UMP3 UltraMicroPump

  • SYS-MICRO4-1
  • SYS-MICRO4

UMP3-1

System

Preise gelten nur in den USA, Kanada und Puerto Rico.

Mit dem digitalen Controller kann die UltraMicroPump III wiederholbar bis zu 25 nL injizieren. Spritzen können extern befüllt und dann in die Pumpe eingesetzt oder direkt an der Pumpe befüllt werden.

Kompatibel mit allen gängigen kommerziell erhältlichen Mikroliter-Glasspritzen wie: WPI's NanoFil™, Hamilton, SGE und ILS Spritzen.

Für die beste gasdichte Erfahrung ohne Totvolumen, schauen Sie sich das NanoFil™ Spritzen- und Nadelsystem von WPI an. Erfahren Sie, warum unser Spritzensystem ein Game-Changer für die kontrollierte Probenzielung ist— ein Design der Extraklasse.

ZUBEHÖR

Einzelheiten

Eigenschaften

  • Vielseitiger UMP3-Mikrospritzenpumpen-Injektor, der Mikrospritzen zur Abgabe von Mikroliter- und Nanoliter-Volumina verwendet
  • Spritzen lassen sich einfach installieren, indem das Fass in die Klemmen eingeklickt wird
  • Gewindespindel treibt den Spritzenkolben an und ermöglicht eine sanfte und präzise Bewegung

Premium-Garantie verfügbar

Klicken Sie hier, um das aktuelle Datenblatt anzusehen.

Optionen

Bestellcode Beschreibung
UMP3 Nur ein einzelner UMP3-Pumpenkopf, kein Controller
UMP3-1 Eine einzelne UMP3-Pumpe mit Controller
UMP3-2 Zwei UMP3-Pumpen mit Controller
UMP3-3 Drei UMP3-Pumpen mit Controller
UMP3-4 Vier UMP3-Pumpen mit Controller
SYS-MICRO4 Nur 4-Kanal-Controller


HINWEIS: UMP3 Mikroinjektionsspritzenpumpe enthält nur den Pumpenkopf. Informationen zum Controller finden Sie unter Micro4. 

Nanoliter-Volumina

Mit ihrem digitalen Controller kann die UltraMicroPump III bereits 600 Pikoliter pro Inkrement des Spritzenkolbens abgeben (bei Verwendung einer 0,5 μL-Spritze). Spritzen können extern befüllt und dann in die Pumpe eingesetzt oder während des Einbaus in die Pumpe befüllt werden. Die injizierten oder entnommenen Flüssigkeiten verbleiben vollständig in der Mikrospritze, um ein geringes Totvolumen in der Mikropumpe zu gewährleisten.

Positionierung

Zur Positionierung kann die UltraMicroPump III an verschiedene WPI-Mikropositionierer wie den M3301 (manuell), DC3001 (motorisiert) oder jeden manuellen stereotaktischen Manipulator angeschlossen werden.

Intelligenter Controller

Ein integraler Bestandteil des UMPIII-Mikroinjektionsspritzenpumpensystems ist ein mikroprozessorbasierter Controller, MICRO4, der eine „intelligente“ und benutzerfreundliche Schnittstelle für bis zu vier Spritzenpumpen bietet. Die Betriebsparameter werden über die Membrantastatur und das LCD-Display eingestellt. Über die Tastatur können Sie folgende Funktionen auswählen:

  • die Mikroliterspritzenpumpe auf Infusions- oder Entnahmemodus einstellen
  • das zu infundierende oder zu entziehende Volumen, die Förderrate und den Spritzentyp eingeben
  • Starten und Stoppen jeder Kombination von Spritzenpumpen synchronisieren

Benutzerparameter können im „nichtflüchtigen“ Speicher des Controllers gespeichert werden, um sie beim Einschalten des Geräts sofort abzurufen. Ein optionaler Fußschalter kann an einen Anschluss auf der Rückseite des Controllers angeschlossen werden, um eine „freihändige“ Start/Stopp-Bedienung zu ermöglichen.

Computersteuerung

Ein RS-232-Anschluss auf der Rückseite des Controllers kann verwendet werden, um ihn mit einem Computer für die Nutzung von Computersteuerungsprogrammen zu verbinden.

Das 503207 Das Kit ist ideal für die Arbeit mit einer UMP3-Mikroinjektionsspritzenpumpe, wie unten gezeigt.

Das 503207-Kit ist ideal für die Arbeit mit einem UMP3.

