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MICRO-EPORE
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El nuevo penetrador celular de precisión WPI MICRO-ePORE™ es un sistema simple y versátil que puede usarse para la microinyección celular eficiente de una amplia variedad de compuestos y biomoléculas en ovocitos y embriones de mamíferos en etapa preimplantacional. La tecnología Flutter Electrode, con patente en trámite, ayuda a una penetración de membrana pequeña, limpia y precisa sin desgarrar ni dañar la membrana cuando se trabaja en la microinyección de animales transgénicos o manipulación celular.
Soportes para electrodos de alambre de platino (se venden por separado) ¡están disponibles!
NOTA: La bomba de microinyección y otros accesorios que se muestran en la imagen del sistema se venden por separado.
Para saber más sobre nuestras opciones de garantía, haga clic aquí.
*Nota: Por favor, no intente tomar un mango comprado para Femtojet y enroscar la cabeza plástica ePORE, las roscas son diferentes y dañarán el componente.
El nuevo MICRO-ePORE™ Pinpoint Cell Penetrator de WPI es un sistema simple y versátil que puede usarse para la microinyección celular eficiente de una amplia variedad de compuestos y biomoléculas en ovocitos y embriones de mamíferos en etapa preimplantacional. La tecnología de electrodos Flutter, con patente en trámite, ayuda en la penetración pequeña, limpia y precisa de la membrana sin desgarrarla ni dañarla cuando se trabaja en la microinyección de animales transgénicos o manipulación celular.

La electroporación utiliza un pulso eléctrico en un medio para abrir poros en las membranas celulares de las células en la cubeta de electroporación con el fin de penetrar la membrana celular e introducir material genético.
El MICRO-ePORE™ Pinpoint Cell Penetrator de WPI ofrece varias ventajas sobre la electroporación tradicional para el propósito de microinyección celular.
Los sistemas electrofisiológicos que utilizan capacitancia negativa se han usado rutinariamente para la microinyección celular de una variedad de biomoléculas en ovocitos mamíferos, así como en embriones preimplantacionales y postimplantacionales en estudios de biología del desarrollo. El sistema que ya no está disponible, el amplificador intracelular WPI Cyto721, permite que la aguja perfore la membrana celular con trauma físico mínimo. Más recientemente, esta técnica se ha aplicado a la transferencia genética en la microinyección de reactivos CRISPR/Cas9 en embriones de ratón en etapa de dos células. Los autores demostraron un aumento significativo en la eficiencia del knock-in y alta viabilidad de los embriones usando su método.
El nuevo penetrador celular puntual MICRO-ePORE™ ofrece una solución única para la microinyección celular que resulta en alta viabilidad embrionaria. El instrumento crea un campo eléctrico oscilante en un sitio localizado de la membrana justo debajo del lugar de inyección. El MICRO-ePORE™ crea pequeños orificios reversibles en la membrana plasmática a través de los cuales se microinyecta el material. El investigador determina la amplitud y frecuencia de la señal que mejor se adapta a la aplicación. En contraste con la microinyección celular convencional, en la microinyección dirigida usando el MICRO-ePORE™, la membrana no se desgarran y por lo tanto permite una viabilidad embrionaria superior. La técnica es simple y elegante. El prototipo del nuevo penetrador celular MICRO-ePORE™ ha sido probado con éxito en embriones preimplantacionales de ratón y primates, así como en el silenciamiento génico en colas de pez cebra.
MICRO-ePORE™ fue diseñado para una variedad de aplicaciones, incluyendo la generación de ratones knock-in mediada por CRISPR/Cas9 con inserciones grandes mediante microinyección en embriones en etapa de dos células con alta viabilidad.7 El MICRO-ePORE™ ha realizado microinyección precisa de oligómeros morfolino (silenciamiento “knockdown” antisentido) en colas de pez cebra.


Esto muestra el electrodo de referencia estilo sonda con un inyector Eppendorf, por Fangtao Chi de UCLA/MCDB y Utpal Banerjee.

