UMP3 UltraMicroPump

Zum Produktinformationen springen
1 von 2

UMP3-1


System

Preise gelten nur in den USA, Kanada und Puerto Rico.

Mit dem digitalen Controller kann die UltraMicroPump III wiederholbar bis zu 25 nL injizieren. Spritzen können extern befüllt und dann in die Pumpe eingesetzt oder direkt an der Pumpe befüllt werden.

Kompatibel mit allen gängigen kommerziell erhältlichen Mikroliter-Glasspritzen wie: WPI's NanoFil™, Hamilton, SGE und ILS Spritzen.

Für die beste gasdichte Erfahrung ohne Totvolumen, schauen Sie sich das NanoFil™ Spritzen- und Nadelsystem von WPI an. Erfahren Sie, warum unser Spritzensystem ein Game-Changer für die kontrollierte Probenzielung ist— ein Design der Extraklasse.

ZUBEHÖR




Einzelheiten

Merkmale

  • Vielseitiger UMP3-Mikrospritzeninjektor, der Mikrospritzen zur Abgabe von Volumina im Mikro- und Nanoliterbereich verwendet
  • Die Spritzen lassen sich einfach einsetzen: Der Zylinder wird einfach in die Klemmen eingerastet
  • Die Gewindespindel bewegt den Spritzenkolben und ermöglicht eine gleichmäßige und präzise Bewegung

Premium-Garantie verfügbar

Klicken Sie hier, um das aktuelle Datenblatt anzuzeigen.

Optionen

Bestellcode Beschreibung
UMP3 Nur einzelner UMP3-Pumpenkopf, ohne Controller
UMP3-1 Eine UMP3-Pumpe mit Controller
UMP3-2 Zwei UMP3-Pumpen mit Controller
UMP3-3 Drei UMP3-Pumpen mit Controller
UMP3-4 Vier UMP3-Pumpen mit Controller
SYS-MICRO4 Nur 4-Kanal-Controller


HINWEIS: Die UMP3-Mikroinjektionsspritzenpumpe umfasst nur den Pumpenkopf. Informationen zum Controller finden Sie unter Micro4. 

Volumen im Nanoliterbereich

Mit ihrem digitalen Controller kann die UltraMicroPump III bei jedem schrittweisen Vorschub des Spritzenkolbens nur 600 Pikoliter abgeben (mit einer 0,5-μL-Spritze). Die Spritzen können extern befüllt und anschließend in die Pumpe eingesetzt oder im montierten Zustand in der Pumpe befüllt werden. Injizierte oder entnommene Flüssigkeiten bleiben vollständig in der Mikrospritze, um das Totvolumen in der Mikropumpe gering zu halten.

Positionierung

Zur Positionierung kann die UltraMicroPump III an einem der verschiedenen WPI-Mikromanipulatoren befestigt werden, etwa am M3301 (manuell), DC3001 (motorisiert) oder an einem manuellen stereotaktischen Manipulator.

Intelligenter Controller

Ein wesentlicher Bestandteil des UMPIII-Mikroinjektions-Spritzenpumpensystems ist der mikroprozessorbasierte Controller MICRO4, der eine „intelligente“ und benutzerfreundliche Schnittstelle für bis zu vier Spritzenpumpen bietet. Die Betriebsparameter werden über die Membrantastatur und das LCD-Display eingestellt. Über die Tastatur können Sie die folgenden Funktionen auswählen:

  • Die Mikroliter-Spritzenpumpe auf Infusions- oder Entnahmemodus einstellen
  • Das zu infundierende oder zu entnehmende Volumen, die Förderrate und den Spritzentyp eingeben
  • Starten und Stoppen beliebiger Kombinationen von Spritzenpumpen synchronisieren

Benutzerparameter können im „nichtflüchtigen“ Speicher des Controllers gespeichert und beim Einschalten des Geräts sofort abgerufen werden. Ein optionaler Fußschalter kann an einen Anschluss an der Rückseite des Controllers angeschlossen werden, um den Betrieb ohne Hände zum Starten und Stoppen zu ermöglichen.

