定電流刺激絶縁装置

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SYS-A365R

バッテリータイプ

価格はアメリカ合衆国、カナダ、プエルトリコのみ有効です。

従来のロジックレベルコマンドで作動するモデル A365 は、任意のパルスジェネレーター、刺激装置、またはコンピューター出力で制御でき、生体試料に対して正味電荷ゼロの自動双極パルスを行います。

アクセサリー

詳細

生体試料の正味電荷ゼロの自動双極性パルス

特徴

  • 定電流
  • 単極および双極刺激モード
  • 内蔵の非コンプライアンスアラーム
  • 入力は光アイソレート
  • 標準TTLトリガー
  • 直流テストモード
  • 9 Vアルカリまたは充電式バッテリー駆動

オプション

部品番号 説明 バッテリータイプ チャージャー付き
A365RC A362バッテリーチャージャー付きA365R 充電式バッテリー はい
SYS-A365R 高電圧アイソレータ、双極性 充電式バッテリー いいえ
SYS-A365D 高電圧アイソレータ、双極性 アルカリ電池 _

 

利点

  • コンプライアンス電圧は100V以上
  • 双極性モードはTTL入力から交互の正負パルスを自動生成
  • テストモードで性能検証が簡単に
  • 光アイソレーションにより試料の安全性が向上し、ノイズ感受性が低減されます

用途

  • 電気生理学
  • 脳スライス刺激
  • 生体内脳および中枢神経刺激

従来のロジックレベルコマンドで作動、モデル A365 任意のパルスジェネレーター、刺激装置、またはコンピューター出力でゲート制御可能で、生体試料の正味電荷ゼロの自動双極性パルスを実現します。

二重トーンの可聴アラーム

開放電極回路が検出された場合やシステムコンプライアンスに達した場合にトーンが鳴ります。信号が入力に加えられた場合には2つ目のオプショントーンが鳴ります。バッテリー充電を確認するためのテストスイッチも装備されています。

100V以上で最大10 mAの電流供給

刺激電流は3桁のコントロールノブと3位置のレンジスイッチで設定されます。出力電流は制御設定に対して1%以内の追従性があります。出力電流は負荷に依存せず、負荷を通して所望の電流を流すのに十分な電圧が自動的に発生し、コンプライアンス制限の範囲内です。モデル A360LA 3つの範囲で最大10 mAの電流を、100 V以上のコンプライアンスで生成します。

双極性出力極性

出力の極性は前面パネルのプッシュスイッチで決まります。双極性電流はコマンド波形によって切り替えられ、交互のパルスを正または負に設定します。

電源

この A365RC 刺激アイソレータには、A365R 刺激アイソレータとA362 バッテリーチャージャーの両方が含まれています。充電式のA365R はニッケル水素電池スタックを搭載しています。A362 バッテリーチャージャーはA365Rに必要です。 

 注意：人体使用を目的としていません。

リソース

A365取扱説明書

 

仕様

出力波形 直流または電流パルス
出力電流範囲 0.1、1.0、および10 mA
現在の振幅誤差 フルスケールの0.5%、最大
現在の分解能 フルスケールの0.1%、典型値
出力負荷電圧変動（コンプライアンス） 100 V
外部コマンド閾値 3 mA時5 V、最小10 V、最大
トリガー閾値 0.5 mA時2.0 V
出力極性 可逆、手動スイッチまたは自動
電流上昇時間および遅延 6 μs、典型値（1 KΩ負荷）
電流下降時間および遅延 10 μs、典型値（1 KΩ負荷）
接地への出力抵抗 1012 Ω
オプトカプラー 2500 V、定格最小耐圧
電源：モデルA365D（乾電池） 16個のアルカリ9 V電池付属
電源：モデルA365R（充電式） 16個の充電式NiMH 9 V電池付属
寸法 8.5 x 3.5 x 5 インチ（22 x 9 x 12 cm）
発送重量 4ポンド（1.8 kg）

参考文献

Yavich, L., Tanila, H., Vepsäläinen, S., & Jäkälä, P. (n.d.). 疾患の神経生物学 α-シヌクレインのシナプス前ドーパミン動員における役割。 https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.2559-04.2004

