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ENDOHM-24G-SNAP
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Prix valables uniquement aux États-Unis, au Canada et à Porto Rico.
Ces chambres de cupules de culture cellulaire sont utilisées dans la mesure TEER pour les systèmes de cupules de culture amovibles utilisant les compteurs EVOM2 pour les cultures cellulaires endothéliales et épithéliales.
REMARQUE : Ces EndOhms sont destinés à être utilisés avec les anciens compteurs EVOM™. Pour les EndOhms utilisés avec le nouveau manuel EVOM™ (ou EVOM3), voir Électrodes EVOM™ pour TEER.
EndOhm les chambres fournissent des mesures de résistance reproductibles des monocouches endothéliales et épithéliales dans des cupules de culture. Transférez les cupules de leurs puits de culture vers la EndOhm chambre pour la mesure plutôt que d’utiliser des électrodes portatives. La chambre et le couvercle contiennent chacun une paire d’électrodes concentriques : une pastille de détection de tension en argent/chlorure d’argent au centre ainsi qu’une électrode annulaire de courant. La hauteur de l’électrode supérieure peut être ajustée pour s’adapter aux cupules de culture cellulaire de différents fabricants.
Pour en savoir plus sur nos options de garantie, cliquez ici.
Pour trouver les chambres EndOhm équivalentes compatibles avec EVOM3 ou le Manuel EVOM™, visitez la page produit ici.
| Code de commande | Description |
| ENDOHM-24G-SNAP | EndOhm pour coupelles de culture de 24mm et Costar Snapwell (6 puits par plaque) |
| ENDOHM-12G | EndOhm pour coupelles de culture de 12mm (12 puits par plaque) |
| ENDOHM-6G | EndOhm pour coupelles de culture de 6mm (24 puits par plaque) |


Utilisation des WPI EVOM2 ohmmètre, les chambres Endohm fournissent des mesures de résistance reproductibles des monocouches endothéliales et épithéliales dans des coupelles de culture. Transférez les coupelles de leurs puits de culture à la chambre Endohm pour la mesure plutôt que d'utiliser des électrodes portatives. La chambre et le couvercle contiennent chacun une paire d'électrodes concentriques : un pellet de détection de tension en argent/chlorure d'argent au centre plus une électrode annulaire de courant. La hauteur de l'électrode supérieure peut être ajustée pour s'adapter aux coupelles de culture cellulaire de différents fabricants.
Effectuez des mesures plus précises avec Endohms
Les électrodes circulaires symétriquement opposées d'Endohm, situées au-dessus et en dessous de la membrane, permettent un flux de densité de courant plus uniforme à travers la membrane qu'avec STX2 électrodes. La résistance de fond d'un insert vierge est réduite de 150 Ω (lors de l'utilisation du ohmmètre portatif de WPI STX2 électrodes) à moins de 5 Ω. Avec la géométrie fixe des électrodes d'Endohm, la variation des lectures sur un échantillon donné est réduite de 10-30 Ω avec STX2 électrodes (selon l'expérience de l'utilisateur) à 1-2 Ω. Comparé à d'autres méthodes de mesure de résistance, Endohm avec EVOM2™ offre une solution beaucoup plus pratique et économique pour la mesure des « tissus poreux ». Grâce à la densité uniforme du courant en onde carrée AC provenant de EVOM2, les erreurs dues à la polarisation des électrodes ou à la capacité de la membrane sont largement éliminées. Endohm avec EVOM2 offre le ohmmètre endothélial le plus précis et économique actuellement disponible. À ce jour, des coupelles de Corning, Millipore, Nunc, Greiner et BD Falcon ont été testées. Les chambres Endohm peuvent être stérilisées à l'oxyde d'éthylène, à l'alcool ou avec un bactéricide ; non autoclavables.
REMARQUE : Les chambres EndOhm possèdent des électrodes Ag/AgCl. Si vous effectuez des mesures sur de longues périodes, vous devez prendre en compte tout problème cytotoxique potentiel dû à une exposition prolongée de vos cellules à l'argent.
