suministro sanguíneo abundante para nutrir los tejidos dentro de las membranas, ayuda en la comunicación de las células implantadas con el huésped y asegura una rápida absorción de las moléculas terapéuticas.

Células productoras de insulina derivadas de células estromales mesenquimales de médula ósea humana adulta podrían controlar la diabetes inducida químicamente en perros: un estudio preliminar. Gabr MM, Zakaria MM, Refaie AF, Ismail AM, Khater SM, Ashamallah SA, Azzam MM, Ghoneim MA. Cell Transplantation 1-11. DOI: 10.1177/0963689718759913
Masa funcional de células beta derivadas de endodermo pancreático hESC encapsuladas en dispositivo que logran control metabólico. Robert T, De Mesmaeker I, Stange GM, Suenens KG, Ling Z, Kroon EJ, Pipeleers DG. j.stemcr.2018.01.040. doi.org/10.1016.
Macrocápsula porosa de poliamida impresa en 3D combinada con microcápsulas de alginato para terapias celulares más seguras. Saenz del Burgo L, Ciriza J, Espona-Noguera A, Illa X, Cabruja E, Orive G, Hernandez RM, Villa R, Pedraz JL, Alvarez M. Scientific Reports (2018) 8:8512. DOI:10.1038/s41598-018-26869-5.
Terapias con células madre para tratar la diabetes: avances y desafíos pendientes. Sneddon JB, Tang Q, Stock P, Bluestone JA, Roy S, Desai T, Hebrok M. j.stem.2018.05.016. https://doi.org/10.1016.
Tejido ovárico alogénico encapsulado en poli (etileno glicol)-vinil sulfona sintética (PEG-VS) y TheraCyte inmunoaislan tejido ovárico alogénico y restauran la función endocrina en ratones ovariectomizados. David A, Day JR, Cichon A, Lefferts A, Cascalho M, Shikanov A. Tissue Engineering Part A Vol 22: S150-S150.
El receptor del factor estimulante de colonias-1 es un componente central de la respuesta a cuerpo extraño a implantes de biomaterial en roedores y primates no humanos. Doloff JC, Veiseh O, Vegas AJ, Tam HH, Farah S, Ma M, Li J, et al. Nature materials 16 (6): 671-680. doi:10.1038/nmat4866.
Encapsulación de islotes: posibilidades y limitaciones fisiológicas. Korsgren O. Diabetes 2017 Jul; 66(7): 1748-1754. https://doi.org/10.2337/db17-0065.
Xenotrasplante de cerdo a primate: pasado, presente y futuro. Liu Z, Hu W, He T, Dai Y, Hara H, Bottino R, Cooper DKC, Cai Z, Mou L. Cell Transplant. 2017 Jun; 26(6): 925–947. doi: 10.3727/096368917X694859
Modulación de CXCL12 de respuestas inmunes localizadas a la macroencapsulación subcutánea de islotes. [abstract]. Penson M, Sremac M, Sirbulescu R, Brauns T, Harrington F, Poznansky M. Am J Transplant. 2017; 17 (suppl 3).
Tolerancia localizada y desarrollo de un sitio alternativo de trasplante para tratar la diabetes tipo 1. Skoumal, MJ. Tesis doctoral, Universidad de Michigan. ORCID ID: 0000-0001-6993-7369.
Macroencapsulación de islotes pancreáticos usando membranas porosas de micropocillos. Skrzypek K, Nibbelink MG, vanLente J, Buitinga M, Engelse MA, deKoning EJP, Karperien M, vanApeldoorn A, Stamatialis D. Scientific Reports volumen 7, número de artículo: 9186(2017)
Consideraciones para una terapia exitosa de células beta encapsuladas. Thanos CG, Gaglia JL, Pagliuca FW. Cell Therapy, Molecular and Translational Medicine, DF Emerich y G Orive (eds). DOI 10.1007/978-3-319-57153-9_2.
La coencapsulación y cotransplante de células madre mesenquimales reduce la fibrosis pericapsular y mejora la supervivencia y función de islotes encapsulados cuando se trasplantan alogénicamente. Vaithilingam V, Evans MDM, Lewy DM, Bean PA, Bal S, Tuch BE Scientific Reports volumen 7, número de artículo: 10059(2017). doi:10.1038/s41598-017-10359-1.
73 células madre adultas Sox 10+ contribuyen a la encapsulación de biomateriales y microvascularización. Wang D, Wang A, Wu F, Qiu X, Li Y, Chu J, Huang W-C, Xu K, Gong X, Li S. Sci Rep. 2017; 7: 40295. doi: 10.1038/srep40295.
