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ENDOHM-24G-SNAP
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Precios válidos solo en EE. UU., Canadá y Puerto Rico.
Estas cámaras de copa de cultivo celular se usan en la medición TEER para sistemas de copas de cultivo removibles que utilizan medidores EVOM2 para cultivos celulares endoteliales y epiteliales.
NOTA: Estas EndOhms son para usar con medidores EVOM™ antiguos. Para EndOhms usados con el nuevo Manual EVOM™ (o EVOM3), vea Electrodos EVOM™ para TEER.
EndOhm las cámaras proporcionan mediciones reproducibles de resistencia de monocapas endoteliales y epiteliales en copas de cultivo. Transfiera las copas de sus pozos de cultivo a la EndOhm cámara para la medición en lugar de usar electrodos manuales. La cámara y la tapa contienen cada una un par de electrodos concéntricos: un pellet sensor de voltaje de plata/cloruro de plata en el centro más un electrodo anular de corriente. La altura del electrodo superior se puede ajustar para adaptarse a copas de cultivo celular de diferentes fabricantes.
Para saber más sobre nuestras opciones de garantía, haga clic aquí.
Para encontrar las cámaras EndOhm equivalentes compatibles con EVOM3 o Manual EVOM™, visite la página del producto aquí.
| Código de pedido | Descripción |
| ENDOHM-24G-SNAP | EndOhm para copas de cultivo de 24mm y Costar Snapwell (6 pocillos por placa) |
| ENDOHM-12G | EndOhm para copas de cultivo de 12mm (12 pocillos por placa) |
| ENDOHM-6G | EndOhm para copas de cultivo de 6mm (24 pocillos por placa) |


Uso de WPI’s EVOM2 medidor de resistencia, las cámaras Endohm proporcionan mediciones reproducibles de resistencia de monocapas endoteliales y epiteliales en copas de cultivo. Transfiera las copas de sus pocillos de cultivo a la cámara Endohm para la medición en lugar de usar electrodos portátiles. La cámara y la tapa contienen cada una un par de electrodos concéntricos: un pellet sensor de voltaje de plata/cloruro de plata en el centro más un electrodo anular de corriente. La altura del electrodo superior puede ajustarse para adaptarse a copas de cultivo celular de diferentes fabricantes.
Realice mediciones más precisas con Endohms
Los electrodos circulares simétricamente opuestos de Endohm, situados por encima y por debajo de la membrana, permiten que fluya una densidad de corriente más uniforme a través de la membrana que con STX2 electrodos. La resistencia de fondo de un inserto en blanco se reduce de 150 Ω (al usar el medidor de resistencia portátil de WPI STX2 electrodos) a menos de 5 Ω. Con la geometría fija de los electrodos de Endohm, la variación de las lecturas en una muestra dada se reduce de 10-30 Ω con STX2 electrodos (dependiendo de la experiencia del usuario) a 1-2 Ω. En comparación con otros métodos de medición de resistencia, Endohm con EVOM2™ ofrece una solución mucho más conveniente y económica para la medición de “tejido con fugas”. Debido a la densidad uniforme de la corriente de onda cuadrada AC de EVOM2, los errores debidos a la polarización del electrodo o la capacitancia de la membrana se eliminan en gran medida. Endohm junto con EVOM2 ofrece el ohmímetro endotelial más preciso y económico disponible actualmente. Hasta la fecha, se han probado copas de Corning, Millipore, Nunc, Greiner y BD Falcon. Las cámaras Endohm pueden esterilizarse con EtO, alcohol o un bactericida; no son autoclavables.
NOTA: Las cámaras EndOhm tienen electrodos de Ag/AgCl. Si va a medir durante períodos prolongados, debe considerar cualquier posible problema citotóxico por la exposición a largo plazo de las células a la plata.
El ENDOHM-6G es compatible con las siguientes cámaras:
| Corning | Millipore | Material | Diámetro de la membrana (mm) | Área de superficie de crecimiento (cm²) | Tamaño de poro de la membrana (μm) |
| 3470 | 6.5 | 0.33 | 0.4 | ||
| 3472 | PITP01250 | 6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| 3413 | Inserto PCF | 6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| 3415 | PITP 01250 Inserto PCF |
6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| 3421 | 6.5 | 0.33 | 5.0 | ||
| 3422 | PIEP 01250 Inserto PCF |
6.5 | 0.33 | 8.0 | |
| 3495 | PIHT12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| PIHA012 50 | Inserto HA | 6.5 | 0.33 | 0.45 | |
| PICM012 50 | Inserto CM | 6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| 3496 | PISP12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| PIRP12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 1.0 | ||
| PIMP12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 5.0 | ||
| PIEP12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 8.0 | ||
| PIXP01250 Inserto PCF |
6.5 | 0.33 | 12 | ||
| PIHP01250 | 1.0 | ||||
| PITT01250 | 3.0 |
* Los tri-soportes sobresalen del borde de la cámara y el pocillo no puede mantenerse paralelo a los electrodos.