L'ENDOHM-6G est compatible avec les chambres suivantes :
| Corning | Millipore | Matériau | Diamètre de la membrane (mm) | Surface de croissance (cm²) | Taille des pores de la membrane (μm) |
| 3470 | 6.5 | 0.33 | 0.4 | ||
| 3472 | PITP01250 | 6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| 3413 | Insert PCF | 6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| 3415 | PITP 01250 Insert PCF |
6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| 3421 | 6.5 | 0.33 | 5.0 | ||
| 3422 | PIEP 01250 Insert PCF |
6.5 | 0.33 | 8.0 | |
| 3495 | PIHT12R48* Insert PET |
6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| PIHA012 50 | Insert HA | 6.5 | 0.33 | 0.45 | |
| PICM012 50 | Insert CM | 6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| 3496 | PISP12R48* Insert PET |
6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| PIRP12R48* Insert PET |
6.5 | 0.33 | 1.0 | ||
| PIMP12R48* Insert PET |
6.5 | 0.33 | 5.0 | ||
| PIEP12R48* Insert PET |
6.5 | 0.33 | 8.0 | ||
| PIXP01250 Insert PCF |
6.5 | 0.33 | 12 | ||
| PIHP01250 | 1.0 | ||||
| PITT01250 | 3.0 |
* Les tri-supports dépassent le bord de la chambre et le puits ne peut pas être maintenu parallèle aux électrodes.
| Nunc | Taille des pores (μm) | Surface de culture (cm²) |
| 140620 | 0.4 | 0.47 |
| 140627 | 3.0 | 0.47 |
| 140629 | 8.0 | 0.47 |
| ThinCertTM | Matériau de la membrane | Taille des pores [µm] | Densité des pores [cm-2]-2] | Propriétés optiques de la membrane | Traitement de surface TC/Stérile | Plaques multi-puits/ThinCertTM par boîte |
| 662640 | PET | 0.4 | 1 x 108 | translucide | +/+ | 2/48 |
| 662641 | PET | 0.4 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 2/48 |
| 662610 | PET | 1.0 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 2/48 |
| 662630 | PET | 3.0 | 0.6 x 106 | transparent | +/+ | 2/48 |
| 662631 | PET | 3.0 | 2 x 106 | translucide | +/+ | 2/48 |
| 662638 | PET | 8.0 | 0.15 x 106 | translucide | +/+ | 2/48 |
| Millicell | Taille des pores (μm) | Qté/paquet |
| MCHT24H48 | 0.4 | 48 |
| MCRP24H48 | 1.0 | 48 |
| MCSP24H48 | 3.0 | 48 |
| MCMP24H48 | 5.0 | 48 |
| MCEP24H48 | 8.0 | 48 |
| BD Falcon | Matériau de la membrane | Taille des pores [µm] | Densité des pores [cm-2]-2] | Propriétés optiques de la membrane | Plaque TC (#puits) |
| 353095 | PET | 0.4 | 2.0 ± 0.2 x 106 | transparent | 24 |
| 353104 | PET | 1.0 | 1.6 ± 0.6 x 106 | transparent | 24 |
| 353096 | PET | 3.0 | 8 ± 2 x 105 | transparent | 24 |
| 353097 | PET | 8.0 | 6 ± 2 x 104 | translucide | 24 |
| 353495 | PET | 0.4HD | 100 ± 10 x 106 | translucide | 24 |
| 353492 | PET | 3.0HD | 2.0 ± 0.2 x 105 | translucide | 24 |
L'ENDOHM-12G est compatible avec les chambres suivantes :
| Corning | Millipore | Diamètre de la membrane (mm) | Surface de croissance (cm²) | Taille des pores de la membrane (μm) |
| 3401 | 12 | 1.12 | 0.4 | |
| 3402 | PITP01250 | 12 | 1.12 | 3.0 |
| PITT01250 | 12 | 1.12 | 3.0 | |
| 3493 | 12 | 1.12 | 0.4 | |
| 3494 | 12 | 1.12 | 3.0 | |
| 3460 | PIHT15R48* Insert PET |
12 | 1.12 | 0.4 |
| PIRP15R48* Insert PET |
12 | 1.12 | 1.0 | |
| 3462 | PISP15R48* Insert PET |
12 | 1.12 | 3.0 |
| PIMP15R48* Insert PET |
12 | 1.12 | 5.0 | |
|
PIEP30R48* PIEP15R48* Insert PET |
12 | 1.12 | 8.0 |
* Les pieds à triple support doivent être correctement équilibrés afin que le filtre soit parallèle aux électrodes.
