Instrumente für die Zebrafischforschung – Eizellen, Embryonen, Larven und Erwachsene

World Precision Instruments (WPI) bietet eine breite Palette von Forschungsinstrumenten für die Zebrafischforschung (Danio Rerio) an, von der genetischen Veränderung des Organismus bis hin zur Überwachung der physiologischen Auswirkungen dieser Veränderung. Ob Forscher Mikroinjektionen durchführen oder kardiovaskuläre Messungen vornehmen – die Produktlinie von WPI umfasst Instrumente für die Forschung an Oozyten, Embryonen, Larven und erwachsenen Zebrafischen.

Verbesserte Effizienz der Mikroinjektion für genetische Modifikation

Das anpassbare Zebrafisch-Mikroinjektions-Werkzeugset enthält von Forschern bevorzugte Komponenten:

• MICRO-ePUMP Druckinjektor mit integriertem MICRO-ePORE™ Zellpenetrator zur Erleichterung von Mikroinjektionen
• SU-P1000 Mikropipettenzieher
• PZMTIII-MI/PZMIII-MI Trinokular- oder Binokularmikroskop auf beleuchteter Basis mit schwenkbarem Spiegel
• PRO-300HDS High-Definition-Kamera- und Überwachungssystem
• Zubehör

Der NANOLITER2020 Injektor und die UMP3T-1 UltraMicroPump mit SMARTouch-Touchscreen-Controller sind alternative Injektoren. WPI unterstützt Wissenschaftler seit über 50 Jahren mit einfachen und kostengünstigen Werkzeugen für genetische Modifikationen. WPI bietet eine breite Palette von Instrumenten, die für die Mikroinjektion von Zebrafischen in Oozyten,¹ Embryonen,² Larven³ und Erwachsenen⁴ erforderlich sind, um genetische Modifikationen zu ermöglichen.

Direkte kardiovaskuläre Messungen bei Embryonen, Larven und erwachsenen Fischen

Embryonale Zebrafische sind ein beliebtes Modell für die kardiovaskuläre Forschung geworden.⁵ WPI ist ein Pionier bei der Entwicklung von Instrumenten für die Elektrophysiologie und wird in Tausenden von peer-reviewed Publikationen zitiert. WPI hat die CardioPhys™ Z-Serie eingeführt, die die Messung kardiovaskulärer Funktionen bei Zebrafisch-Embryonen erleichtert.

WPI CardioPhys™ Z EKG (Prototyp)

Das neuartige WPI CardioPhys™ Z EKG ermöglicht die direkte Messung des EKGs bei Zebrafisch-Embryonen. WPI hat seine bestehende Elektrophysiologie-Produktlinie optimiert, um den Anforderungen von Zebrafisch-Forschern gerecht zu werden.

• Gewährleistet sehr geringe Störgeräusche bei der Aufzeichnung der elektrischen Aktivität des embryonalen Zebrafischherzens
• Hohe Resistenz gegen elektrische Umgebungsstörungen
• Benutzerfreundliche Software
• Ermöglicht Forschern die Identifikation diagnostischer Indizes der kardiovaskulären Physiologie wie veränderten Rhythmus, Signalleitungsstörungen, Schäden durch kardiale Ereignisse wie Ischämie und Infarkt usw.

Nachweis von freien Radikalen & anderen Molekülen für Krankheitsmodelle

Dies ist ein typischer Laboraufbau eines WPI-Freie-Radikale-Analysators mit Datenerfassungssystem.

Der WPI Freie-Radikale-Analysator, TBR4100, ermöglicht die Echtzeit- und hochsensitive Erkennung freier Radikale wie NO, H₂O₂, H₂S, CO, O₂ – wichtige physiologische Indikatoren in der intrazellulären Zellkommunikation und Homöostase. Freie Radikale, die über das normale Entgiftungsniveau hinausgehen, können oxidativen Stress (OS) verursachen.⁷ OS beeinflusst die Wundheilung und das Altern und verursacht verschiedene Krankheiten wie Diabetes mellitus, neurodegenerative Erkrankungen (Morbus Parkinson, Alzheimer-Krankheit und Multiple Sklerose), kardiovaskuläre Erkrankungen (Arteriosklerose und Bluthochdruck), Atemwegserkrankungen (Asthma), Kataraktentwicklung, rheumatoide Arthritis und verschiedene Krebsarten (Darm-, Prostata-, Brust-, Lungen- und Blasenkrebs).⁸

Die Ausgabe zeigt die Rohdaten für einen ISO-NOPF200 (NO-Sensor). In dieser Anwendung wird nur einer der vier Kanäle verwendet.

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Literaturverzeichnis

1. Eric S. Clelland, Qian Tan, Ari Balofsky, Rosie Lacivita, Chun Peng. Hemmung der vorzeitigen Oozytenreifung: Eine Rolle für das Knochenmorphogenetische Protein 15 in Zebrafisch-Ovarialfollikeln. Endocrinology, Band 148, Ausgabe 11, 1. November 2007, Seiten 5451–5458,https://doi.org/10.1210/en.2007-0674
2. Rosen JN, Sweeney MF, Mably JD. Mikroinjektion von Zebrafisch-Embryonen zur Analyse der Genfunktion. J Vis Exp. 2009 Mar 9;(25). pii: 1115. doi: 10.3791/1115.
3. Cianciolo Cosentino, C., Roman, B. L., Drummond, I. A., Hukriede, N. A. Intravenöse Mikroinjektionen von Zebrafisch-Larven zur Untersuchung akuter Nierenschäden. J. Vis. Exp. (42), e2079, doi:10.3791/2079 (2010).
4. Kinkel, M. D., Eames, S. C., Philipson, L. H., Prince, V. E. Intraperitoneale Injektion bei erwachsenen Zebrafischen. J. Vis. Exp. (42), e2126, doi:10.3791/2126 (2010).
5. Staudt, D. & Stainier, D. Aufdeckung der molekularen und zellulären Mechanismen der Herzentwicklung mit dem Zebrafisch. Annu Rev Genet 46, 397–418 (2012).
6. Hu N1, Yost HJ, Clark EB. Herzmorphologie und Blutdruck beim erwachsenen Zebrafisch. Anat Rec. 2001 Sep 1;264(1):1-12.
7. Katerji M1, Filippova M1, Duerksen-Hughes P1. Ansätze und Methoden zur Messung von oxidativem Stress in klinischen Proben: Forschungsanwendungen im Krebsbereich. Oxid Med Cell Longev. 2019 Mar 12;2019:1279250. doi: 10.1155/2019/1279250. eCollection 2019.
8. Alugoju Phaniendra, Dinesh Babu Jestadi und Latha Periyasamy. Freie Radikale: Eigenschaften, Quellen, Ziele und ihre Bedeutung bei verschiedenen Krankheiten. Indian J Clin Biochem. 2015 Jan; 30(1): 11–26.