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EVOM3
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Precios válidos solo en EE. UU., Canadá y Puerto Rico.
Este producto ha sido descontinuado. ACTUALICE A EVOM™ MANUAL para mayor precisión, registro automático de datos, interfaz táctil y muchas funciones nuevas.
El Manual EVOM™ reemplaza todos los medidores manuales TEER fabricados por WPI, incluyendo EVOM3, EVOM2 y MilliCell® ERS-2, todos los cuales han sido descontinuados.
El sistema EVOM de WPI es popular en la comunidad investigadora y se usa comúnmente para la evaluación de la salud celular de mamíferos midiendo la resistencia eléctrica transepitelial/transendotelial (TEER o TER) de capas celulares.
EVOM3 funciona con el mismo principio básico que los modelos EVOM anteriores (EVOMX, EVOM y EVOM2). Tiene funciones avanzadas para realizar experimentos más fácilmente. Con la nueva pantalla táctil ahora puede GUARDAR DATOS como Microsoft® Archivos Excel en una memoria USB. Simplemente retire la memoria con todos sus datos registrados del EVOM3 y conéctela a una computadora para acceder y graficar sus datos. Es tan simple como suena.
Los iones y la corriente eléctrica pueden ser transportados a través de las células (transcelular) y a través del espacio entre células adyacentes (paracelular) como se muestra en la imagen a continuación.

Las líneas punteadas muestran la vía transcelular del flujo de iones o corriente eléctrica. Las líneas sólidas demuestran la vía paracelular del flujo de iones o corriente.
La resistencia eléctrica (es decir, TEER) de una capa celular es la presentación inversa de la conductancia eléctrica a través de la capa celular. Un valor alto de TEER en la capa celular indica un monocapa celular intacta y sugiere una permeabilidad baja o restringida de iones y moléculas (es decir, baja conductancia). De manera similar, una disminución en el valor de TEER sugiere una función de barrera comprometida e indica una mayor permeabilidad. Los estudios de permeabilidad tisular requieren una capa celular confluyente, y la medición de TEER se usa generalmente para confirmar la formación de un monocapa confluyente.

Inicialmente, 24 horas después de sembrar las células en el transwell, los valores TEER son generalmente bajos, porque la corriente puede pasar fácilmente entre las células. Con el tiempo, las células se multiplican y comienzan a cubrir los espacios. Finalmente, se forma un monocapa celular confluyente. En ese momento, la membrana permeable está completamente cubierta con células y no permite el paso fácil de corriente eléctrica. Esto resulta en un valor TEER alto.
Los valores TEER de monocapas celulares confluyentes pueden variar según el tipo celular. Los monocapas de ciertos tipos celulares (por ejemplo, tipo A), que normalmente muestran valores TEER bajos, generalmente tienen uniones estrechas relativamente permeables. Los monocapas de otros tipos celulares (por ejemplo, tipo B) muestran valores TEER altos, y se sabe que estos tipos celulares tienen uniones estrechas ajustadas. Se sabe que los iones y moléculas pasan con mayor facilidad a través de capas celulares permeables en comparación con capas celulares más ajustadas. La presencia de más canales iónicos transcelulares en las células puede permitir además un flujo más fácil de iones o corriente eléctrica a través de la vía transcelular, lo que puede reducir aún más los valores TEER.

El tipo de célula A permite que pasen mayores cantidades de corriente e iones entre las células y produce un valor TEER bajo. Con sus uniones más ajustadas, los monocapas celulares del tipo B mostrarán un valor TEER más alto. Aunque ambos monocapas están confluyentes, los valores de resistencia TEER pueden ser marcadamente diferentes según la naturaleza de las propias células.
WPI fue el pionero en introducir la técnica simplificada de medición TEER usando EVOM, y hasta la fecha el sistema EVOM de WPI sigue siendo el dispositivo más popular para medir valores TEER en transwells. El EVOM3 es la versión más reciente de voltímetros epiteliales, con varias características avanzadas. El EVOM3 tiene una interfaz táctil que lo hace fácil de usar. La medición TEER usando un EVOM es un método no invasivo para monitorear la salud celular. El EVOM3 con el nuevo electrodo STX2PLUS ofrece análisis de muestras más precisos y funciones rápidas y sencillas de almacenamiento de datos usando una unidad flash USB.