| Nunc | Taille des pores (μm) | Surface de culture (cm²) |
| 140652 | 0.4 | 1.13 |
| 140654 | 3.0 | 1.13 |
| 140656 | 8.0 | 1.13 |
| ThinCertTM | Matériau de la membrane | Taille des pores [µm] | Densité des pores [cm-2]-2] | Propriétés optiques de la membrane | Traitement de surface TC/Stérile | Plaques multi-puits/ThinCertTM par boîte |
| 665640 | PET | 0.4 | 1 x 108 | translucide | +/+ | 4/48 |
| 665641 | PET | 0.4 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 4/48 |
| 665610 | PET | 1.0 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 4/48 |
| 665630 | PET | 3.0 | 0.6 x 106 | transparent | +/+ | 4/48 |
| 665631 | PET | 3.0 | 2 x 106 | translucide | +/+ | 4/48 |
| 665638 | PET | 8.0 | 0.15 x 106 | translucide | +/+ | 4/48 |
| Millicell | Taille des pores (μm) | Qté/paquet |
| MCHT12H48 | 0.4 | 48 |
| MCRP12H48 | 1.0 | 48 |
| MCSP12H48 | 3.0 | 48 |
| MCMP12H48 | 5.0 | 48 |
| MCEP12H48 | 8.0 | 48 |
| BD Falcon | Matériau de la membrane | Taille des pores [µm] | Densité des pores [cm-2]-2] | Propriétés optiques de la membrane | Plaque TC (#puits) |
| 353180 | PET | 0.4 | 2.0 ± 0.2 x 106 | transparent | 12 |
| 353103 | PET | 1.0 | 1.6 ± 0.6 x 106 | transparent | 12 |
| 353181 | PET | 3.0 | 8 ± 2 x 105 | transparent | 12 |
| 353182 | PET | 8.0 | 6 ± 2 x 104 | translucide | 12 |
| 353494 | PET | 0.4HD | 100 ± 10 x 106 | translucide | 12 |
| 353292 | PET | 3.0HD | 2.0 ± 0.2 x 105 | translucide | 12 |
L'ENDOHM-24SNAP est compatible avec les chambres suivantes :
| Corning | Millipore | Matériau de la membrane | Taille des pores (µm) |
| 3407 | Polycarbonate | 0.4 | |
| 3801 | Polycarbonate | 0.4 | |
| Polycarbonate | 3.0 | ||
| 3412 | PIHT30R48* | Polycarbonate | 0.4 |
| 3414 | Polycarbonate | 3.0 | |
| PITT03050 | Polycarbonate | 3.0 | |
| 3428 | Polycarbonate | 8.0 | |
| 3450 | Polyester | 0.4 | |
| 3452 | Polyester | 3.0 | |
| 3491 | Collagène | 0.4 | |
| 3492 | Collagène | 3.0 | |
| PICMORG50 | Insert organotypique | 0.4 | |
| PIHA03050 | Insert HA | 0.45 | |
| PIHP03050 | Insert PCF | 0.4 | |
| PICM03050 | Esters de cellulose mixte HA | 0.4 | |
| PIHT30R48* | Insert PET | 0.4 | |
| PIRP30R48* | Insert PET | 1.0 | |
| PISP30R48* | Insert PET | 3.0 | |
| PIMP30R48* | Insert PET | 5.0 | |
| PIEP30R48* | Insert PET | 8.0 |
* Les pieds à triple support doivent être correctement équilibrés afin que le filtre soit parallèle aux électrodes.