La posible nomenclatura de productos encapsulados [abstract]. Wani TA, Masoodi FA, Wani IA. Food Chem. 1 de noviembre de 2017;234:119-120. doi:10.1016/j.foodchem.2017.04.121.
Dispositivos robustos de hidrogel habilitados con nanofibras para encapsulación y entrega de islotes, An D, Ma M. Front. Bioeng. Biotechnol. Resumen de conferencia: 10º Congreso Mundial de Biomateriales. doi: 10.3389/conf.FBIOE.2016.01.02609.
Supervivencia de islotes encapsulados: más que una cuestión de membrana. Barkai U, Rotem A, deVos P. World J Transplant 2016 24 de marzo; 6(1): 69-90. ISSN 2220-3230.
El hipotiroidismo afecta la maduración de células progenitoras pancreáticas derivadas de células madre humanas en ratones. Bruin JE, Saber N, O’Dwyer S, Fox JK, Mojibian M, Arora P, Rezania A, Kieffer TJ. Diabetes 2016;65:1297–1309. DOI: 10.2337/db15-1439.
Los componentes del inflamasoma ASC y AIM2 modulan la fase aguda de las respuestas de cuerpo extraño inducidas por implantes de biomateriales. Christo SN, Diener KR, Manavis J, Grimbaldeston MA, Bachhuka A, Vasilev K, Hayball JD. Sci Rep. 2016; 6: 20635.
Progresos en el xenotrasplante clínico encapsulado de islotes. Cooper DKC, Matsumoto S, Abalovich A, Itoh T, Mourad NI, Gianello PR, Wolf E, Cozzi E. Transplantation. noviembre de 2016; 100(11): 2301–2308. doi: 10.1097/TP.0000000000001371.
Fuentes de reemplazo de células beta para la diabetes tipo 1: un enfoque en las células ductales pancreáticas. Corritore E, Lee Y-S, Sokal EM, Lysy PA. Ther Adv Endocrinol Metab 2016, Vol. 7(4) 182–199. DOI: 10.1177/ 2042018816652050.
Inmunoaislamiento para prevenir el rechazo de injertos tisulares: conocimientos actuales y uso futuro. David A, Day J, Shikanov A. Exp Biol Med (Maywood). mayo de 2016; 241(9): 955–961. doi: 10.1177/1535370216647129.
Evaluación del aislamiento inmunológico de células progenitoras pancreáticas alogénicas de ratón mediante un dispositivo de macroencapsulación. Faleo G, Lee K, Nguyen V, Tang Q. World J Diabetes. 15 de noviembre de 2016;7(19): 523-533. doi: 10.4239/wjd.v7.i19.523.
La implantación de pseudoislotes beta humanos 1-1B4 mejora el control glucémico en ratones diabéticos con deficiencia inmune combinada severa. Green AD,Vasu S, McClenaghan NH, Flatt PR. World J Diabetes. 15 de noviembre de 2016;7(19): 523-533. doi: 10.4239/wjd.v7.i19.523.
Progresos y desafíos del páncreas bioartificial. Hwang PTJ, Shah DK, Garcia JA, Bae CY, Lim D-J, Huiszoon RC, Alexander GC, Jun H-W. Nano Convergence20163:28. https://doi.org/10.1186/s40580-016-0088-4.
Nanomateriales y medicina regenerativa [textbook]. Lin Y, Gong T (editores). IAPC Publishing, Zagreb Croacia, 2016.
Terapias celulares para el reabastecimiento de células beta pancreáticas. Okere B, Lucaccioni L, Dominici M, Lughetti L. Italian Journal of Pediatrics 2016 42:62. https://doi.org/10.1186/s13052-016-0273-4.
Revisión concisa: marcadores para evaluar implantes derivados de células madre humanas como reemplazo de células B en diabetes tipo 1. Pipeleers D, Robert T, DeMesmaeker I, Ling Z. Stem Cells Translational Medicine AlphaMed Press 1066-5099/2016. http://dx.doi.org/10.5966/sctm.2015-0187.
Progresos y desafíos en los enfoques de macroencapsulación para el tratamiento de la diabetes tipo 1 (T1D): células, biomateriales y dispositivos. Song S y Roy S. Biotechnol Bioeng. julio de 2016; 113(7): 1381–1402. doi: 10.1002/bit.25895.
