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MICRO-EPORE
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Der neue WPI MICRO-ePORE™ Punkt-Zellpenetrator ist ein einfaches und vielseitiges System, das für die effiziente Zell-Mikroinjektion einer Vielzahl von Verbindungen und Biomolekülen in Eizellen und Säugetierembryonen im Präimplantationstadium verwendet werden kann. Die zum Patent angemeldete Flutter-Elektroden-Technologie ermöglicht eine kleine, saubere, präzise Membranpenetration ohne Reißen oder Beschädigung der Membran, wenn Sie an der Mikroinjektion transgener Tiere oder Zellmanipulation arbeiten.
Platindraht-Elektrodenhalter (separat erhältlich) sind verfügbar!
HINWEIS: Die Mikroinjektionspumpe und anderes Zubehör, die im Systembild gezeigt werden, sind separat erhältlich.
Um mehr über unsere Garantieoptionen zu erfahren, klicken Sie hier.
*Hinweis: Bitte versuchen Sie nicht, einen Femtojet-Griff zu nehmen und den ePORE-Plastikkopf einzuschrauben, die Gewinde sind unterschiedlich und beschädigen das Bauteil.
Der neue WPI MICRO-ePORE™ präzise Zellpenetrator ist ein einfaches und vielseitiges System, das für die effiziente Zellmikroinjektion einer Vielzahl von Verbindungen und Biomolekülen in Oozyten und Embryonen im Präimplantationsstadium von Säugetieren verwendet werden kann. Die zum Patent angemeldete Flutter-Elektrodentechnologie unterstützt eine kleine, saubere, präzise Membrandurchdringung ohne Reißen oder Beschädigung der Membran, wenn Sie an der Mikroinjektion transgener Tiere oder Zellmanipulation arbeiten.

Elektroporation verwendet einen Stromimpuls in einem Medium, um Poren in den Zellmembranen der Zellen in der Elektroporationsküvette zu öffnen, um die Zellmembran zu durchdringen und genetisches Material einzuführen.
WPI's MICRO-ePORE™ Pinpoint Cell Penetrator bietet mehrere Vorteile gegenüber der traditionellen Elektroporation für die Zellmikroinjektion.
Elektrophysiologische Systeme mit negativer Kapazität werden routinemäßig für die Zellmikroinjektion verschiedener Biomoleküle in Säugetier-Oozyten sowie in Embryonen im prä- und postimplantativen Stadium in Entwicklungsbiologiestudien verwendet. Das System, das nicht mehr verfügbar ist, der intrazelluläre Verstärker WPI Cyto721, ermöglicht es der Nadel, die Zellmembran mit minimalem physischem Trauma zu durchdringen. Neuerdings wurde diese Technik auf den genetischen Transfer bei der Mikroinjektion von CRISPR/Cas9-Reagenzien in Maus-Embryonen im Zwei-Zell-Stadium angewandt. Die Autoren zeigten eine signifikante Steigerung der Knock-in-Effizienz und eine hohe Lebensfähigkeit der Embryonen mit ihrer Methode.
Der neue MICRO-ePORE™ Pinpoint Cell Penetrator bietet eine einzigartige Lösung für die Zellmikroinjektion mit hoher Embryonen-Lebensfähigkeit. Das Instrument erzeugt ein oszillierendes elektrisches Feld an einer lokalisierten Stelle der Membran direkt unterhalb der Injektionsstelle. Der MICRO-ePORE™ erzeugt kleine, reversible Löcher in der Plasmamembran, durch die Material mikroinjiziert wird. Der Forscher bestimmt Amplitude und Frequenz des Signals, die am besten zur Anwendung passen. Im Gegensatz zur herkömmlichen Zellmikroinjektion reißt bei der gezielten Mikroinjektion mit dem MICRO-ePORE™ die Membran nicht, was eine überlegene Embryonen-Lebensfähigkeit ermöglicht. Die Technik ist einfach und elegant. Der neue Prototyp des MICRO-ePORE™ Cell Penetrators wurde erfolgreich an Maus- und Primaten-Embryonen im präimplantativen Stadium sowie bei der Gen-Silencing in Zebrafisch-Schwänzen getestet.
MICRO-ePORE™ wurde für eine Reihe von Anwendungen entwickelt, einschließlich der Erzeugung von CRISPR/Cas9-vermittelten Knock-in-Mäusen mit großen Einfügungen durch Mikroinjektion in Embryonen im Zwei-Zell-Stadium mit hoher Lebensfähigkeit.7 Der MICRO-ePORE™ hat eine präzise Mikroinjektion von Morpholino-Oligomeren (Anti-Sense „Knockdown“) in Zebrafisch-Schwänzen ermöglicht.


Dies zeigt die Referenzelektrode im Sondenstil mit einem Eppendorf-Injektor, von Fangtao Chi von UCLA/MCDB und Utpal Banerjee.