Computersteuerung

Ein RS-232-Anschluss an der Rückseite des Controllers kann verwendet werden, um ihn zur Steuerung mit Computerprogrammen an einen Computer anzuschließen.

Das 503207 -Kit ist ideal für die Verwendung mit einer UMP3-Mikroinjektionsspritzenpumpe, wie unten gezeigt.

503207-Kit ist ideal für die Verwendung mit einer UMP3

 

Die folgenden Abbildungen zeigen verschiedene Anordnungen für die Mikroinjektion. Beachten Sie, dass die Teile austauschbar sind. Zum Beispiel:

  • Der Magnetfuß M10 oder M9 kann verwendet werden.
  • Anstelle des PZMIII kann ein PZMIV-Mikroskop verwendet werden.
  • Die Mikromanipulatoren M330l oder KITE können verwendet und auf beiden Seiten platziert werden. (Beachten Sie jedoch: Wenn Sie rechts in der unten gezeigten Anordnung einen KITE verwenden möchten, bestellen Sie einen KITE-R (rechte Ausführung). Wenn Sie links einen M3301 verwenden möchten, bestellen Sie einen M3301-L.)
  • Die Magnetfüße 5479 oder 5052 sind praktisch austauschbar.
  • Je nach Wunsch können ein oder zwei Nanoliter-, ein oder zwei UMPIII-Systeme oder ein Nanoliter- und ein UMPIII-System verwendet werden.

EIN NANOLITER/EIN UMP3-1

EIN NANOLITER/EIN UMP3-1

 

EIN UMP3-1

EIN UMP3-1

Ressourcen

UMP3 mit MICRO4 Bedienungsanleitung


Tabelle zur Berechnung des Spritzenvolumens - Verwenden Sie diese .XLS-Tabelle, um das Volumen Ihrer Spritze zu berechnen, wenn Sie ein UMP3-, DMP-, MMP- oder PV820/PV830-System verwenden.

Spezifikationen

Normalmodus

Gesamtzahl der Schritte 20.000 (63mm Verfahrweg)
Minimales Dosiervolumen 25nL
Linearbewegung pro Schritt 3.175μm
Gewicht 325g (11.5 oz.)
Durchmesser der Montagehalterungen 7.9mm (0.31 in.)
Stromversorgungsanforderungen des Controllers 2A, 12VDC
Abmessungen Ø32mm x 190mm (1.3 in. x 7.5 in.)

Mikroschrittmodus

Die Präzision wird um das Achtfache erhöht.

Literaturverzeichnis

Zhou, Z., Luther, N., Singh, R., Boockvar, J. A., Souweidane, M. M., & Greenfield, J. P. (2017). Glioblastomsphäroide bilden infiltrative Gliome im Hirnstamm von Ratten. Child’s Nervous System, 1–10. http://doi.org/10.1007/s00381-017-3344-y

Ye, H.-L., Li, D.-R., Yang, J.-S., Chen, D.-F., De Vos, S., Vuylsteke, M., … Yang, W.-J. (2017). Molekulare Charakterisierung und Funktionsanalysen eines diapausehormonrezeptorähnlichen Gens in parthenogenetischen Artemia. Peptides. http://doi.org/10.1016/j.peptides.2017.01.008

Wofford, K. L., Harris, J. P., Browne, K. D., Brown, D. P., Grovola, M. R., Mietus, C. J., … Cullen, D. K. (2017). Rasche, auf verletzte Neuronen beschränkte neuroinflammatorische Reaktion nach diffusem Schädel-Hirn-Trauma bei Schweinen. Experimental Neurology, 290, 85–94. http://doi.org/10.1016/j.expneurol.2017.01.004

Qi, Y., Purtell, L., Fu, M., Zhang, L., Zolotukhin, S., Campbell, L., & Herzog, H. (2017). Die hypothalamusspezifische Wiedereinführung von Snord116 in ansonsten Snord116-defiziente Mäuse erhöhte den Energieverbrauch. Journal of Neuroendocrinology. http://doi.org/10.1111/jne.12457

