UMP3 UltraMicroPump

  • SYS-MICRO4-1
  • SYS-MICRO4

UMP3-1

System

Preise gelten nur in den USA, Kanada und Puerto Rico.

Mit dem digitalen Controller kann die UltraMicroPump III wiederholbar bis zu 25 nL injizieren. Spritzen können extern befüllt und dann in die Pumpe eingesetzt oder direkt an der Pumpe befüllt werden.

Kompatibel mit allen gängigen kommerziell erhältlichen Mikroliter-Glasspritzen wie: WPI's NanoFil™, Hamilton, SGE und ILS Spritzen.

Für die beste gasdichte Erfahrung ohne Totvolumen, schauen Sie sich das NanoFil™ Spritzen- und Nadelsystem von WPI an. Erfahren Sie, warum unser Spritzensystem ein Game-Changer für die kontrollierte Probenzielung ist— ein Design der Extraklasse.

ZUBEHÖR

Einzelheiten

Merkmale

  • Vielseitige UMP3-Mikrospritzenpumpen-Injektionseinheit, die Mikrospritzen zur Abgabe von Mikroliter- und Nanolitervolumina verwendet
  • Spritzen lassen sich einfach einsetzen: Der Spritzenzylinder wird einfach in die Klemmen eingerastet.
  • Eine Gewindewelle bewegt den Spritzenkolben und ermöglicht eine gleichmäßige und präzise Bewegung.

Premium-Garantie verfügbar

Klicken Sie hier, um das aktuelle Datenblatt anzuzeigen.

Optionen

Bestellcode Beschreibung
UMP3 Nur ein einzelner UMP3-Pumpenkopf, ohne Controller
UMP3-1 Eine einzelne UMP3-Pumpe mit Controller
UMP3-2 Zwei UMP3-Pumpen mit Controller
UMP3-3 Drei UMP3-Pumpen mit Controller
UMP3-4 Vier UMP3-Pumpen mit Controller
SYS-MICRO4 NUR 4-Kanal-Controller


HINWEIS: UMP3-Mikroinjektionsspritzenpumpe umfasst nur den Pumpenkopf. Informationen zum Controller finden Sie unter Micro4. 

Nanolitervolumina

Mit ihrem digitalen Controller kann die UltraMicroPump III pro schrittweiser Bewegung des Spritzenkolbens nur 600 Pikoliter dosieren (bei Verwendung einer 0,5-μL-Spritze). Spritzen können extern befüllt und anschließend in die Pumpe eingesetzt oder im montierten Zustand befüllt werden. Injizierte oder aufgezogene Flüssigkeiten verbleiben vollständig in der Mikrospritze, um ein geringes Totvolumen in der Mikropumpe zu gewährleisten.

Positionierung

Zur Positionierung kann die UltraMicroPump III an einem von mehreren WPI-Mikropositionierern befestigt werden, beispielsweise am M3301 (manuell), am DC3001 (motorisiert) oder an einem manuellen stereotaktischen Manipulator.

Intelligenter Controller

Eine zentrale Komponente des UMPIII-Mikroinjektionsspritzenpumpensystems ist der mikroprozessorbasierte Controller MICRO4, der eine intelligente und benutzerfreundliche Schnittstelle für bis zu vier Spritzenpumpen bietet. Die Betriebsparameter werden über das Membran-Tastenfeld und die LCD-Anzeige eingestellt. Über das Tastenfeld können Sie die folgenden Funktionen auswählen:

  • die Mikroliter-Spritzenpumpe auf den Infusions- oder Aufziehmodus einstellen
  • das zu infundierende oder aufzuziehende Volumen, die Förderrate und den Spritzentyp eingeben
  • das Starten und Stoppen jeder beliebigen Kombination von Spritzenpumpen synchronisieren

Benutzerparameter können im „nichtflüchtigen“ Speicher des Controllers gespeichert und beim Einschalten des Geräts sofort abgerufen werden. Ein optionaler Fußschalter kann an einen Anschluss an der Rückseite des Controllers angeschlossen werden, um den Start-/Stopp-Betrieb freihändig zu steuern.

Computersteuerung

Ein RS-232-Anschluss an der Rückseite des Controllers kann verwendet werden, um ihn für die Nutzung mit Computersteuerungsprogrammen an einen Computer anzuschließen.

Die 503207 Das Kit ist ideal für die Verwendung mit einer UMP3-Mikroinjektionsspritzenpumpe, wie unten dargestellt.