| Nunc | Tamaño de poro (μm) | Área de cultivo (cm²) |
| 140620 | 0.4 | 0.47 |
| 140627 | 3.0 | 0.47 |
| 140629 | 8.0 | 0.47 |
| ThinCertTM | Material de la membrana | Tamaño de poro [µm] | Densidad de poros [cm-2]-2] | Propiedades de la membrana óptica | Tratamiento de superficie TC/Esterilizado | Placas Multiwell/ThinCertTM por caja |
| 662640 | PET | 0.4 | 1 x 108 | translúcido | +/+ | 2/48 |
| 662641 | PET | 0.4 | 2 x 106 | transparente | +/+ | 2/48 |
| 662610 | PET | 1.0 | 2 x 106 | transparente | +/+ | 2/48 |
| 662630 | PET | 3.0 | 0.6 x 106 | transparente | +/+ | 2/48 |
| 662631 | PET | 3.0 | 2 x 106 | translúcido | +/+ | 2/48 |
| 662638 | PET | 8.0 | 0.15 x 106 | translúcido | +/+ | 2/48 |
| Millicell | Tamaño de poro (μm) | Cantidad/paquete |
| MCHT24H48 | 0.4 | 48 |
| MCRP24H48 | 1.0 | 48 |
| MCSP24H48 | 3.0 | 48 |
| MCMP24H48 | 5.0 | 48 |
| MCEP24H48 | 8.0 | 48 |
| BD Falcon | Material de la membrana | Tamaño de poro [µm] | Densidad de poros [cm-2]-2] | Propiedades de la membrana óptica | Placa TC (#pozos) |
| 353095 | PET | 0.4 | 2.0 ± 0.2 x 106 | transparente | 24 |
| 353104 | PET | 1.0 | 1.6 ± 0.6 x 106 | transparente | 24 |
| 353096 | PET | 3.0 | 8 ± 2 x 105 | transparente | 24 |
| 353097 | PET | 8.0 | 6 ± 2 x 104 | translúcido | 24 |
| 353495 | PET | 0.4HD | 100 ± 10 x 106 | translúcido | 24 |
| 353492 | PET | 3.0HD | 2.0 ± 0.2 x 105 | translúcido | 24 |
El ENDOHM-12G es compatible con las siguientes cámaras:
| Corning | Millipore | Diámetro de la membrana (mm) | Área de superficie de crecimiento (cm²) | Tamaño de poro de la membrana (μm) |
| 3401 | 12 | 1.12 | 0.4 | |
| 3402 | PITP01250 | 12 | 1.12 | 3.0 |
| PITT01250 | 12 | 1.12 | 3.0 | |
| 3493 | 12 | 1.12 | 0.4 | |
| 3494 | 12 | 1.12 | 3.0 | |
| 3460 | PIHT15R48* Inserto PET |
12 | 1.12 | 0.4 |
| PIRP15R48* Inserto PET |
12 | 1.12 | 1.0 | |
| 3462 | PISP15R48* Inserto PET |
12 | 1.12 | 3.0 |
| PIMP15R48* Inserto PET |
12 | 1.12 | 5.0 | |
|
PIEP30R48* PIEP15R48* Inserto PET |
12 | 1.12 | 8.0 |
* Las patas de triple soporte deben estar equilibradas correctamente para que el filtro esté paralelo a los electrodos.