 

Die folgenden Bilder zeigen verschiedene Aufbauten für die Mikroinjektion. Beachten Sie, dass die Teile austauschbar sind. Zum Beispiel:

  • Die magnetische Basis M10 oder M9 kann verwendet werden.
  • Das PZMIV-Mikroskop kann anstelle des PZMIII verwendet werden.
  • M330l oder die KITE-Mikromanipulatoren können verwendet werden, und diese Mikromanipulatoren können auf beiden Seiten platziert werden. (Beachten Sie jedoch, wenn Sie einen KITE auf der rechten Seite der untenstehenden Einrichtung verwenden möchten, bestellen Sie einen KITE-R (rechts), oder wenn Sie einen M3301 auf der linken Seite möchten, bestellen Sie einen M3301-L.)
  • 5479 oder 5052 Magnetbasen sind praktisch austauschbar.
  • Ein oder zwei Nanoliter, ein oder zwei UMPIII-Systeme oder ein Nanoliter und ein UMPIII können nach Wunsch verwendet werden.

EIN NANOLITER/EIN UMP3-1

EIN NANOLITER/EIN UMP3-1

 

EIN UMP3-1

EIN UMP3-1

Ressourcen

UMP3 mit MICRO4 Bedienungsanleitung


Berechnungstabelle für Spritzenvolumen - Verwenden Sie diese .XLS-Tabelle, um das Volumen Ihrer Spritze zu berechnen, wenn Sie einen UMP3, DMP, MMP oder PV820/PV830 verwenden.

Spezifikationen

Normalbetrieb

Gesamtanzahl der Schritte 20.000 (63mm Hub)
Minimales Abgabervolumen 25nL
Linearbewegung pro Schritt 3,175μm
Gewicht 325g (11,5 oz.)
Durchmesser der Montageachsen 7,9mm (0,31 in.)
Stromversorgung des Controllers 2A, 12VDC
Abmessungen Ø32mm x 190mm (1,3 in. x 7,5 in.)

Mikroschrittbetrieb

Die Präzision ist um das Achtfache erhöht.

Literaturverzeichnis

Zhou, Z., Luther, N., Singh, R., Boockvar, J. A., Souweidane, M. M., & Greenfield, J. P. (2017). Glioblastom-Sphäroide erzeugen infiltrative Gliome im Hirnstamm von Ratten. Child’s Nervous System, 1–10. http://doi.org/10.1007/s00381-017-3344-y

Ye, H.-L., Li, D.-R., Yang, J.-S., Chen, D.-F., De Vos, S., Vuylsteke, M., … Yang, W.-J. (2017). Molekulare Charakterisierung und funktionelle Analysen eines diapausehormonrezeptorähnlichen Gens bei parthenogenetischer Artemia. Peptides. http://doi.org/10.1016/j.peptides.2017.01.008

Wofford, K. L., Harris, J. P., Browne, K. D., Brown, D. P., Grovola, M. R., Mietus, C. J., … Cullen, D. K. (2017). Schnelle neuroinflammatorische Reaktion, lokalisiert an verletzten Neuronen nach diffuser traumatischer Hirnverletzung bei Schweinen. Experimental Neurology, 290, 85–94. http://doi.org/10.1016/j.expneurol.2017.01.004

Qi, Y., Purtell, L., Fu, M., Zhang, L., Zolotukhin, S., Campbell, L., & Herzog, H. (2017). Hypothalamusspezifische Wiedereinführung von Snord116 in ansonsten Snord116-defiziente Mäuse erhöhte den Energieverbrauch. Journal of Neuroendocrinology. http://doi.org/10.1111/jne.12457

Mosberger, A. C., Miehlbradt, J. C., Bjelopoljak, N., Schneider, M. P., Wahl, A.-S., Ineichen, B. V., … Schwab, M. E. (2017). Axotomierte kortikospinale Neuronen erhöhen die supra-lesionale Innervation und bleiben nach bilateraler Pyramidotomie entscheidend für das gezielte Greifen. Cerebral Cortex, 137, 1716–1732. http://doi.org/10.1093/cercor/bhw405

Job, M. O., & Kuhar, M. J. (2017). CART-Peptid im Nucleus accumbens reguliert Psychostimulanzien: Korrelationen zwischen den Effekten von Psychostimulanzien und CART-Peptid. Neuroscience, 348, 135–142. http://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2017.02.012

Eleftheriadou, I., Dieringer, M., Poh, X. Y., Sanchez-Garrido, J., Gao, Y., Sgourou, A., … Mazarakis, N. D. (2017). Selektive Transduktion astrozytärer und neuronaler CNS-Subpopulationen durch lentivirale Vektoren, die mit dem Chikungunya-Virus-Envelope pseudotypisiert sind. Biomaterials, 123, 1–14. http://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2017.01.023