Das Kit 503207 ist ideal für die Verwendung mit einer UMP3

 

Die folgenden Abbildungen zeigen verschiedene Aufbauten für die Mikroinjektion. Beachten Sie, dass die Komponenten austauschbar sind. Zum Beispiel:

  • Die magnetische Basis M10 oder M9 kann verwendet werden.
  • Das PZMIV-Mikroskop kann anstelle des PZMIII verwendet werden.
  • M330l oder die KITE-Mikromanipulatoren können verwendet werden, und diese Mikromanipulatoren können auf beiden Seiten angebracht werden. (Beachten Sie jedoch: Wenn Sie im unten dargestellten Aufbau einen KITE auf der rechten Seite verwenden möchten, bestellen Sie einen KITE-R (rechte Ausführung); wenn Sie einen M3301 auf der linken Seite verwenden möchten, bestellen Sie einen M3301-L.)
  • Die Magnetbasen 5479 oder 5052 sind praktisch austauschbar.
  • Je nach Bedarf können ein oder zwei Nanoliter, ein oder zwei UMPIII-Systeme oder ein Nanoliter und ein UMPIII verwendet werden.

EIN NANOLITER/EIN UMP3-1

EIN NANOLITER/EIN UMP3-1

 

EIN UMP3-1

EIN UMP3-1

Ressourcen

Bedienungsanleitung für UMP3 mit MICRO4


Tabelle zur Berechnung des Spritzenvolumens - Verwenden Sie diese .XLS-Tabelle, um das Volumen Ihrer Spritze zu berechnen, wenn Sie einen UMP3, DMP, MMP oder PV820/PV830 verwenden.

Spezifikationen

Normalmodus

Gesamtanzahl der Schritte 20.000 (63 mm Verfahrweg)
Minimales Abgabevolumen 25 nL
Linearbewegung pro Schritt 3,175 μm
Gewicht 325 g (11,5 oz)
Durchmesser der Befestigungsstäbe 7,9 mm (0,31 Zoll)
Stromversorgungsanforderungen des Controllers 2 A, 12 V Gleichstrom
Abmessungen Ø32 mm x 190 mm (1,3 Zoll x 7,5 Zoll)

Mikroschrittmodus

Die Präzision ist um das Achtfache erhöht.

Literaturverzeichnis

Zhou, Z., Luther, N., Singh, R., Boockvar, J. A., Souweidane, M. M., & Greenfield, J. P. (2017). Glioblastomsphäroide erzeugen infiltrative Gliome im Hirnstamm von Ratten. Child’s Nervous System, 1–10. http://doi.org/10.1007/s00381-017-3344-y

Ye, H.-L., Li, D.-R., Yang, J.-S., Chen, D.-F., De Vos, S., Vuylsteke, M., … Yang, W.-J. (2017). Molekulare Charakterisierung und Funktionsanalysen eines diapausehormonrezeptorähnlichen Gens in parthenogenetischen Artemien. Peptides. http://doi.org/10.1016/j.peptides.2017.01.008

Wofford, K. L., Harris, J. P., Browne, K. D., Brown, D. P., Grovola, M. R., Mietus, C. J., … Cullen, D. K. (2017). Schnelle neuroinflammatorische Reaktion, lokalisiert auf verletzte Neuronen, nach diffuser traumatischer Hirnverletzung bei Schweinen. Experimental Neurology, 290, 85–94. http://doi.org/10.1016/j.expneurol.2017.01.004

Qi, Y., Purtell, L., Fu, M., Zhang, L., Zolotukhin, S., Campbell, L., & Herzog, H. (2017). Die spezifische Wiedereinführung von Snord116 in den Hypothalamus ansonsten Snord116-defizienter Mäuse erhöhte den Energieverbrauch. Journal of Neuroendocrinology. http://doi.org/10.1111/jne.12457

Mosberger, A. C., Miehlbradt, J. C., Bjelopoljak, N., Schneider, M. P., Wahl, A.-S., Ineichen, B. V., … Schwab, M. E. (2017). Axotomisierte kortikospinale Neuronen erhöhen die Innervation oberhalb der Läsion und bleiben nach bilateraler Pyramidotomie entscheidend für geschicktes Greifen. Cerebral Cortex, 137, 1716–1732. http://doi.org/10.1093/cercor/bhw405

Job, M. O., & Kuhar, M. J. (2017). CART-Peptid im Nucleus accumbens reguliert Psychostimulanzien: Korrelationen zwischen den Wirkungen von Psychostimulanzien und CART-Peptid. Neuroscience, 348, 135–142. http://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2017.02.012

Eleftheriadou, I., Dieringer, M., Poh, X. Y., Sanchez-Garrido, J., Gao, Y., Sgourou, A., … Mazarakis, N. D. (2017). Selektive Transduktion astrozytärer und neuronaler ZNS-Subpopulationen durch lentivirale Vektoren, pseudotypisiert mit der Hülle des Chikungunya-Virus. Biomaterials, 123, 1–14. http://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2017.01.023