| Nunc | Tamaño de poro (μm) | Área de cultivo (cm²) |
| 140652 | 0.4 | 1.13 |
| 140654 | 3.0 | 1.13 |
| 140656 | 8.0 | 1.13 |
| ThinCertTM | Material de la membrana | Tamaño de poro [µm] | Densidad de poros [cm-2]-2] | Propiedades de la membrana óptica | Tratamiento de superficie TC/Esterilizado | Placas Multiwell/ThinCertTM por caja |
| 665640 | PET | 0.4 | 1 x 108 | translúcido | +/+ | 4/48 |
| 665641 | PET | 0.4 | 2 x 106 | transparente | +/+ | 4/48 |
| 665610 | PET | 1.0 | 2 x 106 | transparente | +/+ | 4/48 |
| 665630 | PET | 3.0 | 0.6 x 106 | transparente | +/+ | 4/48 |
| 665631 | PET | 3.0 | 2 x 106 | translúcido | +/+ | 4/48 |
| 665638 | PET | 8.0 | 0.15 x 106 | translúcido | +/+ | 4/48 |
| Millicell | Tamaño de poro (μm) | Cantidad/paquete |
| MCHT12H48 | 0.4 | 48 |
| MCRP12H48 | 1.0 | 48 |
| MCSP12H48 | 3.0 | 48 |
| MCMP12H48 | 5.0 | 48 |
| MCEP12H48 | 8.0 | 48 |
| BD Falcon | Material de la membrana | Tamaño de poro [µm] | Densidad de poros [cm-2]-2] | Propiedades de la membrana óptica | Placa TC (#pozos) |
| 353180 | PET | 0.4 | 2.0 ± 0.2 x 106 | transparente | 12 |
| 353103 | PET | 1.0 | 1.6 ± 0.6 x 106 | transparente | 12 |
| 353181 | PET | 3.0 | 8 ± 2 x 105 | transparente | 12 |
| 353182 | PET | 8.0 | 6 ± 2 x 104 | translúcido | 12 |
| 353494 | PET | 0.4HD | 100 ± 10 x 106 | translúcido | 12 |
| 353292 | PET | 3.0HD | 2.0 ± 0.2 x 105 | translúcido | 12 |
El ENDOHM-24SNAP es compatible con las siguientes cámaras:
| Corning | Millipore | Material de la membrana | Tamaño de poro (µm) |
| 3407 | Policarbonato | 0.4 | |
| 3801 | Policarbonato | 0.4 | |
| Policarbonato | 3.0 | ||
| 3412 | PIHT30R48* | Policarbonato | 0.4 |
| 3414 | Policarbonato | 3.0 | |
| PITT03050 | Policarbonato | 3.0 | |
| 3428 | Policarbonato | 8.0 | |
| 3450 | Poliéster | 0.4 | |
| 3452 | Poliéster | 3.0 | |
| 3491 | Colágeno | 0.4 | |
| 3492 | Colágeno | 3.0 | |
| PICMORG50 | Inserto organotípico | 0.4 | |
| PIHA03050 | Inserto HA | 0.45 | |
| PIHP03050 | Inserto PCF | 0.4 | |
| PICM03050 | Ésteres mixtos de celulosa HA | 0.4 | |
| PIHT30R48* | Inserto PET | 0.4 | |
| PIRP30R48* | Inserto PET | 1.0 | |
| PISP30R48* | Inserto PET | 3.0 | |
| PIMP30R48* | Inserto PET | 5.0 | |
| PIEP30R48* | Inserto PET | 8.0 |
* Las patas de triple soporte deben estar equilibradas correctamente para que el filtro esté paralelo a los electrodos.
| Nunc | Tamaño de poro (μm) | Área de cultivo (cm²) |
| 140640 | 0.4 | 3.14 |
| 140642 | 3.0 | 3.14 |
| 140644 | 8.0 | 3.14 |
| 140660 | 0.4 | 4.1 |
| 140663 | 3 | 4.1 |
| 140668 | 8 | 4.1 |
| ThinCertTM | Material de la membrana | Tamaño de poro [µm] | Densidad de poros [cm-2]-2] | Propiedades de la membrana óptica | Tratamiento de superficie TC/Esterilizado | Placas Multiwell/ThinCertTM por caja |
| 657640 | PET | 0.4 | 1 x 108 | translúcido | +/+ | 4/24 |
| 657641 | PET | 0.4 | 2 x 106 | transparente | +/+ | 4/24 |
| 657610 | PET | 1.0 | 2 x 106 | transparente | +/+ | 4/24 |
| 657630 | PET | 3.0 | 0.6 x 106 | transparente | +/+ | 4/24 |
| 657631 | PET | 3.0 | 2 x 106 | translúcido | +/+ | 4/24 |
| 657638 | PET | 8.0 | 0.15 x 106 | translúcido | +/+ | 4/24 |
| Millicell | Tamaño de poro (μm) | Cantidad/paquete |
| MCHT06H48 | 0.4 | 48 |
| MCRP06H48 | 1.0 | 48 |
| MCSP06H48 | 3.0 | 48 |
| MCMP06H48 | 5.0 | 48 |
| MCEP06H48 | 8.0 | 48 |
| BD Falcon | Material de la membrana | Tamaño de poro [µm] | Densidad de poros [cm-2]-2] | Propiedades de la membrana óptica | Placa TC (#pozos) |
| 353090 | PET | 0.4 | 2.0 ± 0.2 x 106 | transparente | 6 |
| 353102 | PET | 1.0 | 1.6 ± 0.6 x 106 | transparente | 6 |