Augestad, I. L., Nyman, A. K. G., Costa, A. I., Barnett, S. C., Sandvig, A., Håberg, A. K., & Sandvig, I. (2017). Auswirkungen von Co-Transplantationen neuronaler Stammzellen und olfaktorischer Umschlagzellen auf die Gewebsumbildung nach transienter fokaler zerebraler Ischämie bei erwachsenen Ratten. Neurochemical Research, 1–11. http://doi.org/10.1007/s11064-016-2098-3

Lin, P., Fang, Z., Liu, J., & Lee, J. H. (2016). Optogenetische funktionelle MRT. Journal of Visualized Experiments, (110), e53346–e53346. http://doi.org/10.3791/53346

Vacca, O., El Mathari, B., Darche, M., Sahel, J.-A., Rendon, A., & Dalkara, D. (2015). Verwendung von Adeno-assoziiertem Virus als Werkzeug zur Untersuchung retinaler Barrieren bei Erkrankungen. Journal of Visualized Experiments, (98), e52451–e52451. http://doi.org/10.3791/52451

Lai, J., Legault, M.-A., Thomas, S., & Casanova, C. (2015). Gleichzeitige elektrophysiologische Aufzeichnung und Mikroinjektionen von hemmenden Substanzen im Nagetiergehirn. Journal of Visualized Experiments, (101), e52271–e52271. http://doi.org/10.3791/52271

Robinson, S., & Adelman, J. S. (2015). Eine Methode zum Fernabschalten neuronaler Aktivität bei Nagetieren während diskreter Lernphasen. Journal of Visualized Experiments, (100), e52859–e52859. http://doi.org/10.3791/52859

Platt, R. J., Chen, S., Zhou, Y., Yim, M. J., Swiech, L., Kempton, H. R., … Zhang, F. (2014). CRISPR-Cas9 Knockin-Mäuse für Genom-Editing und Krebsmodellierung. Cell, 159(2), 440–55. http://doi.org/10.1016/j.cell.2014.09.014

Pierce, A. M., & Keating, A. K. (2014). Erstellung anatomisch genauer und reproduzierbarer intrakranieller Xenotransplantate menschlicher Hirntumoren. Journal of Visualized Experiments, (91), e52017–e52017. http://doi.org/10.3791/52017

Paveliev, M., Kislin, M., Molotkov, D., Yuryev, M., Rauvala, H., & Khiroug, L. (2014). Akutes Hirntrauma bei Mäusen gefolgt von longitudinaler Zwei-Photonen-Bildgebung. Journal of Visualized Experiments : JoVE, (April), 1–8. http://doi.org/10.3791/51559

Nakamura, S., Baratta, M. V., & Cooper, D. C. (2013). Eine Methode zur hochpräzisen optogenetischen Steuerung einzelner Pyramidenneuronen in vivo. Journal of Visualized Experiments, (79), e50291–e50291. http://doi.org/10.3791/50291

Inquimbert, P., Moll, M., Kohno, T., & Scholz, J. (2013). Stereotaktische Injektion eines viralen Vektors zur konditionalen Genmanipulation im Rückenmark der Maus. Journal of Visualized Experiments, (73), e50313–e50313. http://doi.org/10.3791/50313

Hewing, N. J., Weskamp, G., Vermaat, J., Farage, E., Glomski, K., Swendeman, S., … Blobel, C. P. (2013). Intravitreal-Injektion von TIMP3 oder des EGFR-Inhibitors Erlotinib bietet Schutz vor sauerstoffinduzierter Retinopathie bei Mäusen. Investigative Ophthalmology & Visual Science, 54(1), 864–70. http://doi.org/10.1167/iovs.12-10954

Salt, A. N., Hartsock, J. J., Gill, R. M., Piu, F., & Plontke, S. K. (2012). Perilymph-Pharmakokinetik von Markern und Dexamethason, die am lateralen Bogengang appliziert und entnommen wurden. Journal of the Association for Research in Otolaryngology, 13(6), 771–783. http://doi.org/10.1007/s10162-012-0347-y

Nickerson, J. M., Goodman, P., Chrenek, M. A., Bernal, C. J., Berglin, L., Redmond, T. M., & Boatright, J. H. (2012). Subretinale Verabreichung und Elektroporation in pigmentierten und nicht pigmentierten erwachsenen Mausaugen. Methods in Molecular Biology (Clifton, N.J.), 884, 53–69. http://doi.org/10.1007/978-1-61779-848-1_4