Augestad, I. L., Nyman, A. K. G., Costa, A. I., Barnett, S. C., Sandvig, A., Håberg, A. K., & Sandvig, I. (2017). Auswirkungen von Kotransplantationen neuraler Stammzellen und Riechhüllenzellen auf den Gewebeumbau nach vorübergehender fokaler zerebraler Ischämie bei der erwachsenen Ratte. Neurochemical Research, 1–11. http://doi.org/10.1007/s11064-016-2098-3

Lin, P., Fang, Z., Liu, J., & Lee, J. H. (2016). Funktionelle optogenetische MRT. Journal of Visualized Experiments, (110), e53346–e53346. http://doi.org/10.3791/53346

Vacca, O., El Mathari, B., Darche, M., Sahel, J.-A., Rendon, A., & Dalkara, D. (2015). Verwendung von Adeno-assoziierten Viren als Werkzeug zur Untersuchung retinaler Barrieren bei Erkrankungen. Journal of Visualized Experiments, (98), e52451–e52451. http://doi.org/10.3791/52451

Lai, J., Legault, M.-A., Thomas, S., & Casanova, C. (2015). Gleichzeitige elektrophysiologische Aufzeichnung und Mikroinjektionen hemmender Wirkstoffe im Nagetiergehirn. Journal of Visualized Experiments, (101), e52271–e52271. http://doi.org/10.3791/52271

Robinson, S., & Adelman, J. S. (2015). Eine Methode zur Fernstilllegung neuronaler Aktivität bei Nagetieren während diskreter Lernphasen. Journal of Visualized Experiments, (100), e52859–e52859. http://doi.org/10.3791/52859

Platt, R. J., Chen, S., Zhou, Y., Yim, M. J., Swiech, L., Kempton, H. R., … Zhang, F. (2014). CRISPR-Cas9-Knock-in-Mäuse für Genom-Editing und Krebsmodellierung. Cell, 159(2), 440–55. http://doi.org/10.1016/j.cell.2014.09.014

Pierce, A. M., & Keating, A. K. (2014). Erstellung anatomisch akkurater und reproduzierbarer intrakranieller Xenotransplantate menschlicher Hirntumoren. Journal of Visualized Experiments, (91), e52017–e52017. http://doi.org/10.3791/52017

Paveliev, M., Kislin, M., Molotkov, D., Yuryev, M., Rauvala, H., & Khiroug, L. (2014). Akutes Schädel-Hirn-Trauma bei Mäusen, gefolgt von longitudinaler Zwei-Photonen-Bildgebung. Journal of Visualized Experiments : JoVE, (April), 1–8. http://doi.org/10.3791/51559

Nakamura, S., Baratta, M. V., & Cooper, D. C. (2013). Eine Methode zur hochpräzisen optogenetischen Steuerung einzelner Pyramidenneuronen <em>in vivo</em> Journal of Visualized Experiments, (79), e50291–e50291. http://doi.org/10.3791/50291

Inquimbert, P., Moll, M., Kohno, T., & Scholz, J. (2013). Stereotaktische Injektion eines viralen Vektors zur bedingten Genmanipulation im Rückenmark der Maus. Journal of Visualized Experiments, (73), e50313–e50313. http://doi.org/10.3791/50313

Hewing, N. J., Weskamp, G., Vermaat, J., Farage, E., Glomski, K., Swendeman, S., … Blobel, C. P. (2013). Eine intravitreale Injektion von TIMP3 oder dem EGFR-Inhibitor Erlotinib schützt Mäuse vor einer sauerstoffinduzierten Retinopathie. Investigative Ophthalmology & Visual Science, 54(1), 864–70. http://doi.org/10.1167/iovs.12-10954

Salt, A. N., Hartsock, J. J., Gill, R. M., Piu, F., & Plontke, S. K. (2012). Perilymph-Pharmakokinetik von Markern und Dexamethason, die am lateralen Bogengang verabreicht und entnommen wurden. Journal of the Association for Research in Otolaryngology, 13(6), 771–783. http://doi.org/10.1007/s10162-012-0347-y

Nickerson, J. M., Goodman, P., Chrenek, M. A., Bernal, C. J., Berglin, L., Redmond, T. M., & Boatright, J. H. (2012). Subretinale Verabreichung und Elektroporation in pigmentierten und nicht pigmentierten Augen erwachsener Mäuse. Methods in Molecular Biology (Clifton, N.J.), 884, 53–69. http://doi.org/10.1007/978-1-61779-848-1_4