| 353091 | PET | 3.0 | 8 ± 2 x 105 | transparente | 6 |
| 353093 | PET | 8.0 | 6 ± 2 x 104 | translúcido | 6 |
| 353493 | PET | 0.4HD | 100 ± 10 x 106 | translúcido | 6 |
| 353092 | PET | 3.0HD | 2.0 ± 0.2 x 105 | translúcido | 6 |
Manual de instrucciones Endohm
Tablas de compatibilidad EndOhm-6G (EVM-EL-03-01-01)
Tablas de compatibilidad EndOhm-12G (EVM-EL-03-01-02)
Tablas de compatibilidad EndOhm-24G-SNAP (EVM-EL-03-01-03)
Solución de problemas para lecturas de resistencia inestables de un ENDOHM
Una de nuestras preguntas frecuentes (FAQs) se refiere a las mediciones TEER con un EndOhm. Si las lecturas de resistencia de su EndOhm no se estabilizan, puede que necesite hacer algunas soluciones de problemas.
Pruebe el medidor manual EVOM™: Primero, pruebe su medidor EVOM™. El resistor de prueba de 1000Ω (WPI # 91750) puede usarse para este propósito. Inserte el conector RJ-11 al final del resistor de prueba en el puerto de entrada del medidor. Ajuste el interruptor de función a Ohmios. Desconecte el medidor EVOM™ del cargador y encienda la alimentación (I). El medidor debe mostrar 1000Ω. Si no es así, ajuste el tornillo R ADJ con un destornillador de cabeza ranurada pequeño hasta que el medidor muestre una lectura de 1000Ω. Si el medidor EVOM™ lee 1000 ± 2-3 ohmios, y la lectura se mantiene estable, entonces el medidor EVOM™ está funcionando correctamente.
Pruebe el EndOhm: A continuación, pruebe el EndOhm. Aún puede probar el EndOhm cualitativamente exponiéndolo a diferentes concentraciones de KCl. Las lecturas siempre deben ser un valor TEER estable y más bajo a concentraciones más altas, y un valor más alto pero potencialmente menos estable a concentraciones más bajas. En general, si la lectura TEER está disminuyendo, significa que la corriente está encontrando un camino alternativo de menor resistencia que a través del medio solo, o que la preparación está de alguna manera adoptando una carga. Si el problema está realmente en el EndOhm, normalmente será causado por una fuga de medio de cultivo debajo de las superficies del electrodo, donde puede atacar las uniones de los cables a los discos de Ag/AgCl. Una reacción retardada puede tomar tiempo para que el medio se infiltre en fisuras muy finas donde el pegamento ha perdido la integridad del sello. Si la lectura TEER se desplaza continuamente hacia abajo muy por debajo del valor esperado, entonces lo más probable es que el EndOhm tenga una fuga en la unión del electrodo o corrosión en alguna parte de las vías de corriente o voltaje. Si el EndOhm ha desarrollado fisuras finas, debe ser reemplazado.
Sheller, R. A., Cuevas, M. E., & Todd, M. C. (2017). Comparación de técnicas de medición de resistencia transepitelial: Palillos vs. Endohm. Biological Procedures Online, 19, 4. http://doi.org/10.1186/s12575-017-0053-6
Srinivasan, B., Kolli, A. R., Esch, M. B., Abaci, H. E., Shuler, M. L., & Hickman, J. J. (2015). Técnicas de medición TEER para sistemas modelo de barrera in vitro. Journal of Laboratory Automation, 20(2), 107–26. http://doi.org/10.1177/2211068214561025
TORRES, R., PIZARRO, L., CSENDES, A., GARCÍA, C., LAGOS, N., Pasdar, M., … Roskelley, C. (2007). LOS EPÍMEROS GTX 2/3 PERMEAN EL INTESTINO A TRAVÉS DE UNA VÍA PARACELULAR. The Journal of Toxicological Sciences, 32(3), 241–248. http://doi.org/10.2131/jts.32.241
Patil, R. V., Han, Z., Yiming, M., Yang, J., Iserovich, P., Wax, M. B., & Fischbarg, J. (2001). Transporte de fluidos por capas epiteliales ciliadas no pigmentadas humanas en cultivo: un papel homeostático para la aquaporina-1. American Journal of Physiology - Cell Physiology, 281(4).