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Para análisis cuantitativo de muestras con mayor precisión y fácil almacenamiento de datos, considere EVOM3. El método no invasivo de detección con EVOM3 permite que la misma muestra se use para otros análisis experimentales.
Aquí hay tres aplicaciones donde la medición de TEER se usa comúnmente. Al medir la función de la barrera celular, el aumento de los valores de TEER generalmente se correlaciona con una mayor función de barrera. De manera similar, la elevación del valor de TEER al nivel máximo puede indicar que la capa celular ha alcanzado la confluencia. La citotoxicidad celular puede evaluarse midiendo TEER. Valores altos de TEER indican una capa celular más saludable. A medida que las células mueren, pueden formarse huecos en la capa celular y el valor de TEER puede disminuir.

El sistema EVOM de WPI se ha utilizado ampliamente para estudiar la salud y función de tejidos in vitro bidimensionales (2-D) o tridimensionales (3-D). En los últimos años, para el cribado de fármacos de alto rendimiento y para estudiar enfermedades, se ha enfocado más la investigación en crear tejidos in vitro 3-D que se asemejen a tejidos in vivo y muestren propiedades funcionales consistentes. La medición de TEER se usa como uno de los métodos para evaluar y comparar qué tan de cerca los tejidos in vitro pueden imitar tejidos in vivo de manera consistente. EVOM3 puede usarse en modelos in vitro 3-D, como la barrera hematoencefálica (BBB), infección por virus Ling y tejidos de intestino, riñón e hígado. La sección de Referencias lista algunas publicaciones seleccionadas.


Videos cortos destacan algunas de las características clave nuevas del EVOM3. Haga clic en la pestaña Recursos en esta página para ver todos los videos del EVOM3.
WPI ofrece una línea de productos para el estudio de la fisiología epitelial que incluye una variedad de electrodos, los medidores EVOM y el sistema robótico automatizado para cribado de alto rendimiento (HTS). Obtenga los detalles sobre las opciones de electrodos en el artículo "Cómo seleccionar electrodos para realizar mediciones de TEER."
El EVOM3 ofrece una mayor eficiencia en el flujo de trabajo, mediciones más estables y repetibles en comparación con los medidores tradicionales de Resistencia Eléctrica Trans Epithelial (TEER). Proporcionando a los usuarios retroalimentación vital durante las mediciones experimentales, la gran pantalla del EVOM3 ofrece una variedad de vistas informativas. Las nuevas pantallas gráficas para análisis de tendencias y valores de medición ayudan a los científicos a ofrecer una metodología simple y paso a paso durante las mediciones experimentales. La interfaz táctil proporciona a los usuarios un menú intuitivo y fácil de usar para la configuración.
Eliminando la necesidad de registrar datos manualmente, el EVOM3 escribe la información de resistencia o voltaje en una unidad USB en formato CSV para una fácil transferencia a hojas de cálculo y programas de análisis de datos. Cuando se usa con el interruptor de pie permite la grabación manos libres de las mediciones.
En el corazón del EVOM3 está nuestro último procesador y circuito, que proporciona a los usuarios lecturas rápidas, fáciles y confiables gracias a su rápida estabilización, promedio automático de muestreo veinte veces y diseño de bajo ruido. La función de resistencia de rango automático permite mediciones rápidas de resistencia, y una función de pantalla de sobre-rango elimina lecturas falsas. El EVOM3 tiene niveles de corriente ajustables en tres rangos fijos con dos rangos bajos para membranas sensibles y rangos de alta resistencia hasta 100 KΩ.