Beier, K., & Cepko, C. (2012). Virales Tracing genetisch definierter neuronaler Schaltkreise. Journal of Visualized Experiments, (68), e4253–e4253. http://doi.org/10.3791/4253

Goel, M., Sienkiewicz, A. E., Picciani, R., Wang, J., Lee, R. K. & Bhattacharya, S. K. (2012). Cochlin, Regulation des Augeninnendrucks und Mechanosensorik. PloS One, 7(4), e34309. http://doi.org/10.1371/journal.pone.0034309

Abdelwahab, M. G., Sankar, T., Preul, M. C. & Scheck, A. C. (2011). Intrakranielle Implantation mit anschließender dreidimensionaler <em>In-vivo</em>-Biolumineszenzbildgebung muriner Gliome. Journal of Visualized Experiments, (57), e3403–e3403. http://doi.org/10.3791/3403

Lowery, R. L. & Majewska, A. K. (2010). Intrakranielle Injektion adeno-assoziierter viraler Vektoren. Journal of Visualized Experiments, (45), e2140–e2140. http://doi.org/10.3791/2140

Kinkel, M. D., Eames, S. C., Philipson, L. H. & Prince, V. E. (2010). Intraperitoneale Injektion bei erwachsenen Zebrafischen. Journal of Visualized Experiments : JoVE, (42), e2126. http://doi.org/10.3791/2126

Molotkov, D. A., Yukin, A. Y., Afzalov, R. A. & Khiroug, L. S. (2010). Gentransfer in das postnatale Rattenhirn durch nichtventrikuläre Plasmidinjektion und Elektroporation. Journal of Visualized Experiments, (43), e2244–e2244. http://doi.org/10.3791/2244

Marker, D. F., Tremblay, M.-E., Lu, S.-M., Majewska, A. K. & Gelbard, H. A. (2010). Eine Dünnschädelfenstertechnik für die chronische Zwei-Photonen-<em>In-vivo</em>-Bildgebung muriner Mikroglia in Modellen der Neuroinflammation. Journal of Visualized Experiments, (43), e2059–e2059. http://doi.org/10.3791/2059

Eames, S. C., Philipson, L. H., Prince, V. E. & Kinkel, M. D. (2010). Die Messung des Blutzuckers bei Zebrafischen zeigt die Dynamik der Glukosehomöostase. Zebrafish, 7(2), 205–13. http://doi.org/10.1089/zeb.2009.0640

Jasnow, A. M., Rainnie, D. G., Maguschak, K. A., Chhatwal, J. P. & Ressler, K. J. (2009). Konstruktion zelltypspezifischer Promotor-Lentiviren zur optischen Steuerung elektrophysiologischer Aufzeichnungen und zur gezielten Genübertragung (S. 199–213). http://doi.org/10.1007/978-1-59745-559-6_13

Christiana J. Johnson, Lennart Berglin, Micah A. Chrenek, T. M. Redmond, Jeffrey H. Boatright, J. M. N. (2008). Technischer Kurzbericht: Subretinale Injektion und Elektroporation in die Augen erwachsener Mäuse. Molecular Vission, 14, 2211–2226. Abgerufen unter http://www.molvis.org/molvis/v14/a259/

Takayama, K., Torashima, T., Horiuchi, H. & Hirai, H. (2008). Bevorzugte Transduktion von Purkinje-Zellen durch lentivirale Vektoren mit dem Promotor des murinen Stammzellvirus. Neuroscience Letters (Bd. 443).

Torashima, T., Yamada, N., Itoh, M., Yamamoto, A. & Hirai, H. (2006). Die Exposition lentiviraler Vektoren gegenüber einem subneutralen pH-Wert verschiebt den Tropismus von Purkinje-Zellen zu Bergmann-Gliazellen. European Journal of Neuroscience, 24(2), 371–380. http://doi.org/10.1111/j.1460-9568.2006.04927.x

Torashima, T., Okoyama, S., Nishizaki, T. & Hirai, H. (2006). In-vivo-Transduktion muriner zerebellärer Purkinje-Zellen durch lentivirale Vektoren HIV-abgeleiteten Ursprungs. Gehirnforschung, 1082(1), 11–22. http://doi.org/10.1016/j.brainres.2006.01.104

Dancause, N., Barbay, S., Frost, S. B., Plautz, E. J., Chen, D., Zoubina, E. V. … Nudo, R. J. (n. d.) (2005). Entwicklung/Plastizität/Reparatur: Umfassende kortikale Neuverschaltung nach einer Hirnverletzung. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.3256-05.2005