Iremonger, K. J., Anderson, T. R., Hu, B., & Kiss, Z. H. T. (n.d.). 皮質の持続的活性化を防ぐ細胞メカニズム：皮質下高周波刺激時。 https://doi.org/10.1152/jn.00105.2006

Rowland, N. C., & Jaeger, D. (n.d.). 深部小脳核ニューロンの触覚刺激への応答は複数経路の再帰的活性化による。 https://doi.org/10.1152/jn.01100.2007

D ’ambrosio, R., Gordon, D. S., Winn, H. R., ’ambrosio, D., Raimondo, D. S., Gordon, H., & Richard, W. (n.d.). ラット海馬における細胞外K ϩ 調節におけるKIRチャネルとNa ϩ /K ϩ ポンプの異なる役割。 https://doi.org/10.1152/jn.00240.2001

Huda, R., Mccrimmon, D. R., & Martina, M. (n.d.). グリアのグルタミントランスポーターのpH調節は孤束核におけるシナプス伝達を制御する。

Chen, Y., Beffert, U., Ertunc, M., Tang, T.-S., Kavalali, E. T., Bezprozvanny, I., & Herz, J. (n.d.). 発達／可塑性／修復 リリンは皮質ニューロンのNMDA受容体活性を調節する。 https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.1951-05.2005

D ’ambrosio, R., Wenzel, J., Schwartzkroin, P. A., Mckhann Ii, G. M., & Janigro, D. (n.d.). 海馬アストロサイトの機能的専門化と地理的分離。

D ’ambrosio, R., Maris, D. O., Grady, M. S., Winn, H. R., & Janigro, D. (n.d.). 外傷後の海馬グリアにおけるK ؉ ホメオスタシス障害と変化した電気生理学的特性。

Ji, H., & Shepard, P. D. (n.d.). 行動/システム/認知 側坐核刺激はGABA A受容体を介した機構によりラットの中脳ドーパミンニューロンを抑制する。https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.0958-07.2007

Lee, E., Hong, J., Park, Y.-G., Chae, S., Kim, Y., & Kim, D. (2015). 左脳皮質活動はストレスが社会行動に及ぼす影響を調節する。サイエンティフィック・リポーツ, 5, 13342. https://doi.org/10.1038/srep13342

Gindrat, A.-D., Quairiaux, C., Britz, J., Brunet, D., Lanz, F., Michel, C. M., & Rouiller, E. M. (2015). マカクザルの全頭皮EEGによる体性感覚誘発電位のマッピング。脳の構造と機能, 220(4), 2121–2142. https://doi.org/10.1007/s00429-014-0776-y

Avila, I., & Lin, S.-C. (2014). 基底前脳の動機的顕著性信号はより速く正確な意思決定速度と連動する。PLoS生物学, 12(3), e1001811. https://doi.org/10.1371/journal.pbio.1001811

Nguyen, D. P., & Lin, S.-C. (2014). 基底前脳により駆動される前頭皮質の事象関連電位。ELife, 3, e02148. 取得元 https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC3974155

Herrera, C., Directores, R., Panetsos, F., Carlos, P., & Trueba, A. (2014). 博士論文：切断された末梢神経の人工刺激がラットの感覚脱神経化体性感覚経路に及ぼす影響。

Younce, J. R., Albaugh, D. L., & Shih, Y.-Y. I. (2014). 齧歯類における同時fMRIを用いた深部脳刺激。視覚化実験ジャーナル, (84), e51271–e51271. https://doi.org/10.3791/51271

Oulad Ben Taib, N., & Manto, M. (2013). 小脳の硬膜外直流刺激列は皮質運動興奮性を調整する。神経可塑性, 2013(10), 1–12. https://doi.org/10.1155/2013/613197

Syvänen, S., Russmann, V., Verbeek, J., Eriksson, J., Labots, M., Zellinger, C., … Potschka, H. (2013). 慢性齧歯類てんかんモデルにおける[11C]キニジンおよび[11C]ラニキダールPETイメージング：てんかんおよび薬物反応性の影響。核医学と生物学, 40(6), 764–775. https://doi.org/10.1016/j.nucmedbio.2013.05.008

Schroder, E. A., Lefta, M., Zhang, X., Bartos, D. C., Feng, H.-Z., Zhao, Y., … Delisle, B. P. (2013). 心筋細胞の分子時計、Scn5aの調節、および不整脈感受性。American Journal of Physiology. Cell Physiology, 304(10), C954-65. https://doi.org/10.1152/ajpcell.00383.2012