El electrodo STX2-PLUS fue diseñado para una fácil inserción en muchas placas de 24 pocillos. Es reposicionable en el inserto para mediciones repetibles y consistentes. Los nuevos electrodos blindados están diseñados para minimizar la interferencia eléctrica y ser más fáciles de mantener.
| Qué incluye el EVOM3 | CANT |
| Medidor de Voltios Ohm Epithelial EVOM3 | 1 |
| Juego de electrodos STX2-PLUS | 1 |
| 300749 Unidad USB 32 GB (Usada para almacenamiento. También contiene un programa Python 3.8 para monitoreo digital continuo de un inserto objetivo). | 1 |
| 503535 Cable USB | 1 |
| 99673 Kit de calibración, resistor de prueba de 1000Ω | 1 |
| 803025 Cable de alimentación A/C y cargador | 1 |
| 13142 Interruptor de pie | 1 |
NOTA: Un adaptador de electrodos 99672 EVOM2 a EVOM3 se vende por separado. El STX2, STX3 y todos los STX100 requieren el uso de este adaptador con el EVOM3.


La confluencia de una monocapa celular se determina por un aumento o una meseta en la resistencia tisular detectada usando el circuito electrónico único del EVOM3 y el nuevo electrodo STX2-PLUS. El EVOM3 mide cualitativamente la salud de la monocapa celular y cuantitativamente la confluencia celular. El EVOM3 produce una corriente AC baja que evita depósitos metálicos en el electrodo y efectos adversos en los tejidos que de otro modo podrían ser causados por corrientes DC más altas. El EVOM3 usa corrientes y voltajes bajos y está diseñado para pruebas no destructivas de confluencia de monocapas epiteliales en cultivos celulares. Además, las lecturas de resistencia no se ven afectadas por la capacitancia de la membrana ni por el voltaje de la membrana. La precisión y repetibilidad del sistema EVOM3-STX2-PLUS hacen que este instrumento sea ideal para estudios de permeabilidad, PD y otros estudios detallados de membranas.
| Número de parte | Descripciones |
| STX2-PLUS | Conjunto de electrodos de reemplazo |
| STX2* | Conjunto de electrodos de reemplazo (requiere 99672 para uso con EVOM3) |
| STX3* | Conjunto de electrodos ajustable para pocillos poco profundos, profundidad 5-9 mm |
| 3993* | Adaptador de 2 mm para EVOM2 |
*(Requiere 99672 para uso con el EVOM3)
Las nuevas cámaras EndOhm incluyen el cable EVOM3 99916.
| Número de parte | Descripciones |
| ENDOHM-6G | EndOhm para copa de cultivo de 6 mm (24 pocillos por placa) |
| ENDOHM-12G | EndOhm para copa de cultivo de 12 mm (12 pocillos por placa) |
| ENDOHM-24G | EndOhm para copa de 24 mm y Costar Snapwell (6 pocillos por placa) |
Técnicas de medición TEER para sistemas modelo de barrera in vitro
Manual de instrucciones STX2-PLUS
Descargar actualización del manual EVOM3/EVOM™ (Publicado en feb 2025)
Paquete de salida digital Python
Sí, pero se requiere el adaptador 99672 o el nuevo cable EVOM3 99916.
La función de blanco se usa cuando desea restar cualquier medición que no provenga de la membrana, como las resistencias del electrodo y del fluido.
No, la medición TEER requiere un cálculo de área. Para calcular TEER, multiplique la resistencia medida por el área de superficie correspondiente (a continuación). Por ejemplo, un inserto de 12 mm mide 565 Ω, el TEER es 565 Ω × 1.13 cm2 = 638.5 Ω- cm2Aquí están las áreas de superficie generalmente aplicables a diferentes formatos de transwell/insertos: placa de 6 pocillos (insertos de 24 mm) 4.52 cm2, placa de 12 pocillos (inserciones de 12 mm) 1.13 cm2, placa de 24 pocillos (inserciones de 6.5 mm) 0.33 cm2, placa de 96 pocillos (inserciones de 4.3 mm) 0.14 cm2.
Borre cualquier dato en la memoria abriendo configuración, menú de almacenamiento y luego presione nuevo plato, eso borrará lecturas anteriores. Regrese a la pantalla principal, abra la pantalla de vista previa, seleccione cada pocillo para medir (la selección se vuelve verde), coloque el electrodo y luego mida. Cuando termine de medir los pocillos seleccionados, abra configuración, presione el menú de pantalla de almacenamiento y luego presione almacenar nuevo para guardar los datos del plato en la unidad USB.