Beier, K., & Cepko, C. (2012). Virales Tracing genetisch definierter neuronaler Schaltkreise. Journal of Visualized Experiments, (68), e4253–e4253. http://doi.org/10.3791/4253

Goel, M., Sienkiewicz, A. E., Picciani, R., Wang, J., Lee, R. K., & Bhattacharya, S. K. (2012). Cochlin, intraokularer Druckregulation und Mechanosensorik. PloS One, 7(4), e34309. http://doi.org/10.1371/journal.pone.0034309

Abdelwahab, M. G., Sankar, T., Preul, M. C., & Scheck, A. C. (2011). Intrakranielle Implantation mit anschließender 3D In Vivo-Biolumineszenz-Bildgebung muriner Gliome. Journal of Visualized Experiments, (57), e3403–e3403. http://doi.org/10.3791/3403

Lowery, R. L., & Majewska, A. K. (2010). Intrakranielle Injektion von Adeno-assoziierten viralen Vektoren. Journal of Visualized Experiments, (45), e2140–e2140. http://doi.org/10.3791/2140

Kinkel, M. D., Eames, S. C., Philipson, L. H., & Prince, V. E. (2010). Intraperitoneale Injektion bei erwachsenen Zebrafischen. Journal of Visualized Experiments : JoVE, (42), e2126. http://doi.org/10.3791/2126

Molotkov, D. A., Yukin, A. Y., Afzalov, R. A., & Khiroug, L. S. (2010). Genübertragung in das postnatale Rattenhirn durch nicht-ventrikuläre Plasmidinjektion und Elektroporation. Journal of Visualized Experiments, (43), e2244–e2244. http://doi.org/10.3791/2244

Marker, D. F., Tremblay, M.-E., Lu, S.-M., Majewska, A. K., & Gelbard, H. A. (2010). Eine Dünnschädel-Fenster-Technik für chronische Zwei-Photon In vivo-Bildgebung von murinen Mikrogliazellen in Modellen der Neuroinflammation. Journal of Visualized Experiments, (43), e2059–e2059. http://doi.org/10.3791/2059

Eames, S. C., Philipson, L. H., Prince, V. E., & Kinkel, M. D. (2010). Blutzuckermessung bei Zebrafischen zeigt Dynamik der Glukosehomöostase. Zebrafish, 7(2), 205–13. http://doi.org/10.1089/zeb.2009.0640

Jasnow, A. M., Rainnie, D. G., Maguschak, K. A., Chhatwal, J. P., & Ressler, K. J. (2009). Konstruktion von zelltypspezifischen Promotor-Lentiviren zur optischen Steuerung elektrophysiologischer Aufnahmen und für gezielte Genübertragung (S. 199–213). http://doi.org/10.1007/978-1-59745-559-6_13

Christiana J. Johnson, Lennart Berglin, Micah A. Chrenek, T.M. Redmond, Jeffrey H. Boatright, J. M. N. (2008). Technischer Bericht: Subretinale Injektion und Elektroporation in erwachsene Mausaugen. Molecular Vision, 14, 2211–2226. Abgerufen von http://www.molvis.org/molvis/v14/a259/

Takayama, K., Torashima, T., Horiuchi, H., & Hirai, H. (2008). Purkinje-Zell-bevorzugte Transduktion durch lentivirale Vektoren mit dem murinen Stammzellvirus-Promotor. Neuroscience Letters (Bd. 443).

Torashima, T., Yamada, N., Itoh, M., Yamamoto, A., & Hirai, H. (2006). Exposition von lentiviralen Vektoren gegenüber subneutralem pH verschiebt den Tropismus von Purkinje-Zellen zu Bergmann-Glia. European Journal of Neuroscience, 24(2), 371–380. http://doi.org/10.1111/j.1460-9568.2006.04927.x

Torashima, T., Okoyama, S., Nishizaki, T., & Hirai, H. (2006). In-vivo-Transduktion von murinen Kleinhirn-Purkinje-Zellen durch HIV-abgeleitete lentivirale Vektoren. Brain Research, 1082(1), 11–22. http://doi.org/10.1016/j.brainres.2006.01.104

Dancause, N., Barbay, S., Frost, S. B., Plautz, E. J., Chen, D., Zoubina, E. V, … Nudo, R. J. (o. J.) (2005). Entwicklung/Plastizität/Reparatur Umfangreiche kortikale Neuverdrahtung nach Hirnverletzung. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.3256-05.2005