Mosberger, A. C., Miehlbradt, J. C., Bjelopoljak, N., Schneider, M. P., Wahl, A.-S., Ineichen, B. V., … Schwab, M. E. (2017). Axotomierte kortikospinale Neuronen erhöhen die Innervation oberhalb der Läsion und bleiben nach bilateraler Pyramidenbahn-Durchtrennung entscheidend für das geschickte Greifen. Cerebral Cortex, 137, 1716–1732. http://doi.org/10.1093/cercor/bhw405

Job, M. O., & Kuhar, M. J. (2017). CART-Peptid im Nucleus accumbens reguliert Psychostimulanzien: Korrelationen zwischen den Wirkungen von Psychostimulanzien und CART-Peptid. Neuroscience, 348, 135–142. http://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2017.02.012

Eleftheriadou, I., Dieringer, M., Poh, X. Y., Sanchez-Garrido, J., Gao, Y., Sgourou, A., … Mazarakis, N. D. (2017). Selektive Transduktion astrozytärer und neuronaler ZNS-Subpopulationen durch Lentivirenvektoren mit Pseudotyp des Chikungunya-Virus-Hüllproteins. Biomaterials, 123, 1–14. http://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2017.01.023

Augestad, I. L., Nyman, A. K. G., Costa, A. I., Barnett, S. C., Sandvig, A., Håberg, A. K., & Sandvig, I. (2017). Auswirkungen von Kotransplantaten aus neuralen Stammzellen und olfaktorischen Hüllzellen auf den Gewebeumbau nach vorübergehender fokaler zerebraler Ischämie bei der adulten Ratte. Neurochemical Research, 1–11. http://doi.org/10.1007/s11064-016-2098-3

Lin, P., Fang, Z., Liu, J., & Lee, J. H. (2016). Optogenetische funktionelle MRT. Journal of Visualized Experiments, (110), e53346–e53346. http://doi.org/10.3791/53346

Vacca, O., El Mathari, B., Darche, M., Sahel, J.-A., Rendon, A., & Dalkara, D. (2015). Verwendung des Adeno-assoziierten Virus als Werkzeug zur Untersuchung retinaler Barrieren bei Erkrankungen. Journal of Visualized Experiments, (98), e52451–e52451. http://doi.org/10.3791/52451

Lai, J., Legault, M.-A., Thomas, S., & Casanova, C. (2015). Gleichzeitige elektrophysiologische Aufzeichnung und Mikroinjektionen inhibitorischer Wirkstoffe im Gehirn von Nagetieren. Journal of Visualized Experiments, (101), e52271–e52271. http://doi.org/10.3791/52271

Robinson, S., & Adelman, J. S. (2015). Eine Methode zur Fernstilllegung neuronaler Aktivität bei Nagetieren während bestimmter Lernphasen. Journal of Visualized Experiments, (100), e52859–e52859. http://doi.org/10.3791/52859

Platt, R. J., Chen, S., Zhou, Y., Yim, M. J., Swiech, L., Kempton, H. R., … Zhang, F. (2014). CRISPR-Cas9-Knock-in-Mäuse für Genomeditierung und Krebsmodellierung. Cell, 159(2), 440–55. http://doi.org/10.1016/j.cell.2014.09.014

Pierce, A. M., & Keating, A. K. (2014). Erzeugung anatomisch präziser und reproduzierbarer intrakranieller Xenotransplantate menschlicher Hirntumoren. Journal of Visualized Experiments, (91), e52017–e52017. http://doi.org/10.3791/52017

Paveliev, M., Kislin, M., Molotkov, D., Yuryev, M., Rauvala, H., & Khiroug, L. (2014). Akutes Hirntrauma bei Mäusen mit anschließender longitudinaler Zwei-Photonen-Bildgebung. Journal of Visualized Experiments : JoVE, (April), 1–8. http://doi.org/10.3791/51559

Nakamura, S., Baratta, M. V., & Cooper, D. C. (2013). Eine Methode zur hochpräzisen optogenetischen Kontrolle einzelner Pyramidenneuronen <em>in vivo</em> Journal of Visualized Experiments, (79), e50291–e50291. http://doi.org/10.3791/50291