Saque el EVOM3 de la campana laminar después de usarlo. La próxima vez, encienda la luz UV dentro de la campana. Una vez que la campana esté desinfectada con UV, apague la luz UV, luego rocíe etanol o isopropanol al 70-100% sobre una toalla de papel y limpie el EVOM3. No rocíe alcohol directamente sobre el EVOM3.
El electrodo en el aire o parcialmente sumergido en el líquido puede mostrar guiones ya que registra lecturas inestables. La porción de la punta del electrodo (región sensora) debe permanecer completamente sumergida. También puede notar lecturas inestables cuando la punta del electrodo no está completamente sumergida. Asegúrese de seleccionar volúmenes apical y basolateral para que la punta del electrodo permanezca completamente sumergida. Debe usar volúmenes apical y basolateral mayores a los sugeridos por el fabricante del inserto. Por ejemplo, para Transwell Corning-24 pocillos (ejemplo Corning 3470) recomendamos un mínimo de 300 µL en la parte superior (apical) y 850 µL en la parte inferior (basolateral). [Estos volúmenes son un poco más que el mínimo requerido para el electrodo STX2-PLUS.]
Aquí están los pasos:

Figura 1: Ajuste de la altura del electrodo STX2-PLUS. Gire el anillo frontal en sentido horario para que el electrodo pueda entrar a la máxima profundidad dentro del pocillo.

Figura 2: Punta del electrodo STX2-PLUS y requisitos de volumen de líquido. Asegúrese de que la punta sensora del electrodo (porciones enmarcadas en rojo) en ambas hojas permanezca completamente sumergida en un líquido conductor, como medio de cultivo celular o tampón durante la medición. Necesita tener volúmenes apical y basolateral adecuados para obtener una lectura estable. Dado que el STX2-PLUS permanece colgado, se debe usar un volumen aumentado para asegurar que la región sensora del electrodo esté completamente sumergida.
NOTA: Debe usar volúmenes de líquido mayores a los recomendados por el fabricante del inserto. Los volúmenes recomendados por el fabricante del inserto no mantendrán la punta del electrodo completamente sumergida.
[As mentioned as an example previously, for Corning-24 well Transwell (e.g., Corning 3470) we recommend using minimum 300 µL on top (apical) and 850 µL on bottom (basolateral). These volumes are a little more than the least required for STX2-PLUS electrode. You can check visually to make sure the apical and basolateral volumes are adequate to keep the electrode tips fully immersed, and then consistently use those volumes.]
Incluso si todavía se observa la lectura inestable o el problema de guiones, probablemente el electrodo necesite cloración. La cloración se refiere a mantener las puntas del electrodo sumergidas en hipoclorito de sodio al 3-6% o lejía durante 10-15 minutos seguido de un enjuague con agua destilada. Es parte del mantenimiento del STX2-PLUS y un proceso de mantenimiento crítico. Por favor, consulte la instrucción de mantenimiento a continuación (paso 1). **
Puede esperar ver un cambio en los valores de resistencia en bruto. Sin embargo, usted resta los valores en blanco (Transwell en blanco sin células) de los valores de muestra (Transwell con células). De esta manera, resta el valor en blanco con volumen aumentado de las muestras con volumen aumentado. Por lo tanto, se omite cualquier cambio de resistencia causado por el aumento de volumen. Use consistentemente los mismos volúmenes para todas sus muestras en un experimento.
A continuación se muestran los pasos que se pueden seguir para la limpieza o mantenimiento del STX2-PLUS. Asegúrese de usar niveles de líquido suficientes durante la limpieza o mantenimiento, al menos hasta la región enmarcada en rojo.