$2,250.00
53330-01
La serie de cámaras EndOhm, cuando se usan con el medidor de resistencia EVOM2 de WPI o el Millicell ERS, están diseñadas para proporcionar mediciones reproducibles y precisas de la resistencia del tejido endotelial en copas de cultivo. Los valores de resistencia obtenidos con el EndOhm son consistentes con los obtenidos usando una Cámara Ussing bien diseñada.
EVOM™ Auto es la última generación del sistema automatizado de WPI para la medición de resistencia eléctrica transepitelial o transendotelial (TEER). Utilizando la misma tecnología comprobada en el EVOM™ Manual y REMS, combinada con una nueva matriz de múltiples electrodos, interfaz de software y sistema de control, ofrece nuestra solución de flujo de trabajo más rápida mientras mejora la precisión en la medición de TEER:
En 2022, la Administración de Alimentos y Medicamentos de los Estados Unidos (FDA) aprobó 37 nuevos medicamentos, de los cuales 20 fueron entidades químicas y 17 fueron biológicos. En 2023, el descubrimiento de medicamentos sigue siendo fuerte con muchos avances nuevos como resultado de los cambios en los tipos de medicamentos que se están desarrollando y los nuevos e innovadores ensayos que se están lanzando para evaluar medicamentos en la fase preclínica. El desarrollo terapéutico sigue estando muy enfocado en enfermedades que afectan a grandes poblaciones para las cuales no existen tratamientos efectivos, y se espera que los lanzamientos de medicamentos más anticipados de 2023 sean en áreas de cáncer, enfermedad de Alzheimer, enfermedades cardiovasculares y colitis ulcerosa.
En 2022, la Administración de Alimentos y Medicamentos de los Estados Unidos (FDA) aprobó 37 nuevos medicamentos, de los cuales 20 fueron entidades químicas y 17 fueron biológicos. En 2023, el descubrimiento de fármacos sigue siendo fuerte con muchos avances nuevos como resultado de los cambios en los tipos de medicamentos que se están desarrollando y los nuevos e innovadores ensayos que se están lanzando para evaluar los medicamentos de forma preclínica. El desarrollo terapéutico sigue estando muy enfocado en enfermedades que afectan a grandes poblaciones para las cuales no existen tratamientos efectivos, y se espera que los lanzamientos de medicamentos más anticipados de 2023 sean en áreas de cáncer, enfermedad de Alzheimer, enfermedades cardiovasculares y colitis ulcerosa.
La Resistencia Eléctrica Transepithelial (TEER) es una técnica ampliamente utilizada en los campos de las ciencias de la vida y el desarrollo terapéutico. Mide la resistencia eléctrica a través de una monocapa celular, proporcionando información sobre la integridad y funcionalidad de las barreras epiteliales. TEER ha demostrado ser una herramienta valiosa en diversos campos, incluyendo estudios de absorción de fármacos, ingeniería de tejidos y modelado de enfermedades. Este artículo tiene como objetivo explorar los beneficios de TEER y sus aplicaciones en diferentes áreas de investigación.
La medición de la resistencia eléctrica transepitelial/transendotelial (TEER) es una de las prácticas más utilizadas para evaluar la salud celular, como la confluencia celular, la integridad de la barrera o la función de barrera de monocapas celulares cultivadas en multiwell. La medición de TEER usando el Voltohmmeter Epitelial (EVOM) de WPI se considera el estándar de oro debido a sus mediciones confiables y numerosas citas en la literatura utilizando varios tipos de células. El Manual EVOM™ y EVOM™ Auto junto con diferentes opciones de electrodos (STX4, STX HTS para cribado de alto rendimiento, cámaras EndOhm y matriz multielectrodo para EVOM™ Auto) permiten a los investigadores realizar y analizar muestras celulares en insertos removibles de 6, 12 y 24 y formatos de placas multiwell HTS de 24 y 96 pocillos. Los principales desafíos que los investigadores pueden encontrar al realizar estudios para capturar la medición de TEER incluyen:
· Lecturas inestables
· Valores fuera de rango
· Mediciones inconsistentes entre réplicas o lotes de muestras.
Considere los siguientes factores para superar cualquier problema en la medición de TEER y obtener mediciones precisas y confiables.
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