Control glucémico a largo plazo usando células B derivadas de células madre humanas encapsuladas en polímero en ratones inmunocompetentes. Vegas A, Veiseh O, Gurtler M, Millman JR, Pagliuca FW, Bader AR, Doloff JC, Li J, Chen M, Olejnik K, Tam HH, Jhunjhunwala S, Langan et al. Nat Med. marzo de 2016; 22(3): 306–311. doi:10.1038/nm.4030.
Caracterización cuantitativa del colágeno en la cápsula fibrótica que rodea micropartículas poliméricas implantadas mediante imágenes de generación de segundo armónico. Akilbekova D, Bratlie KM. PLoS ONE 10(6): e0130386. doi:10.1371/journal.pone.0130386.
Respuesta del huésped a biomateriales: el impacto de la respuesta del huésped en la selección de biomateriales. Badylak, SF. New York, NY: Academic Press, 2015. 470 pp.
El tejido pancreático trasplantado en dispositivos de encapsulación TheraCyte está protegido y previene la hiperglucemia en un modelo murino de diabetes mediada por el sistema inmunológico. Boettler T, Schneider D, Cheng Y, Kadoya K, von Herrath M. Cell Transplantation 08/2015; 25(3). DOI: 10.3727/096368915X688920.
Inmunidad innata y biomateriales en el nexo: ¿amigos o enemigos? Christo SN, Diener KR, Bachhuka A, Vasilev K, Hayball JD. BioMed Research International Volumen 2015, Artículo ID 342304, 23 páginas. http://dx.doi.org/10.1155/2015/342304.
Células madre bioingenierizadas como alternativa para el trasplante de células de islotes. Moore SJ, Gala-Lopez BL, Pepper AR, Pawlick RL, Shapiro AM J. World J Transplant.Mar 24, 2015;5(1): 1-10.
Dispositivos de encapsulación celular micro- y nanoporosos de película delgada de policaprolactona. Nyitray CE, Chang R, Faleo G, Lance KD, Bernards DA, Tang Q, Desai TA. ACS Nano, 2015, 9 (6), pp 5675–5682. DOI: 10.1021/acsnano.5b00679.
Macroencapsulación de progenitores pancreáticos–¿Una nueva era en la terapia de la diabetes? Polidori GP. 2015, Vol. 1 No. 1: 5. DOI: 10.21767/2472-1964.100005.
Desarrollo de una terapia basada en células madre encapsuladas para la diabetes. Tomei AA, Villa C, Ricordi C. Expert Opinion on Biological Therapy 15:9, 1321-1336. DOI: 10.1517/14712598.2015.1055242.
Minirrevisión: Diferenciación dirigida y encapsulación de células B de islotes–Avances recientes y consideraciones futuras. Tse HM, Kozlovskaya V, Kharlampieva E, Hunter CS. Molecular Endocrinology October 2015, 29(10):1388–1399. doi: 10.1210/me.2015-1085.
Respuesta inmune de cuerpo extraño dependiente del tamaño y forma a materiales implantados en roedores y primates no humanos. Veiseh O, Doloff JC, Ma M, Vegas AJ, Tam HH, Bader AR, Li J, Langan E, Wyckoff J, Loo WS, Jhunjhunwala S, Chiu A, Siebert S, Tang K, et al. Nat Mater. 2015 Jun; 14(6): 643–651. doi:10.1038/nmat4290.
Tratamiento de la diabetes con islotes porcinos encapsulados: una actualización sobre los desarrollos actuales. Zhu H, Lu L, Liu X-Y, Yu L, Lyu Y, Wang B. Zhejiang Univ. Sci. B (2015) 16: https://doi.org/10.1631/jzus.B1400310.
Progenitores de islotes derivados de células madre embrionarias humanas maduran dentro de un dispositivo de encapsulación sin evidencia de aumento de biomasa o escape celular. Kirk K, Hao E, Lahmy R, Itkin-Ansari P. Stem Cell Research (2014) 12, 807–814. www.elsevier.com/locate/scr
Encapsulación de islotes y células madre para trasplante clínico Krishnan R, Alexander M, Robles L, Foster 3rd CE, Lakey JRT Rev Diabet Stud. 2014 Spring; 11(1): 84–101. doi: 10.1900/RDS.2014.11.84.
Composición y función de implantes macroencapsulados derivados de células madre embrionarias humanas: comparación con injertos clínicos de células de islotes humanos. Motte E, Szepessy E, Suenens K, Stange G, Pipeleers D. AJP Endocrinology and Metabolism 09/2014; 307(9). DOI:10.1152/ajpendo.00219.2014.