Schmuckermair, C., Gaburro, S., Sah, A., Landgraf, R., Sartori, S. B., & Singewald, N. (2013). 高不安およびうつ様行動モデルマウスにおける深部脳刺激の行動および神経生物学的効果。Neuropsychopharmacology : Official Publication of the American College of Neuropsychopharmacology, 38(7), 1234–1244. https://doi.org/10.1038/npp.2013.21

Dalby-Brown, W., Jessen, C., Hougaard, C., Jensen, M. L., Jacobsen, T. A., Nielsen, K. S., … Jørgensen, S. (2013). Kv7チャネルの新規高効力ポジティブモジュレーターの特性評価。European Journal of Pharmacology, 709(1–3), 52–63. https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2013.03.039

Licko, T., Seeger, N., Zellinger, C., Russmann, V., Matagne, A., & Potschka, H. (2013). てんかん重積状態後のラコサミド治療は、ラットの電気的てんかん重積モデルにおける神経細胞の損失と海馬の神経新生の変化を軽減する。Epilepsia, 54(7), 1176–1185. https://doi.org/10.1111/epi.12196

Atherton, J. F., Menard, A., Urbain, N., & Bevan, M. D. (2013). 外側淡蒼球-視床下核シナプス伝達の短期抑圧と視床下核活動のパターン形成への影響。The Journal of Neuroscience : The Official Journal of the Society for Neuroscience, 33(17), 7130–7144. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.3576-12.2013

Saha, D., Leong, K., Katta, N., & Raman, B. (2013). バッタ（<em>Schistocerca Americana</em>）の嗅覚回路における神経活動を特徴づける多ユニット記録法。Journal of Visualized Experiments, (71), e50139–e50139. https://doi.org/10.3791/50139

Huda, R., McCrimmon, D. R., & Martina, M. (2013). 孤束核におけるグリア性グルタミン酸トランスポーターのpH調節はシナプス伝達を制御する。Journal of Neurophysiology, 110(2), 368–377. https://doi.org/10.1152/jn.01074.2012

Sonner, P. M., & Ladle, D. R. (2013). マウス脊髄におけるIa固有受容性求心性接続のGABA作動性シナプス前抑制の早期出生後発達。Journal of Neurophysiology, 109(8), 2118–2128. https://doi.org/10.1152/jn.00783.2012

Zhu, Z., Sierra, A., Burnett, C. M.-L. L., Chen, B., Subbotina, E., Koganti, S. R. K., … Zingman, L. V. (2013). 筋細胞膜のATP感受性カリウムチャネルは、低強度の負荷下で骨格筋機能を調節する。The Journal of General Physiology, 143(1), 119–134. https://doi.org/10.1085/jgp.201311063

Brenowitz, S. D., & Regehr, W. G. (2012). デキストラン結合カルシウム指示薬の生体内注射による投射線維のシナプス前イメージング。Cold Spring Harbor Protocols, 2012(4), 465–471. https://doi.org/10.1101/pdb.prot068551

Li, W., Janardhan, A. H., Fedorov, V. V, Sha, Q., Schuessler, R. B., & Efimov, I. R. (2011). 低エネルギー多段階心房除細動療法は、単一ショックよりも少ないエネルギーで心房細動を停止させる。Circulation. Arrhythmia and Electrophysiology, 4(6), 917–925. https://doi.org/10.1161/CIRCEP.111.965830

Mathis, D. M., Furman, J. L., & Norris, C. M. (2011). 老化およびアミロイド病理におけるシナプス変化の研究のためのラットおよび遺伝子改変マウスからの急性海馬スライスの調製。Journal of Visualized Experiments, (49), e2330–e2330. https://doi.org/10.3791/2330

Manto, M. U., Hampe, C. S., Rogemond, V., & Honnorat, J. (2011). 硬直性歩行者症候群および小脳性運動失調におけるグルタミン酸脱炭酸酵素抗体のそれぞれの意義。Orphanet Journal of Rare Diseases, 6(1), 3. https://doi.org/10.1186/1750-1172-6-3