1. Antes de usarlos, cloréelo manteniendo las puntas del electrodo sumergidas en hipoclorito de sodio al 3-6% (lejía) durante 10-15 minutos. La cloración debe hacerse cada 3 días cuando los electrodos se usan con frecuencia o después de más de una semana de almacenamiento. **
2. Enjuague con agua DI/buffer estéril.
3. Paso opcional: inmersión rápida en etanol o isopropanol al 70% y una inmersión rápida en agua DI/buffer.
4. Use el electrodo para mediciones.
5. Paso opcional entre la medición de muestras: inmersión rápida en etanol o isopropanol al 70% y una inmersión rápida en agua DI/buffer.
6. Después de las mediciones, remoje/sumerja las puntas del electrodo en isopropanol o etanol al 70% durante 5-10 minutos.
7. Enjuague con agua DI. Déjelo secar al aire. Guarde el electrodo seco y en un lugar alejado de la luz/luz mínima.
8. Cuando se use con frecuencia, cada semana remoje las puntas del electrodo en Tergazyme al 1% durante 15 minutos. Luego enjuague con agua DI.
9. A continuación, cloréelo manteniendo las puntas del electrodo sumergidas en hipoclorito de sodio al 3-6% (lejía) durante 10-15 minutos. (Igual que el paso #1.)
10. Enjuague con agua DI/buffer estéril.
11. Use para mediciones.
12. Repita desde el paso 5.
![]() |
NO sostenga el electrodo por el cable. Puede romper físicamente las conexiones internas gradualmente. |
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Sostenga el electrodo por la región señalada con la flecha (plástico). |
![]() |
Limite la inmersión en líquido o el nivel de pulverización de líquido hasta aquí (máximo). No desea que el líquido entre y alcance los cables o conectores internos por esa razón. Puede limpiar el resto del electrodo con una toalla de papel rociada con isopropanol o etanol (no rocíe directamente). |
El sistema de medición TEER EVOM3 permite a los investigadores realizar experimentos de manera más eficiente al mejorar el flujo de trabajo y aumentar la estabilidad y precisión de las lecturas en comparación con el EVOM2. Si prefiere leer los detalles, vea el artículo "Por qué elegir un EVOM3 sobre un EVOM2."
Compacto y ligero - Esta es una comparación entre el EVOM3 y el EVOM2. Con menos de 1 lb., el EVOM3 es ligero y portátil. Tiene un diseño elegante con interfaz táctil.
Pantalla inteligente de datos y control con pedal - Vea lo fácil que es configurar y usar el pedal para recopilar datos.
Almacenamiento de datos en unidad flash USB - Guarde datos como archivos de Microsoft Excel en la unidad flash USB con solo presionar un botón. El archivo de datos puede accederse en una computadora conectando la unidad flash a un puerto USB.
Diseño mejorado del electrodo - Compare el electrodo STX2 y el nuevo electrodo STX2-PLUS. El nuevo electrodo se mantiene vertical en la placa de pocillos, asegurando lecturas estables y consistentes.
Esta unidad cumple con las siguientes especificaciones:
| Tipo | Descripciones |
| Frecuencia de muestreo de tejido | 12.5 Hz |
| Promedio de muestras | 20 muestras por segundo |
| Rangos de resistencia |
|
| Modo automático | 1 a 100,000 Ω corriente automática 2 μA, 4 μA, 10 μA |
| Resolución de resistencia | 0.1 Ω (menos de 200 Ω); 1 Ω (más de 200 Ω) |
| Precisión de resistencia |
|
| Resolución de voltaje | 0.001 V, 0.1 mV |
| Precisión de resistencia | 0.1 Ω (200 Ω); 1 Ω (más de 200 Ω) |
| Precisión de voltaje | ± 0.1 mV |
| Niveles de corriente |
|
| Tasa de actualización de pantalla | 0.5 segundos |
| Batería | Batería Li-ion 3.7V 2500 mAh** |
| Período de carga | 5.5 horas (apagado); 6 horas (tiempo de funcionamiento) |
| Corriente de carga | 200 mA |
| Consumo de energía | ~250 mA |
| Certificaciones | CE |
** mAH significa miliamperios hora.
| Corning | Millipore | Material | Diámetro de la membrana (mm) | Área de superficie de crecimiento (cm²) | Tamaño de poro de la membrana (μm) |
| 3470 | 6.5 | 0.33 | 0.4 | ||
| 3472 | PITP01250 | 6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| 3413 | Inserto PCF | 6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| 3415 | PITP 01250 Inserto PCF |
6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| 3421 | 6.5 | 0.33 | 5.0 | ||
| 3422 | PIEP 01250 Inserto PCF |
6.5 | 0.33 | 8.0 | |
| 3495 | PIHT12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| PIHA012 50 | Inserto HA | 6.5 | 0.33 | 0.45 | |
| PICM012 50 | Inserto CM | 6.5 | 0.33 | 0.4 | |
| 3496 | PISP12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 3.0 | |
| PIRP12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 1.0 | ||
| PIMP12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 5.0 | ||
| PIEP12R48* Inserto PET |
6.5 | 0.33 | 8.0 | ||
| PIXP01250 Inserto PCF |
6.5 | 0.33 | 12 | ||
| PIHP01250 | 1.0 | ||||
| PITT01250 | 3.0 |
* Tri-soportes
| Nunc | Tamaño de poro (μm) | Área de cultivo (cm²) |
| 140620 | 0.4 | 0.47 |
| 140627 | 3.0 | 0.47 |
| 140629 | 8.0 | 0.47 |
| ThinCertTM | Material de la membrana | Tamaño de poro [µm] | Densidad de poros [cm-2] | Propiedades ópticas de la membrana | Tratamiento de superficie TC/Esterilizado | Placas Multiwell/ThinCertTM por caja |
| 662640 | PET | 0.4 | 1 x 108 | translúcido | +/+ | 2/48 |
| 662641 | PET | 0.4 | 2 x 106 | transparente | +/+ | 2/48 |
| 662610 | PET | 1.0 | 2 x 106 | transparente | +/+ | 2/48 |
| 662630 | PET | 3.0 | 0.6 x 106 | transparente | +/+ | 2/48 |
| 662631 | PET | 3.0 | 2 x 106 | translúcido | +/+ | 2/48 |
| 662638 | PET | 8.0 | 0.15 x 106 | translúcido | +/+ | 2/48 |
| Millicell | Tamaño de poro (μm) | Cantidad/paquete |
| MCHT24H48 | 0.4 | 48 |
| MCRP24H48 | 1.0 | 48 |
| MCSP24H48 | 3.0 | 48 |
| MCMP24H48 | 5.0 | 48 |
| MCEP24H48 | 8.0 | 48 |
| BD Falcon | Material de la membrana | Tamaño de poro [µm] | Densidad de poros [cm-2] | Propiedades ópticas de la membrana | Placa TC (#pozos) |
| 353095 | PET | 0.4 | 2.0 ± 0.2 x 106 | transparente | 24 |
| 353104 | PET | 1.0 | 1.6 ± 0.6 x 106 | transparente | 24 |
| 353096 | PET | 3.0 | 8 ± 2 x 105 | transparente | 24 |
| 353097 | PET | 8.0 | 6 ± 2 x 104 | translúcido | 24 |
| 353495 | PET | 0.4HD | 100 ± 10 x 106 | translúcido | 24 |
| 353492 | PET | 3.0HD | 2.0 ± 0.2 x 105 | translúcido | 24 |
Shaban, M. S., Müller, C., Mayr-Buro, C., Weiser, H., Meier-Soelch, J., Albert, B. V., … Kracht, M. (2021). Inhibición multinivel de la replicación del coronavirus mediante estrés químico del RE. Nature Communications 2021 12:1, 12(1), 1–20. https://doi.org/10.1038/s41467-021-25551-1
Robinot, R., Hubert, M., de Melo, G. D., Lazarini, F., Bruel, T., Smith, N., … Chakrabarti, L. A. (2021). La infección por SARS-CoV-2 induce la desdiferenciación de células multiciliadas y afecta la depuración mucociliar. Nature Communications 2021 12:1, 12(1), 1–16. https://doi.org/10.1038/s41467-021-24521-x
Pongkorpsakol, P., Turner, J. R., & Zuo, L. (2020). Cultivo de monocapas de células epiteliales intestinales y su uso en ensayos multiplex de permeabilidad macromolecular para el análisis in vitro de la selectividad del tamaño de las uniones estrechas. Current Protocols in Immunology, 131(1). https://doi.org/10.1002/cpim.112
