El papel de las bombas de jeringa Aladdin en aplicaciones de órganos en chip

Entre la amplia variedad de líneas celulares exploradas en los espacios preclínicos de órganos en un chip (OOC), existen muchas soluciones de bombeo de nivel alto, medio y básico disponibles. Aunque varias soluciones de alta gama que ofrecen la máxima precisión de flujo (dentro del 1%) durante un período prolongado de observación pueden ser atractivas, este nivel de precisión puede no ser crítico para lograr la confluencia en todas las líneas celulares, lo que abre puertas a resultados prometedores para muchos usuarios finales que buscan simplicidad en sus flujos de trabajo.

Explore las muchas formas en que la línea de Bomba de Jeringa Aladdin de WPI ha servido tanto en los espacios de laboratorio como en los de órganos en un chip:

  1. Abbasi, R., LeFevre, T. B., Benjamin, A. D., Thornton, I. J., & Wilking, J. N. (2021). Acoplamiento del flujo de fluido a dispositivos fluidos de hidrogel con conexiones reversibles tipo "pop-it". Lab on a Chip, 21(10), 2050–2058. https://doi.org/10.1039/d1lc00135c
  2. Busek, M., Nøvik, S., Aizenshtadt, A., Amirola-Martinez, M., Combriat, T., Grünzner, S., & Krauss, S. (2021). Dispositivos híbridos de elastómero termoplástico (TPE)-Polimetilmetacrilato (PMMA) para sistemas Organ-on-a-Chip sin PDMS con bombeo activo. Biosensors, 11(5), 162. https://doi.org/10.3390/bios11050162
  3. Carvalho, D. J., Kip, A. M., Romitti, M., Nazzari, M., Tegel, A., Stich, M., Krause, C., Caiment, F., Costagliola, S., Moroni, L., & Giselbrecht, S. (2023). Tiroides-en-un-Chip: una plataforma de organoides para la evaluación in vitro de la alteración endocrina. Advanced healthcare materials, 12(8), e2201555. https://doi.org/10.1002/adhm.202201555
  4. Chen, Z., Huang, J., Zhang, J., Xu, Z., Li, Q., Ouyang, J., Yan, Y., Sun, S., Ye, H., Wang, F., Zhu, J., Wang, Z., Chao, J., Pu, Y., & Gu, Z. (2023). Una tormenta en una taza de té -- Un sistema microfisiológico biomimético pulmonar junto con un algoritmo de aprendizaje profundo para monitorear reacciones patológicas e inflamatorias pulmonares. Biosensors & Bioelectronics, 219, 114772. https://doi.org/10.1016/j.bios.2022.114772
  5. Conde, A. J., Keraite, I., Ongaro, A. E., & Kersaudy-Kerhoas, M. (2020). Micromezclador acústico híbrido versátil con demostración de extracción de ADN libre de células circulante de muestras de plasma sub-ml. Lab on a Chip, 20(4), 741–748. https://doi.org/10.1039/c9lc01130g
  6. Deli, M.A., Porkoláb, G., Kincses, A., Mészáros, M., Szecskó, A., Kocsis, A.E., Vigh, J.P., Valkai, S., Veszelka, S., Walter, F.R., & Dér, A. Modelos Lab-on-a-chip de la barrera hematoencefálica: evolución, problemas, perspectivas. Lab on a Chip, 24(5), 1030-1063. https://doi.org/10.1039/D3LC00996C
  7. Elitas, M., Dhar, N., & McKinney, J. D. (2021). Revelando la tolerancia a antibióticos del mutante permeasa de xantina/uracilo de Mycobacterium smegmatis mediante microfluidos y análisis de célula única. Antibiotics (Basel), 10(7), 794. https://doi.org/10.3390/antibiotics10070794
  8. Liu, E.Y., Jung, S., Weitz, D.A., Yi, H., & Choi, C.H. (2018). Producción microfluídica de alto rendimiento basada en doble emulsión de microesferas de hidrogel con funcionalidades químicas ajustables para la conjugación biomolecular. Lab on a Chip, 18(2), 323-334. https://doi.org/10.1039/C7LC01088E
  9. Mazzarda, F., D'Elia, A., Massari, R., De Ninno, A., Bertani, F. R., Businaro, L., Ziraldo, G., Zorzi, V., Nardin, C., Peres, C., Chiani, F., Tettey-Matey, A., Raspa, M., Scavizzi, F., Soluri, A., Salvatore, A. M., Yang, J., & Mammano, F. (2020). Modelo organ-on-chip muestra que la liberación de ATP a través de hemicanales de conexina impulsa la señalización espontánea de Ca2+ en células no sensoriales de la cresta epitelial mayor en la cóclea en desarrollo. Lab on a Chip, 20(16), 3011–3023. https://doi.org/10.1039/d0lc00427h
  10. McMillan, K.S., Boyd, M., & Zagnoni, M. (2016). Transición de microfluídica multifásica a monofásica para cultivo y tratamiento a largo plazo de esferoides multicelulares. Lab on a Chip, 16(18), 3548-3557. https://doi.org/10.1039/C6LC00884D
  11. Nguyen, A., Brandt, M., Muenker, T. M., & Betz, T. (2021). Microrreología multi-oscilación mediante espectroscopía de fuerza acústica permite mediciones dependientes de frecuencia en células endoteliales con alto rendimiento. Lab on a Chip, 21(10), 1929–1947. https://doi.org/10.1039/d0lc01135e
  12. Protopapa, G., Bono, N., Visone, R., D'Alessandro, F., Rasponi, M., & Candiani, G. (2023). Nueva plataforma microfluídica para la preparación altamente reproducible de complejos de entrega génica no viral. Lab on a Chip, 23(1), 136-145. https://doi.org/10.1039/D2LC00744D
  13. Stanley, C.E., Shrivastava, J., Brugman, R., Heinzelmann, E., van Swaay, D., & Grossmann, G. (2018). Dual-flow-RootChip revela adaptaciones locales de raíces hacia la asimetría ambiental a nivel fisiológico y genético. New Phytol, 217(3): 1357-1369. https://doi.org/10.1111/nph.14887
  14. Wang, Y., Deng, R., Yanga, L., & Bain, C.D. (2019). Fabricación de monocapas de partículas poliméricas uniformes mediante impresión por inyección de emulsiones monodispersas producidas por microfluídica. Lab on a Chip, 19(18), 3077-3085. https://doi.org/10.1039/C9LC00588A
  15. Wang, H., Enders, A., Preuss, J. A., Bahnemann, J., Heisterkamp, A., & Torres-Mapa, M. L. (2021). Dispositivo microfluídico lab-on-a-chip impreso en 3D para manipulación óptica de haz dual basada en fibra. Scientific Reports, 11(1), 14584. https://doi.org/10.1038/s41598-021-93205-9
  16. Zecong, F., Ding, Y., Zhang, Z., Wang, F., Wang, Z., Wange, H., & Pan, T. (2020). Medidor digital microfluídico en chip. Lab on a Chip, 20(4), 722-733. https://doi.org/10.1039/C9LC00989B
  17. Zhuang, Y., Cheng, S., Kovalchuk, N.M., Simmons, M.J., Matar, O.K., Guo, Y., & Arcucci, R. (2022). Asimilación latente en conjunto con modelo sustituto de aprendizaje profundo: aplicación a la interacción de gotas en un dispositivo microfluídico. Lab on a Chip, 22(17), 3187-3202. https://doi.org/10.1039/D2LC00303A