El nuevo penetrador celular puntual WPI MICRO-ePORE™ es un sistema simple y versátil que puede usarse para la microinyección eficiente de una amplia variedad de compuestos y biomoléculas en ovocitos y embriones mamíferos en etapa preimplantacional. La tecnología de electrodos Flutter, con patente en trámite, ayuda a una penetración de membrana pequeña, limpia y precisa sin desgarrar ni dañar la membrana. Aquí Gabe configura el sistema y conecta todos los componentes.
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MICRO-ePORE™ Versión 2 Rev. 2 (Para unidades con números de serie a partir de 182508) |
MICRO-ePORE™ Versión 1 Rev. 1 (Para unidades con números de serie hasta 182508) |
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Manual de instrucciones v2 Guía de inicio rápido v2 |
Manual de instrucciones v1 Guía de inicio rápido v1 |
¿Es posible reducir la lisis embrionaria usando MICRO-ePORE? W.Gardiner, J.Kenyon, T.Bell, S.Atkins
Desempaque de su sistema MICRO-ePORE™
Conexión de su sistema MICRO-ePORE™
Conexión de los soportes de electrodo MICRO-ePORE™
(1) Controlador MICRO-ePORE™
(1) Soporte para electrodo con alambre de plata. Su elección de:
• WPI #300863 Soporte MICRO-ePORE WPI
• WPI #300864 Soporte MICRO-ePORE Femtojet®
• WPI #300865 Narishige MICRO-ePORE™
(1) Cable de interfaz para soporte de microelectrodo
(1) Electrodo de referencia tipo pozo
(1) Conjunto de electrodo de referencia tipo sonda
(1) Interruptor de pie 13142
(1) Cable de alimentación
(1) Cable de tierra MICRO-ePORE™ 99789
(1) Manual de instrucciones
| Especificaciones | Descripción |
| Parámetros de voltaje | 0–3.0 V, en incrementos de 1 mV |
| Parámetros de frecuencia | 50–3000 Hz, en incrementos de 1 Hz |
| Umbral máximo de alarma de resistencia de la pipeta | 500 MΩ |
| Dimensiones | 19.7 × 12.7 × 7.6 cm (7.75 × 5 × 3 in.) |
| Peso | 0.9 kg (2 lb.) |
| Certificaciones | CE, RoHS |
Bałakier H, Pedersen RA. Asignación de células a la masa celular interna y a los linajes del trofectodermo en embriones de ratón preimplantación. Dev Biol. 1982 Apr; 90(2):352-62. PMID: 7075865 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/7075865)
Lawson KA, Pedersen RA. Destino celular, movimiento morfogenético y cinética poblacional del endodermo embrionario en el momento de la formación de las capas germinales en el ratón. Development. 1987 Nov;101(3):627-52. PMID:3502998 (https://www-ncbi-nlm-nih-gov.myaccess.library.utoronto.ca/pubmed/3502998)
Wianny F, Zernicka-Goetz M. Interferencia específica con la función génica mediante ARN de doble cadena en el desarrollo temprano del ratón. Nat Cell Biol. 2000 Feb; 2(2):70-5. PMID:10655585 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10655585)
Chazaud C, Yamanaka Y, Pawson T, Rossant J. Segregación temprana de linajes entre epiblasto y endodermo primitivo en blastocistos de ratón a través de la vía Grb2-MAPK. Dev Cell. 2006 May; 10(5):615- 24. PMID:16678776 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16678776)
Swann K, Campbell K, Yu Y, Saunders C, Lai FA. Uso de quimera de luciferasa para monitorear la expresión de PLCzeta en óvulos de ratón. Methods Mol Biol. 2009; 518:17-29. doi: 10.1007/978-1-59745-202-1_2. PMID:19085135 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19085135)
Posfai E, Petropoulos S, de Barros FRO, Schell JP, Jurisica I, Sandberg R, Lanner F, Rossant J. Plasticidad dependiente de la posición y de la señalización Hippo durante la segregación de linajes en el embrión temprano de ratón. Elife. 2017 Feb 22; 6. pii: e22906. doi: 10.7554/eLife.22906. PMID: 28226240 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/28226240)
Gu B, Posfai E, Rossant J. Generación eficiente de inserciones grandes dirigidas mediante microinyección en embriones de ratón en estadio de dos células. Nature Biotechnology 2018 Ago; 36(7):632-637. doi: 10.1038/nbt.4166. Publicado en línea 2018 Jun 11. PMID: 29889212 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/29889212)

Los instrumentos quirúrgicos con recubrimiento negro no solo son visualmente más atractivos que los de acero inoxidable, sino que también ofrecen varios otros beneficios que se detallan a continuación.
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