Estado actual de la encapsulación de islotes. Robles L, Storrs R, Lamb M, Alexander M, Lakey JRT. Cell Transplantation Vol. 23, pp. 1321–1348, 2014. DOI: http://dx.doi.org/10.3727/096368913X670949.
Islotes encapsulados para terapia de la diabetes: historia, progreso actual y cuestiones críticas que requieren solución. Scharp DW, Marchetti P. Advanced Drug Delivery Reviews 67–68 (2014) 35–73. www.elsevier.com/locate/addr
Revisión: Macroencapsulación de islotes en hidrogel de alcohol polivinílico [abstract]. Sumi S, Yanai G, Qi M, Sakata N, Qi Z, Yang K, Shirouzu Y, Hiura A, Gu Y, Inoue K. Med. Bio. Eng. 34(3): 204-210. doi: 10.5405/jmbe.1579.
Revisión: Regeneración y diferenciación de células B: ¿qué tan cerca estamos del “santo grial”? Tan G, Elefanty AG, Stanley EG. Molecular Endocrinology 2014 Dic;53(3):R119-29. doi: 10.1530/JME-14-0188.
Enriquecimiento de células progenitoras pancreáticas expresando NKX6.1 derivadas de células madre embrionarias humanas acelera la maduración de células secretoras de insulina in vivo. Rezania A, deBruin EC, Xu J, Narayan K, Kieffer TJ. Diabetologia 06/2013; 56(9). DOI:10.1007/s00125-013-2955-4.
Revisión: Macroencapsulación de islotes en hidrogel de alcohol polivinílico. Sumi S, Yanai G, Qi M, Sakata N, Qi Z, Yang K, Shirouzu Y, Hiura A, Gu Y, Inoue K. Med. Bio. Eng. 34(3): 204-210. doi: 10.5405/jmbe.1579.
El dispositivo TheraCyte protege contra el rechazo de aloinjertos de islotes en huéspedes inmunizados. Kumagai-Braesch M, Jacobsonb S, Moria H, Jiaa X, Tibella A. Cell Transplantation 10/2012; 22(7). DOI:10.3727/096368912X657486.
Formación inconsistente y no funcionalidad de células positivas para insulina derivadas del endodermo pancreático de células madre embrionarias humanas en ratas desnudas atímicas. Matveyenko AV, Georgia S, Bhushan A, Butler PC. AJP Endocrinology and Metabolism 299(5),e713-e720, 2010. https://doi.org/10.1152/ajpendo.00279.2010.
Imagen en tiempo real de bioluminiscencia de fibroblastos macroencapsulados revela protección del aloinjerto en monos rhesus (Macaca mulatta). Tarantal AF, Lee CC, Itkin-Ansari P. Transplantation. 2009 Jul 15;88(1):38-41. PubMed PMID: 19584678.
Precursores de células beta humanas maduran en células funcionales productoras de insulina en un dispositivo de inmunoaislamiento: implicaciones para terapias celulares en diabetes. Lee SH, Hao E, Savinov AY, Geron I, Strongin AY, Itkin-Ansari P. Transplantation. 2009 Abr 15;87(7):983-91. PubMed PMID: 19352116; PubMed Central PMCID: PMC2715156.
Tratamiento de ratas diabéticas con islotes encapsulados. J Cell Mol Med. Sweet IR, Yanay O, Waldron L, Gilbert M, Fuller JM, Tupling T, Lernmark A, Osborne WR. 2008 Dic;12(6B):2644-50. Epub 2008 Mar 28. PubMed PMID: 18373735.
La preimplantación de un dispositivo inmunoprotector puede reducir la dosis curativa de islotes a la de un trasplante libre de islotes: estudios en un modelo roedor. Sörenby AK, Kumagai-Braesch M, Sharma A, Hultenby KR, Wernerson AM, Tibell AB. Transplantation. 27 de julio de 2008;86(2):364-6. PubMed PMID: 18645504.
Tratamiento de osteoporosis con células paratiroideas encapsuladas en TheraCyte: un estudio en un modelo de rata. Chou FF, Huang SC, Chen SS, Wang PW, Huang PH, Lu KY. Osteoporos Int. 2006;17(6):936-41. Publicado en línea 5 de abril de 2006. PubMed PMID: 16596462.
Factor(es) soluble(s) de células de médula ósea pueden rescatar ratones irradiados letalmente protegiendo células madre hematopoyéticas endógenas. Zhao Y, Zhan Y, Burke KA, Anderson WF. (2005) Exp Hematol. 2005 Apr;33(4):428-34.