Cherezov, V., Peddi, A., Muthusubramaniam, L., Zheng, Y. F., & Caffrey, M. (2004). Ein robotisches System zur Kristallisation von Membran- und löslichen Proteinen in lipiden Mesophasen. Acta Crystallographica Section D Biological Crystallography, 60(10), 1795–1807. http://doi.org/10.1107/S0907444904019109

Bernd, A. S., Aihara, M., Lindsey, J. D., & Weinreb, R. N. (2004). Einfluss des Molekulargewichts auf die intrakamerale Dextran-Bewegung zum hinteren Segment des Mausauges. Investigative Opthalmology & Visual Science, 45(2), 480. http://doi.org/10.1167/iovs.03-0462

Shawgo, R. S. (2004). In-vivo-Aktivierung und Biokompatibilität eines MEMS-Mikroreservoir-Arzneimittelabgabegeräts. Abgerufen am 16. November 2016 von https://dspace.mit.edu/handle/1721.1/17678

Sturbaum, G. D., Reed, C., Hoover, P. J., Jost, B. H., Marshall, M. M., & Sterling, C. R. (2001). Art-spezifischer, verschachtelter PCR-Restriktionsfragmentlängenpolymorphismus-Nachweis einzelner Cryptosporidium parvum-Oozysten. APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY, 67(6), 2665–2668. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11375178

Nelson, B. P., Grimsrud, T. E., Liles, M. R., Goodman, R. M., & Corn, R. M. (o. J.) (2001). Messungen der Oberflächenplasmonresonanzabbildung von DNA- und RNA-Hybridisierungsadsorption auf DNA-Microarrays. https://doi.org/10.1021/ac0010431

Verwandte Produkte

Verwandte Artikel

  • Safety Tips for Using Laboratory Syringes
    Sicherheitshinweise für die Verwendung von Laborspritzen

    Sicherheitshinweise für die Verwendung von Laborspritzen

    Spritzen haben aufgrund ihrer Fähigkeit, Flüssigkeiten genau zu messen und abzugeben, ein breites Anwendungsspektrum im Labor. Häufige Laboreinsätze umfassen das Übertragen präziser Flüssigkeitsvolumina von einem Behälter in einen anderen zum Verdünnen, Mischen, zur Reagenzienvorbereitung und Probenentnahme. Sie können für analytische Techniken wie Chromatographie (z. B. Hochleistungsflüssigkeitschromatographie (HPLC) oder Gaschromatographie) verwendet werden, Spektralphotometrie und Titration. Spritzen werden häufig für die präzise Dosierung und Abgabe von Reagenzien während chemischer Reaktionen und Syntheseprozesse oder in der Lebenswissenschaftsforschung zum Aspirieren von Medien, Hinzufügen von Wachstumsfaktoren oder Nährstoffen und Übertragen von Zellen verwendet. In der medizinischen und veterinärmedizinischen Forschung werden Spritzen für die Injektion oder Infusion von Medikamenten, Impfstoffen oder Kontrastmitteln in Tiermodelle oder Zellkulturen eingesetzt. Forscher können Laborspritzen verwenden, um Flüssigkeitsproben zu sammeln, insbesondere bei der Umweltüberwachung, Wasserqualitätsanalyse oder biologischen Probenentnahme. In mikrofluidischen Anwendungen und Lab-on-a-Chip-Systemen sind Spritzen ideal für die präzise Steuerung von Flüssigkeitsvolumen und Flussraten.

  • How Microfluidics is Changing Drug Development
    Wie Mikrofluidik die Arzneimittelentwicklung verändert

    Wie Mikrofluidik die Arzneimittelentwicklung verändert

    Mikrofluidik ist ein ständig wachsendes Fachgebiet, das die präzise Steuerung von extrem kleinen Flüssigkeitsvolumina umfasst, meist im Nanoliter- bis Mikroliterbereich. Dieses Forschungsfeld hat die Herangehensweisen in der wissenschaftlichen und industriellen Entdeckung erheblich verändert. Insbesondere hat der Einsatz mikrofluidikbasierter Methoden im Bereich der Arzneimittelentwicklung großes Potenzial gezeigt, den Übergang zu klinischen Studien zu beschleunigen, indem biologische Prozesse ex vivo untersucht werden können – unter Verwendung relevanterer menschlicher Gewebemodelle. Im Folgenden sind einige der Möglichkeiten aufgeführt, wie Mikrofluidik die Prozesse der Arzneimittelentwicklung verbessert.