Der neue WPI MICRO-ePORE™ Pinpoint Cell Penetrator ist ein einfaches und vielseitiges System, das für die effiziente Mikroinjektion einer Vielzahl von Verbindungen und Biomolekülen in Oozyten und Embryonen im präimplantativen Stadium von Säugetieren verwendet werden kann. Die zum Patent angemeldete Flutter Electrode Technology unterstützt eine kleine, saubere und präzise Membranpenetration ohne Reißen oder Beschädigung der Membran. Hier richtet Gabe das System ein und verbindet alle Komponenten.
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MICRO-ePORE™ Version 2 Rev. 2 (Für Geräte mit Seriennummern ab 182508) |
MICRO-ePORE™ Version 1 Rev. 1 (Für Geräte mit Seriennummern bis 182508) |
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Bedienungsanleitung v2 Schnellstartanleitung v2 |
Bedienungsanleitung v1 Schnellstartanleitung v1 |
Ist eine Reduktion der Embryolyse mit dem MICRO-ePORE möglich W.Gardiner, J.Kenyon, T.Bell, S.Atkins
Auspacken Ihres MICRO-ePORE™ Systems
Anschluss Ihres MICRO-ePORE™ Systems
Anschluss der MICRO-ePORE™ Elektrodenhalter
(1) MICRO-ePORE™ Steuergerät
(1) Elektrodenhalter mit Silberdraht. Ihre Wahl:
• WPI #300863 WPI MICRO-ePORE Halter
• WPI #300864 Femtojet® MICRO-ePORE Halter
• WPI #300865 Narishige MICRO-ePORE™
(1) Schnittstellenkabel für Mikroelektrodenhalter
(1) Brunnen-Referenzelektrode
(1) Sonde-Referenzelektroden-Baugruppe
(1) 13142 Fußschalter
(1) Netzkabel
(1) 99789 MICRO-ePORE™ Erdungskabel
(1) Bedienungsanleitung
| Technische Daten | Beschreibung |
| Spannungsparameter | 0–3.0 V, in 1-mV-Schritten |
| Frequenzparameter | 50–3000 Hz, in 1-Hz-Schritten |
| Maximaler Alarm-Schwellenwert für Pipettenwiderstand | 500 MΩ |
| Abmessungen | 19.7 × 12.7 × 7.6 cm (7.75 × 5 × 3 in.) |
| Gewicht | 0.9 kg (2 lb.) |
| Zertifizierungen | CE, RoHS |
Bałakier H, Pedersen RA. Zuweisung von Zellen zu innerer Zellmasse und Trophektoderm-Linien in präimplantations-Maus-Embryonen. Dev Biol. 1982 Apr; 90(2):352-62. PMID: 7075865 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/7075865)
Lawson KA, Pedersen RA. Zellschicksal, morphogenetische Bewegung und Populationskinetik des embryonalen Endoderms zur Zeit der Keimblattsbildung bei der Maus. Development. 1987 Nov;101(3):627-52. PMID:3502998 (https://www-ncbi-nlm-nih-gov.myaccess.library.utoronto.ca/pubmed/3502998)
Wianny F, Zernicka-Goetz M. Spezifische Beeinträchtigung der Genfunktion durch doppelsträngige RNA in der frühen Mausentwicklung. Nat Cell Biol. 2000 Feb; 2(2):70-5. PMID:10655585 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10655585)
Chazaud C, Yamanaka Y, Pawson T, Rossant J. Frühe Linienaufteilung zwischen Epiblast und primitiver Endoderm im Maus-Blastozysten durch den Grb2-MAPK-Weg. Dev Cell. 2006 May; 10(5):615- 24. PMID:16678776 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16678776)
Swann K, Campbell K, Yu Y, Saunders C, Lai FA. Verwendung von Luciferase-Chimären zur Überwachung der PLCzeta-Expression in Maus-Eiern. Methods Mol Biol. 2009; 518:17-29. doi: 10.1007/978-1-59745-202-1_2. PMID:19085135 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19085135)
Posfai E, Petropoulos S, de Barros FRO, Schell JP, Jurisica I, Sandberg R, Lanner F, Rossant J. Positions- und Hippo-Signalabhängige Plastizität während der Linienaufteilung im frühen Maus-Embryo. Elife. 2017 Feb 22; 6. pii: e22906. doi: 10.7554/eLife.22906. PMID: 28226240 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/28226240)
Gu B, Posfai E, Rossant J. Effiziente Erzeugung gezielter großer Insertionen durch Mikroinjektion in Maus-Embryonen im Zwei-Zell-Stadium. Nature Biotechnology 2018 Aug; 36(7):632-637. doi: 10.1038/nbt.4166. Epub 2018 Jun 11. PMID: 29889212 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/29889212)

Schwarz beschichtete chirurgische Instrumente sind nicht nur optisch ansprechender als die aus Edelstahl, sondern bieten auch mehrere weitere Vorteile, die im Folgenden erläutert werden.
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