Xenotrasplante de células hepáticas porcinas neonatales. Garkavenko O, Emerich DF, Muzina M, Muzina Z, Vasconcellos AV, Ferguson AB, Cooper IJ, Elliott RB. (2005) Transplant Proc. 2005 Jan-Feb;37(1):477-80.
Trasplante de islotes de lechón micro y macroencapsulados en ratones y monos. Elliott RB, Escobar L, Calafiore R, Basta G, Garkavenko O, Vasconcellos A, Bambra C. (2005) Transplant Proc. 2005 Jan-Feb;37(1):466-9.
Experimentos de terapia génica basada en células en encefalomielitis autoinmune experimental murina. Louie KA, Weiner LP, Du1 J, Kochounian HH, Fling SP, Wei1 W y McMillan M. (2005) Gene Therapy 2005, Jul;12, 1145-1153. (Artículo destacado)
Ácido nucleico retroviral endógeno porcino en tejidos periféricos está asociado con la migración de células porcinas tras el trasplante de islotes. Binette TM, Seeberger KL, Lyon JG, Rajotte RV, Korbutt GS. (2004) Am. J. Transplant. 2004 Jul;4(7):1051-60.
Expresión génica a largo plazo de eritropoyetina a partir de células transducidas en dispositivos bioaislantes. Ofer Yanay, Simon C. Barry, Lisa Y. Flint, Margaret Brzezinski, Randall W. Barton y William R.A. Osborne Human Gene Therapy, Vol 14, páginas 1587-1593 (20 de noviembre de 2003)
Células de empaquetado retroviral encapsuladas en dispositivos de inmunoaislamiento TheraCyte permiten la entrega génica in vivo a largo plazo. Anna Krupetsky, Zahida Parveen, Elena Marusich, Adrienne Goodrich y Ralph Dornburg Frontiers in Bioscience 8, a94-101, 1 de mayo de 2003
Supervivencia de xenoinjertos de islotes pancreáticos en ratones NOD con el dispositivo TheraCyte. Z. Yanga, M. Chena, L. B. Fialkowa, J. D. Elletta, R. Wua y J. L. Nadler Transplantation Proceedings, Volumen 34, Páginas 3349-3350, 2002. Investigación patrocinada por The Islet Replacement Research Foundation
Supervivencia de tejido paratiroideo alogénico macroencapsulado un año después del trasplante en humanos no inmunosuprimidos. Tibell A, Rafael E, Wennberg L, Nordenstrom J, Bergstrom M, Geller RL, Loudovaris T, Johnson RC, Brauker JH, Neuenfeldt S, Wernerson A. Cell Transplant 2001;10(7):591-9
Las células madre mesenquimales de babuino pueden ser modificadas genéticamente para secretar eritropoyetina humana in vivo. Amelia Bartholomew, Sheila Patil, Alastair Mackay, Mary Nelson, Diana Buyaner, Wayne Hardy, Joseph Mosca, Cord Sturgeon, Mandy Siatskas, Nadim Mahmud, Karen Ferrer, Robert Deans, Annemarie Moseley, Ronald Hoffman y Steven M. Devine Human Gene Therapy (2001). 12:1527–1541
Protección de xenoinjertos mediante una combinación de inmunoaislamiento y una dosis única de anticuerpo anti-CD4. Mckenzie AW, Georgiou HM, Zhan Y, Brady JL, Lew AM. Cell Transplant 2001 Mar-Apr; 10(2):183-93
Mejora de la vascularización de dispositivos de difusión de membrana plana tras infusión continua de factor de crecimiento endotelial vascular. Trivedi N, Steil GM, Colton CK, Bonner-Weir S y Weir GC. (2000). Cell Transplant. Jan-Feb;9(1):115-24
Estudios longitudinales sobre la microcirculación alrededor del dispositivo de inmunoaislamiento TheraCyte, usando la técnica de láser Doppler. Rafael E, Gazelius B, Wu GS y Tibell A. (2000). Cell Transplant. Jan-Feb;9(1):107-13
Evaluación in vivo de la permeabilidad a la glucosa de un dispositivo de inmunoaislamiento destinado al trasplante de islotes: una aplicación novedosa de la técnica de microdiálisis. Rafael E, Wernerson A, Arner P, Wu GS y Tibell A. (1999). Cell Transplant. May-Jun;8(3):317-26