Neal, E. H., Marinelli, N. A., Shi, Y., McClatchey, P. M., Balotin, K. M., Gullett, D. R., … Lippmann, E. S. (2019). Un esquema simplificado y completamente definido para la diferenciación de células endoteliales de la barrera hematoencefálica a partir de iPSCs humanas. Stem Cell Reports, 12(6), 1380–1388. https://doi.org/10.1016/J.STEMCR.2019.05.008
Hollmann, E. K., Bailey, A. K., Potharazu, A. V., Neely, M. D., Bowman, A. B., & Lippmann, E. S. (2017). Diferenciación acelerada de células madre pluripotentes inducidas humanas a células endoteliales de la barrera hematoencefálica. Fluids and Barriers of the CNS 2017 14:1, 14(1), 1–13. https://doi.org/10.1186/S12987-017-0059-0
Stanifer, M. L., Rippert, A., Kazakov, A., Willemsen, J., Bucher, D., Bender, S., … Boulant, S. (2016). Las partículas subvirales intermedias del reovirus constituyen una estrategia para infectar células epiteliales intestinales explotando la señalización pro-supervivencia dependiente de TGF-β. Cellular Microbiology, 18(12), 1831–1845. https://doi.org/10.1111/cmi.12626
Meenach, S. A., Tsoras, A. N., McGarry, R. C., Mansour, H. M., Hilt, J. Z., & Anderson, K. W. (2016). Desarrollo de esferoides multicelulares tridimensionales de pulmón en cultivo de interfaz aire-líquido para la evaluación de terapias anticancerígenas. International Journal of Oncology, 48(4), 1701–1709. https://doi.org/10.3892/ijo.2016.3376
Ferguson, M. C., Saul, S., Fragkoudis, R., Weisheit, S., Cox, J., Patabendige, A., … Fazakerley, J. K. (2015). La capacidad del arbovirus encefalítico Semliki Forest Virus para cruzar la barrera hematoencefálica está determinada por la carga de la glicoproteína E2. Journal of Virology, 89(15), 7536–7549. https://doi.org/10.1128/jvi.03645-14
Hollmann, E. K., Bailey, A. K., Potharazu, A. V., Neely, M. D., Bowman, A. B., & Lippmann, E. S. (2017). Diferenciación acelerada de células madre pluripotentes inducidas humanas a células endoteliales de la barrera hematoencefálica. Fluids and Barriers of the CNS 2017 14:1, 14(1), 1–13. https://doi.org/10.1186/S12987-017-0059-0
Neal, E. H., Marinelli, N. A., Shi, Y., McClatchey, P. M., Balotin, K. M., Gullett, D. R., … Lippmann, E. S. (2019). Un esquema simplificado y completamente definido para la diferenciación de células endoteliales de la barrera hematoencefálica a partir de iPSCs humanas. Stem Cell Reports, 12(6), 1380–1388. https://doi.org/10.1016/J.STEMCR.2019.05.008
Erami, Z., Timpson, P., Yao, W., Zaidel-Bar, R., & Anderson, K. I. (2015). Hay cuatro poblaciones dinámicas y funcionalmente distintas de E-cadherina en las uniones celulares. Biology Open, 4(11), 1481–1489. https://doi.org/10.1242/bio.014159
Tosoni, K., Cassidy, D., Kerr, B., Land, S. C., & Mehta, A. (2016). Uso de fármacos para investigar la variabilidad de la resistencia trans-epitelial de las vías respiratorias. PloS One, 11(2), e0149550. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0149550
Venter, J., Francis, H., Meng, F., DeMorrow, S., Kennedy, L., Standeford, H., … Alpini, G. (2015). Desarrollo y caracterización funcional de líneas de colangiocitos extrahepáticos de ratas normales. Digestive and Liver Disease : Official Journal of the Italian Society of Gastroenterology and the Italian Association for the Study of the Liver, 47(11), 964–972. https://doi.org/10.1016/j.dld.2015.07.012
Noh, S. Y., Kang, S.-S., Yun, C.-H., & Han, S. H. (2015). El ácido lipoteicoico de Lactobacillus plantarum inhibe la producción de IL-8 inducida por Pam2CSK4 en células epiteliales intestinales humanas. Molecular Immunology, 64(1), 183–189. https://doi.org/10.1016/j.molimm.2014.11.014
Wang, Y., & Alexander, J. S. (2011). Análisis de la función de la barrera endotelial in vitro. Methods in Molecular Biology, 763, 253–264. https://doi.org/10.1007/978-1-61779-191-8_17
Ghaffarian, R., & Muro, S. (2013). Modelos y métodos para evaluar el transporte de sistemas de administración de fármacos a través de barreras celulares. Journal of Visualized Experiments, (80), e50638–e50638. https://doi.org/10.3791/50638
Dickman, K. G., Hempson, S. J., Anderson, J., Lippe, S., Zhao, L., Burakoff, R., & Shaw, R. D. (s.f.). El rotavirus altera la permeabilidad paracelular y el metabolismo energético en células Caco-2.