Cherezov, V., Peddi, A., Muthusubramaniam, L., Zheng, Y. F. & Caffrey, M. (2004). Ein Robotersystem zur Kristallisation von Membran- und löslichen Proteinen in lipidischen Mesophasen. Acta Crystallographica, Abschnitt D: Biologische Kristallographie, 60(10), 1795–1807. http://doi.org/10.1107/S0907444904019109

Bernd, A. S., Aihara, M., Lindsey, J. D. & Weinreb, R. N. (2004). Einfluss des Molekulargewichts auf die intrakamerale Bewegung von Dextran in das hintere Segment des Mäuseauges. Untersuchende Augenheilkunde und visuelle Wissenschaft, 45(2), 480. http://doi.org/10.1167/iovs.03-0462

Shawgo, R. S. (2004). In-vivo-Aktivierung und Biokompatibilität eines MEMS-Mikroreservoir-Geräts zur Arzneimittelabgabe. Abgerufen am 16. November 2016 von https://dspace.mit.edu/handle/1721.1/17678

Sturbaum, G. D., Reed, C., Hoover, P. J., Jost, B. H., Marshall, M. M. & Sterling, C. R. (2001). Spezies-spezifischer, verschachtelter PCR-Restriktionsfragmentlängenpolymorphismus-Nachweis einzelner Oozysten von Cryptosporidium parvum. ANGEWANDTE UND UMWELTMIKROBIOLOGIE, 67(6), 2665–2668. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11375178

Nelson, B. P., Grimsrud, T. E., Liles, M. R., Goodman, R. M. & Corn, R. M. (n. d.) (2001). Messungen der Oberflächenplasmonenresonanz-Bildgebung zur Adsorption der DNA- und RNA-Hybridisierung auf DNA-Mikroarrays. https://doi.org/10.1021/ac0010431

Verwandte Produkte

Verwandte Artikel

  • Safety Tips for Using Laboratory Syringes
    Sicherheitshinweise für die Verwendung von Laborspritzen

    Sicherheitshinweise für die Verwendung von Laborspritzen

    Spritzen haben aufgrund ihrer Fähigkeit, Flüssigkeiten genau zu messen und abzugeben, ein breites Anwendungsspektrum im Labor. Häufige Laboreinsätze umfassen das Übertragen präziser Flüssigkeitsvolumina von einem Behälter in einen anderen zum Verdünnen, Mischen, zur Reagenzienvorbereitung und Probenentnahme. Sie können für analytische Techniken wie Chromatographie (z. B. Hochleistungsflüssigkeitschromatographie (HPLC) oder Gaschromatographie) verwendet werden, Spektralphotometrie und Titration. Spritzen werden häufig für die präzise Dosierung und Abgabe von Reagenzien während chemischer Reaktionen und Syntheseprozesse oder in der Lebenswissenschaftsforschung zum Aspirieren von Medien, Hinzufügen von Wachstumsfaktoren oder Nährstoffen und Übertragen von Zellen verwendet. In der medizinischen und veterinärmedizinischen Forschung werden Spritzen für die Injektion oder Infusion von Medikamenten, Impfstoffen oder Kontrastmitteln in Tiermodelle oder Zellkulturen eingesetzt. Forscher können Laborspritzen verwenden, um Flüssigkeitsproben zu sammeln, insbesondere bei der Umweltüberwachung, Wasserqualitätsanalyse oder biologischen Probenentnahme. In mikrofluidischen Anwendungen und Lab-on-a-Chip-Systemen sind Spritzen ideal für die präzise Steuerung von Flüssigkeitsvolumen und Flussraten.

  • How Microfluidics is Changing Drug Development
    Wie Mikrofluidik die Arzneimittelentwicklung verändert

    Wie Mikrofluidik die Arzneimittelentwicklung verändert

    Mikrofluidik ist ein ständig wachsendes Fachgebiet, das die präzise Steuerung von extrem kleinen Flüssigkeitsvolumina umfasst, meist im Nanoliter- bis Mikroliterbereich. Dieses Forschungsfeld hat die Herangehensweisen in der wissenschaftlichen und industriellen Entdeckung erheblich verändert. Insbesondere hat der Einsatz mikrofluidikbasierter Methoden im Bereich der Arzneimittelentwicklung großes Potenzial gezeigt, den Übergang zu klinischen Studien zu beschleunigen, indem biologische Prozesse ex vivo untersucht werden können – unter Verwendung relevanterer menschlicher Gewebemodelle. Im Folgenden sind einige der Möglichkeiten aufgeführt, wie Mikrofluidik die Prozesse der Arzneimittelentwicklung verbessert.