Estudios in vivo sobre la permeabilidad de insulina de un dispositivo de inmunoaislamiento destinado al trasplante de islotes usando la técnica de microdiálisis. Rafael E, Wernerson A, Arner P y Tibell A. (1999). Eur Surg Res. 31(3):249-58
Administración in vivo de hormona de crecimiento humana recombinante a partir de fibroblastos humanos genéticamente modificados implantados dentro de dispositivos de inmunoaislamiento Baxter. Josephs SF, Loudovaris T., Dixit A., Young SK. y Johnson RC. (1999). J. Mol. Med. vol 77, 211-214
Corrección de ratones NOD diabéticos con insulinomas implantados dentro de dispositivos de inmunoaislamiento Baxter. Loudovaris T., Jacobs S., Young S., Maryanov D., Brauker J. y Johnson RC. (1999). J. Mol. Med. vol 77, 219-222
Reversión de la hiperglucemia en ratones tras el trasplante subcutáneo de islotes macroencapsulados. Tatarkiewicz K, Hollister-Lock J, Quickel RR, Colton CK, Bonner-Weir S, Weir GC. (1999). Transplantation, 15 de marzo;67(5):665-71
Péptidos de Antígenos Menores de Histocompatibilidad Inmunodominantes Reconocidos por Linfocitos T Citolíticos Primados por Presentación Indirecta. Nevala WK, Paul C, y Wettstein PJ. (l998). Transplantation, 65: 559-69
Función y supervivencia de islotes sinérgicos macroencapsulados trasplantados en ratones diabéticos por estreptozotocina. Suzuki K, Bonner-Weir S, Trivedi N, Yoon KH, Hollister-Lock J, Colton CK, Weir GC. (1998). Transplantation, Jul 15;66(1):21-8
Expresión Sostenida de Altos Niveles del Factor Humano IIX desde Células Humanas Implantadas Dentro de un Dispositivo de Inmunoaislamiento en Roedores Atímicos. Brauker, J., Frost, G., Dwarki, V., Carr-Brendel, V., Jasunas, C., Hodgett, D., Stone, W., y Johnson, R.C. (1998). Human Gene Therapy 9:879-888
Uso de un Dispositivo de Inmunoaislamiento para Trasplante Celular e Inmunoterapia. Geller, R.G., Loudovaris, T., Johnson, R.C., y Brauker, J.H. (1997). Ann N Y Acad Sci. Dec 31;831:438-51
Inmunoaislamiento de Células Tumorales: Generación de Inmunidad Antitumoral a Través de la Presentación Indirecta de Antígeno. Geller, R.L., Neuenfeldt, S., Levon, S.A., Maryanov, D.A., Thomas, T.J., y Brauker, J.H. (1997). J. Immunother. 20(2):131-137.
Trasplante de Células en un Dispositivo de Inmunoaislamiento para Terapia Génica. Carr-Brendel, V.E., Geller, R.L., Thomas, T.J., Boggs, D.R., Young, S.K., Crudele, J., Martinson, L.A., Maryanov, D.A., Johnson, R.C., y Brauker, J.H. (1997). Methods Mol Biol. 63:373-87.
Respuesta Inflamatoria Local Alrededor de Cámaras de Difusión Conteniendo Xenoinjertos: Destrucción No Específica de Tejidos y Disminución de la Vascularización Local. Brauker, J., Martinson, L.A., Young, S.K., y Johnson, R.C. (1996). Transplantation, Vol 61: No. 12, 1671-1677
Destrucción Mediadas por Células T CD4+ de Xenoinjertos Dentro de Membranas Impermeables a Células en Ausencia de Células T CD8+ y Células B. Loudovaris, T., Mandel, T.E., y Charlton, B. (1996). Transplantation, 61:1678-1684
Estructura y función de islotes pancreáticos humanos y de roedores macroencapsulados trasplantados en ratones desnudos. Andersson A, Eizirik DL, Bremer C, Johnson RC, Pipeleers DG, Hellerstrom C. (1996). Horm Metab Res. Jun; 28(6):306-9
Neovascularización de Membranas Sintéticas Dirigida por la Microarquitectura de la Membrana. Brauker, J. H., Carr-Brendel, V. E., Martinson, L.A., Crudele, J., Johnston, W.D., y Johnson, R.C. (1995). J. Biomed. Mat. Res., Vol. 29: 1517-1524
Órganos Artificiales Biohíbridos Implantables. Colton, CK. (1995). Cell Transplantation 4(4):415-436. Artículo de Revisión. Datos de TheraCyte, pp 427,432,433

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