Inquimbert, P., Moll, M., Kohno, T., & Scholz, J. (2013). Stereotaktische Injektion eines viralen Vektors zur bedingten Genmanipulation im Rückenmark der Maus. Journal of Visualized Experiments, (73), e50313–e50313. http://doi.org/10.3791/50313

Hewing, N. J., Weskamp, G., Vermaat, J., Farage, E., Glomski, K., Swendeman, S., … Blobel, C. P. (2013). Intravitrealinjektion von TIMP3 oder dem EGFR-Inhibitor Erlotinib bietet Schutz vor sauerstoffinduzierter Retinopathie bei Mäusen. Investigative Ophthalmology & Visual Science, 54(1), 864–70. http://doi.org/10.1167/iovs.12-10954

Salt, A. N., Hartsock, J. J., Gill, R. M., Piu, F., & Plontke, S. K. (2012). Perilymphatische Pharmakokinetik von Markern und Dexamethason, die am lateralen Bogengang verabreicht und dort entnommen werden. Journal of the Association for Research in Otolaryngology, 13(6), 771–783. http://doi.org/10.1007/s10162-012-0347-y

Nickerson, J. M., Goodman, P., Chrenek, M. A., Bernal, C. J., Berglin, L., Redmond, T. M., & Boatright, J. H. (2012). Subretinale Verabreichung und Elektroporation in pigmentierten und nicht pigmentierten Augen ausgewachsener Mäuse. Methods in Molecular Biology (Clifton, N.J.), 884, 53–69. http://doi.org/10.1007/978-1-61779-848-1_4

Beier, K., & Cepko, C. (2012). Virales Tracing genetisch definierter neuronaler Schaltkreise. Journal of Visualized Experiments, (68), e4253–e4253. http://doi.org/10.3791/4253

Goel, M., Sienkiewicz, A. E., Picciani, R., Wang, J., Lee, R. K., & Bhattacharya, S. K. (2012). Cochlin, Regulation des Augeninnendrucks und Mechanosensorik. PloS One, 7(4), e34309. http://doi.org/10.1371/journal.pone.0034309

Abdelwahab, M. G., Sankar, T., Preul, M. C., & Scheck, A. C. (2011). Intrakranielle Implantation mit anschließender 3D-<em>In-vivo</em>-Biolumineszenzbildgebung muriner Gliome. Journal of Visualized Experiments, (57), e3403–e3403. http://doi.org/10.3791/3403

Lowery, R. L., & Majewska, A. K. (2010). Intrakranielle Injektion adeno-assoziierter viraler Vektoren. Journal of Visualized Experiments, (45), e2140–e2140. http://doi.org/10.3791/2140

Kinkel, M. D., Eames, S. C., Philipson, L. H., & Prince, V. E. (2010). Intraperitoneale Injektion bei ausgewachsenen Zebrafischen. Journal of Visualized Experiments : JoVE, (42), e2126. http://doi.org/10.3791/2126

Molotkov, D. A., Yukin, A. Y., Afzalov, R. A., & Khiroug, L. S. (2010). Gentransfer in das postnatale Rattenhirn durch nichtventrikuläre Plasmidinjektion und Elektroporation. Journal of Visualized Experiments, (43), e2244–e2244. http://doi.org/10.3791/2244

Marker, D. F., Tremblay, M.-E., Lu, S.-M., Majewska, A. K., & Gelbard, H. A. (2010). Eine Dünnschädel-Fenstertechnik für die chronische Zweiphotonen-<em>In-vivo</em>-Bildgebung muriner Mikroglia in Modellen der Neuroinflammation. Journal of Visualized Experiments, (43), e2059–e2059. http://doi.org/10.3791/2059

Eames, S. C., Philipson, L. H., Prince, V. E., & Kinkel, M. D. (2010). Blutzuckermessung bei Zebrafischen zeigt die Dynamik der Glukosehomöostase. Zebrafisch, 7(2), 205–13. http://doi.org/10.1089/zeb.2009.0640