| Nunc | Taille des pores (μm) | Surface de culture (cm²) |
| 140640 | 0.4 | 3.14 |
| 140642 | 3.0 | 3.14 |
| 140644 | 8.0 | 3.14 |
| 140660 | 0.4 | 4.1 |
| 140663 | 3 | 4.1 |
| 140668 | 8 | 4.1 |
| ThinCertTM | Matériau de la membrane | Taille des pores [µm] | Densité des pores [cm-2]-2] | Propriétés optiques de la membrane | Traitement de surface TC/Stérile | Plaques multi-puits/ThinCertTM par boîte |
| 657640 | PET | 0.4 | 1 x 108 | translucide | +/+ | 4/24 |
| 657641 | PET | 0.4 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 4/24 |
| 657610 | PET | 1.0 | 2 x 106 | transparent | +/+ | 4/24 |
| 657630 | PET | 3.0 | 0.6 x 106 | transparent | +/+ | 4/24 |
| 657631 | PET | 3.0 | 2 x 106 | translucide | +/+ | 4/24 |
| 657638 | PET | 8.0 | 0.15 x 106 | translucide | +/+ | 4/24 |
| Millicell | Taille des pores (μm) | Qté/paquet |
| MCHT06H48 | 0.4 | 48 |
| MCRP06H48 | 1.0 | 48 |
| MCSP06H48 | 3.0 | 48 |
| MCMP06H48 | 5.0 | 48 |
| MCEP06H48 | 8.0 | 48 |
| BD Falcon | Matériau de la membrane | Taille des pores [µm] | Densité des pores [cm-2]-2] | Propriétés optiques de la membrane | Plaque TC (#puits) |
| 353090 | PET | 0.4 | 2.0 ± 0.2 x 106 | transparent | 6 |
| 353102 | PET | 1.0 | 1.6 ± 0.6 x 106 | transparent | 6 |
| 353091 | PET | 3.0 | 8 ± 2 x 105 | transparent | 6 |
| 353093 | PET | 8.0 | 6 ± 2 x 104 | translucide | 6 |
| 353493 | PET | 0.4HD | 100 ± 10 x 106 | translucide | 6 |
| 353092 | PET | 3.0HD | 2.0 ± 0.2 x 105 | translucide | 6 |
Tableaux de compatibilité EndOhm-6G (EVM-EL-03-01-01)
Tableaux de compatibilité EndOhm-12G (EVM-EL-03-01-02)
Tableaux de compatibilité EndOhm-24G-SNAP (EVM-EL-03-01-03)
Dépannage des lectures de résistance instables d'un ENDOHM
Une de nos questions fréquemment posées (FAQ) concerne les mesures TEER avec un EndOhm. Si les lectures de résistance de votre EndOhm ne se stabilisent pas, vous devrez peut-être effectuer un dépannage.
Testez le compteur manuel EVOM™ : Tout d'abord, testez votre compteur EVOM™. La résistance de test 1000Ω (WPI # 91750) peut être utilisée à cet effet. Insérez la fiche RJ-11 à l'extrémité de la résistance de test dans le port d'entrée du compteur. Réglez le commutateur de fonction sur Ohms. Débranchez le compteur EVOM™ du chargeur et allumez-le (I). Le compteur doit afficher 1000Ω. Sinon, ajustez la vis R ADJ avec un petit tournevis à tête plate jusqu'à ce que le compteur affiche une lecture de 1000Ω. Si le compteur EVOM™ affiche 1000 ± 2-3 ohms, et que la lecture reste stable, alors le compteur EVOM™ fonctionne correctement.
Testez l’EndOhm : Ensuite, testez l’EndOhm. Vous pouvez toujours tester qualitativement l’EndOhm en l’exposant à différentes concentrations de KCl. Les lectures doivent toujours montrer une valeur TEER stable et plus basse à des concentrations plus élevées, et une valeur plus élevée mais potentiellement moins stable à des concentrations plus faibles. En général, si la lecture TEER diminue, cela signifie que le courant trouve un chemin alternatif de moindre résistance que celui passant uniquement par le milieu, ou que la préparation adopte d’une certaine manière une charge. Si le problème vient vraiment de l’EndOhm, il est généralement causé par une fuite de milieu de culture sous les surfaces des électrodes, où il peut attaquer les connexions des fils aux disques Ag/AgCl. Une réaction retardée peut survenir lorsque le milieu s’infiltre dans des fissures très fines où le collage a perdu son étanchéité. Si la lecture TEER dérive continuellement vers le bas bien en dessous de la valeur attendue, alors l’EndOhm a très probablement une fuite au niveau de la liaison des électrodes ou une corrosion quelque part dans les circuits de courant ou de tension. Si l’EndOhm a développé des fissures fines, il doit être remplacé.
Sheller, R. A., Cuevas, M. E., & Todd, M. C. (2017). Comparaison des techniques de mesure de la résistance transepitheliale : baguettes vs. Endohm. Biological Procedures Online, 19, 4. http://doi.org/10.1186/s12575-017-0053-6
Srinivasan, B., Kolli, A. R., Esch, M. B., Abaci, H. E., Shuler, M. L., & Hickman, J. J. (2015). Techniques de mesure TEER pour les modèles de barrières in vitro. Journal of Laboratory Automation, 20(2), 107–26. http://doi.org/10.1177/2211068214561025
TORRES, R., PIZARRO, L., CSENDES, A., GARCÍA, C., LAGOS, N., Pasdar, M., … Roskelley, C. (2007). LES ÉPIMÈRES GTX 2/3 PÉNÈTRENT L’INTESTIN PAR UNE VOIE PARACELLULAIRE. The Journal of Toxicological Sciences, 32(3), 241–248. http://doi.org/10.2131/jts.32.241
Patil, R. V., Han, Z., Yiming, M., Yang, J., Iserovich, P., Wax, M. B., & Fischbarg, J. (2001). Transport de fluide par des couches épithéliales ciliées non pigmentées humaines en culture : un rôle homéostatique pour l’aquaporine-1. American Journal of Physiology - Cell Physiology, 281(4).