Kim, J., Woo, J., Park, Y.-G., Chae, S., Jo, S., Choi, J. W., … Kim, D. (2011). 視床のT型Ca2+チャネルは、前頭前皮質の低酸素様損傷による前頭葉機能障害を媒介する。神経科学ジャーナル：神経科学学会の公式ジャーナル, 31(11), 4063–4073. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.4493-10.2011

Seo, J. H., Jang, I. K., Kim, H., Yang, M. S., Lee, J. E., Kim, H. E., … Cho, S.-R. (2011). 静脈内移植された間葉系幹細胞による早期免疫調節は、脊髄損傷ラットの機能回復を促進する。セルメディシン, 2(2), 55–67. https://doi.org/10.3727/215517911X582788

Pelkonen, A., Hiltunen, M., Kiianmaa, K., & Yavich, L. (2010). 刺激されたドーパミン放出とアルファシヌクレイン発現は、エタノール嗜好性の異なるラットの核アクセンバスコアで区別される。神経化学ジャーナル, 114(4), 1168–1176. https://doi.org/10.1111/j.1471-4159.2010.06844.x

Foust, A. J., Schei, J. L., Rojas, M. J., & Rector, D. M. (2008). 光学的神経記録のためのin vitroおよびin vivoのノイズ解析。生体医用オプティクスジャーナル, 13(4), 044038. https://doi.org/10.1117/1.2952295

Schei, J. L., McCluskey, M. D., Foust, A. J., Yao, X.-C., & Rector, D. M. (2008). 高時間分解能近赤外ビデオ顕微鏡と偏光を用いた活動電位伝播のイメージング。ニューロイメージ, 40(3), 1034–1043. https://doi.org/10.1016/j.neuroimage.2007.12.055

Foust, A. J., & Rector, D. M. (2007). 神経の膨張と脱分極を光学的に分離する。神経科学, 145(3), 887–899. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2006.12.068

Ji, H., & Shepard, P. D. (2007). 側坐核刺激はGABA(A)受容体を介したメカニズムによりラットの中脳ドーパミンニューロンを抑制する。神経科学ジャーナル：神経科学学会の公式ジャーナル, 27(26), 6923–6930. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.0958-07.2007

Lee, B. H., Lee, K. H., Yoon, D. H., Kim, U. J., Hwang, Y. S., Park, S. K., … Jahng, T. (2005). 脊髄損傷ラットにおける運動誘発電位の神経伝導に対するメチルプレドニゾロンの効果。Journal of Korean Medical Science, 20(1), 132–138. https://doi.org/10.3346/jkms.2005.20.1.132

Anderson, T., Hu, B., Pittman, Q., & Kiss, Z. H. T. (2004). 深部脳刺激のメカニズム：ラット視床における細胞内研究。The Journal of Physiology, 559(1), 301–313. https://doi.org/10.1113/jphysiol.2004.064998

Sokolow, S., Manto, M., Gailly, P., Molgó, J., Vandebrouck, C., Vanderwinden, J.-M., … Schurmans, S. (2004). Na/Ca交換体3欠損マウスにおける神経筋伝達障害と骨格筋繊維壊死。Journal of Clinical Investigation, 113(2), 265–273. https://doi.org/10.1172/JCI18688

D’Ambrosio, R., Fairbanks, J. P., Fender, J. S., Born, D. E., Doyle, D. L., & Miller, J. W. (2004). ラットにおける液体パーカッション損傷後の外傷性てんかん。Brain : A Journal of Neurology, 127(Pt 2), 304–314. https://doi.org/10.1093/brain/awh038

Shaw, B. K., & Kennedy, G. G. (2002). アンドロゲン依存行動の種差に関連したアンドロゲン受容体分布パターンの種差の証拠。Journal of Neurobiology, 52(3), 203–220. https://doi.org/10.1002/neu.10079

Yavich, L., & Tiihonen, J. (2000). エタノールはマウスの核 accumbens における誘発ドーパミン放出を調節する：社会的ストレスと用量依存性。European Journal of Pharmacology, 401(3), 365–373. 取得元 http://www.safetylit.org/citations/index.php?fuseaction=citations.viewdetails&citationIds%5B%5D=citjournalarticle_271069_38

Knisley, S. B., Trayanova, N., & Aguel, F. (1999). 心臓電気刺激における電場と繊維構造の役割。Biophysical Journal, 77(3), 1404–1417. https://doi.org/10.1016/S0006-3495(99)76989-4

 

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