Jasnow, A. M., Rainnie, D. G., Maguschak, K. A., Chhatwal, J. P., & Ressler, K. J. (2009). Konstruktion zelltypspezifischer Promotor-Lentiviren zur optischen Steuerung elektrophysiologischer Ableitungen und zur gezielten Genabgabe (S. 199–213). http://doi.org/10.1007/978-1-59745-559-6_13

Christiana J. Johnson, Lennart Berglin, Micah A. Chrenek, T.M. Redmond, Jeffrey H. Boatright, J. M. N. (2008). Technische Kurzmitteilung: Subretinale Injektion und Elektroporation in die Augen erwachsener Mäuse. Molecular Vission, 14, 2211–2226. Abgerufen von http://www.molvis.org/molvis/v14/a259/

Takayama, K., Torashima, T., Horiuchi, H., & Hirai, H. (2008). Bevorzugte Transduktion von Purkinje-Zellen durch lentivirale Vektoren mit dem murinen Stammzellvirus-Promotor. Neuroscience Letters (Bd. 443).

Torashima, T., Yamada, N., Itoh, M., Yamamoto, A., & Hirai, H. (2006). Die Exposition lentiviraler Vektoren gegenüber einem leicht sauren pH-Wert verschiebt den Tropismus von Purkinje-Zellen zu Bergmann-Glia. European Journal of Neuroscience, 24(2), 371–380. http://doi.org/10.1111/j.1460-9568.2006.04927.x

Torashima, T., Okoyama, S., Nishizaki, T., & Hirai, H. (2006). In-vivo-Transduktion muriner Kleinhirn-Purkinje-Zellen durch HIV-abgeleitete lentivirale Vektoren. Brain Research, 1082(1), 11–22. http://doi.org/10.1016/j.brainres.2006.01.104

Dancause, N., Barbay, S., Frost, S. B., Plautz, E. J., Chen, D., Zoubina, E. V, … Nudo, R. J. (n.d.) (2005). Entwicklung/Plastizität/Reparatur: Umfangreiche kortikale Neuverdrahtung nach einer Hirnverletzung. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.3256-05.2005

Cherezov, V., Peddi, A., Muthusubramaniam, L., Zheng, Y. F., & Caffrey, M. (2004). Ein Robotersystem zur Kristallisation von Membran- und löslichen Proteinen in lipidischen Mesophasen. Acta Crystallographica Section D Biological Crystallography, 60(10), 1795–1807. http://doi.org/10.1107/S0907444904019109

Bernd, A. S., Aihara, M., Lindsey, J. D., & Weinreb, R. N. (2004). Einfluss des Molekulargewichts auf die Bewegung von Dextran in der Vorderkammer zum hinteren Augenabschnitt der Maus. Investigative Opthalmology & Visual Science, 45(2), 480. http://doi.org/10.1167/iovs.03-0462

Shawgo, R. S. (2004). In-vivo-Aktivierung und Biokompatibilität einer MEMS-Mikroreservoir-Arzneimittelabgabevorrichtung. Abgerufen am 16. November 2016 von https://dspace.mit.edu/handle/1721.1/17678

Sturbaum, G. D., Reed, C., Hoover, P. J., Jost, B. H., Marshall, M. M., & Sterling, C. R. (2001). Spezies-spezifischer Nachweis einzelner Cryptosporidium-parvum-Oozysten mittels verschachtelter PCR-Restriktionsfragmentlängenpolymorphismus-Analyse. ANGEWANDTE UND UMWELTMİKROBIOLOGIE, 67(6), 2665–2668. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11375178

Nelson, B. P., Grimsrud, T. E., Liles, M. R., Goodman, R. M., & Corn, R. M. (n.d.) (2001). Messungen der Oberflächenplasmonen-Resonanz-Bildgebung zur Adsorption der DNA- und RNA-Hybridisierung auf DNA-Mikroarrays. https://doi.org/10.1021/ac0010431


Verwandte Produkte

1 von 9