$2,250.00
53330-01
La série de chambres EndOhm, utilisée avec le mesureur de résistance EVOM2 de WPI ou le Millicell ERS, est conçue pour fournir des mesures de résistance reproductibles et précises des tissus endothéliaux dans des coupelles de culture. Les valeurs de résistance obtenues avec le EndOhm sont cohérentes avec celles obtenues à l'aide d'une chambre Ussing bien conçue.
EVOM™ Auto est la dernière génération du système automatisé de mesure de la résistance électrique transepitheliale ou transendothéliale (TEER) de WPI. Utilisant la même technologie éprouvée des EVOM™ Manual et REMS, combinée à une nouvelle matrice multi-électrodes, une interface logicielle et un système de contrôle, il offre notre solution de flux de travail la plus rapide tout en améliorant la précision de la mesure TEER :
En 2022, la Food and Drug Administration (FDA) des États-Unis a approuvé 37 nouveaux médicaments, dont 20 étaient des entités chimiques et 17 des produits biologiques. En 2023, la découverte de médicaments reste dynamique avec de nombreuses avancées résultant des évolutions dans les types de médicaments développés ainsi que des nouveaux essais innovants lancés pour évaluer les médicaments en phase préclinique. Le développement thérapeutique reste fortement axé sur les maladies touchant de larges populations pour lesquelles il existe un manque de traitements efficaces, les lancements de médicaments les plus attendus en 2023 étant prévus dans les domaines du cancer, de la maladie d’Alzheimer, des maladies cardiovasculaires et de la colite ulcéreuse.
En 2022, la Food and Drug Administration (FDA) des États-Unis a approuvé 37 nouveaux médicaments, dont 20 étaient des entités chimiques et 17 des produits biologiques. En 2023, la découverte de médicaments reste dynamique avec de nombreuses avancées résultant des évolutions dans les types de médicaments développés ainsi que des nouveaux essais innovants lancés pour évaluer les médicaments en phase préclinique. Le développement thérapeutique reste fortement axé sur les maladies touchant de larges populations pour lesquelles il existe un manque de traitements efficaces, les lancements de médicaments les plus attendus en 2023 étant prévus dans les domaines du cancer, de la maladie d’Alzheimer, des maladies cardiovasculaires et de la colite ulcéreuse.
La résistance électrique transepitheliale (TEER) est une technique largement utilisée dans les domaines des sciences de la vie et du développement thérapeutique. Elle mesure la résistance électrique à travers une monocouche cellulaire, fournissant des informations sur l'intégrité et la fonctionnalité des barrières épithéliales. La TEER s'est avérée être un outil précieux dans divers domaines, notamment les études d'absorption des médicaments, l'ingénierie tissulaire et la modélisation des maladies. Cet article vise à explorer les avantages de la TEER et ses applications dans différents domaines de recherche.
La mesure de la résistance électrique transepitheliale/transendothéliale (TEER) est l'une des pratiques les plus utilisées pour évaluer la santé cellulaire, telle que la confluence cellulaire, l'intégrité de la barrière ou la fonction de barrière des monocouches cellulaires cultivées sur des multi-puits. La mesure TEER utilisant l'Epithelial Voltohmmeter (EVOM) de WPI est considérée comme la référence en raison de ses mesures fiables et de nombreuses citations dans la littérature utilisant divers types cellulaires. Le manuel EVOM™ et l'EVOM™ Auto, ainsi que différents choix d'électrodes (STX4, STX HTS pour le criblage à haut débit, chambres EndOhm, et réseau multiélectrodes pour EVOM™ Auto) permettent aux chercheurs de réaliser et d'analyser des échantillons cellulaires dans des inserts amovibles de 6, 12 et 24 puits ainsi que dans des plaques multi-puits HTS de formats 24 et 96. Les principaux défis que les chercheurs peuvent rencontrer lors de la réalisation d'études pour capturer la mesure TEER incluent :
· Lectures instables
· Valeurs hors plage
· Mesures incohérentes entre les réplicats ou lots d'échantillons.
Prenez en compte les facteurs suivants pour surmonter tout problème de mesure TEER et obtenir des mesures précises et fiables.
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