Pham, V. T., Seifert, N., Richard, N., Raederstorff, D., Steinert, R., Prudence, K., & Mohajeri, M. H. (2018). Efectos de los productos de fermentación de fibras prebióticas sobre la barrera intestinal y funciones inmunitarias in vitro. PeerJ, 6, e5288. https://doi.org/10.7717/peerj.5288
Bu, HZ; Poglod, M; Micetich, RG; Khan, J. (2000). Evaluación de permeabilidad celular Caco-2 de alto rendimiento mediante dosificación en cassette y métodos de agrupación de muestras usando inyección directa/extracción en línea con cartucho de protección/espectrometría de masas en tándem. Recuperado el 15 de noviembre de 2016, de http://serials.unibo.it/cgi-ser/start/en/spogli/df-s.tcl?prog_art=7030068&language=ENGLISH&view=articoli
Roos, S., Wyder, M., Candi, A., Regenscheit, N., Nathues, C., van Immerseel, F., & Posthaus, H. (2015). Estudios de unión en mucosa intestinal delgada porcina aislada y estudios de toxicidad in vitro revelan la falta de efecto de la beta-toxina de C. perfringens en el epitelio intestinal porcino. Toxins, 7(4), 1235–1252. https://doi.org/10.3390/toxins7041235
Shang, V. C. M., Kendall, D. A., & Roberts, R. E. (2016). Δ9-Tetrahidrocannabinol revierte el aumento de la permeabilidad de las células epiteliales de las vías respiratorias inducido por TNFα a través de los receptores CB2. Biochemical Pharmacology, 120, 63–71. https://doi.org/10.1016/j.bcp.2016.09.008
Turdalieva, A., Solandt, J., Shambetova, N., Xu, H., Blom, H., Brismar, H., … Fu, Y. (2016). Respuesta bioeléctrica y morfológica del monocapa de células epiteliales humanas de las vías respiratorias Calu-3 cubiertas de líquido a la deposición periódica de puntos cuánticos de núcleo-multicapa CdSe-CdS/ZnS recubiertos con ácido 3-mercaptopropiónico coloidal. PloS One, 11(2), e0149915. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0149915
Utsumi, H., Chiba, H., Kamimura, Y., Osanai, M., Igarashi, Y., Tobioka, H., … Sawada, N. (2000). Expresión de GFRα-1, receptor para GDNF, en capilares cerebrales de rata durante el desarrollo postnatal de la BBB. American Journal of Physiology - Cell Physiology, 279(2).
Czupalla, C. J., Liebner, S., & Devraj, K. (2014). Modelos in vitro de la barrera hematoencefálica. Methods in Molecular Biology (Clifton, N.J.), 1135, 415–437. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-0320-7_34
Li, Y., Wu, W.-H., Hsu, C.-W., Nguyen, H. V, Tsai, Y.-T., Chan, L., … Tsang, S. H. (2014). Terapia génica en líneas celulares madre específicas de pacientes y un modelo preclínico de retinitis pigmentosa con defectos en la proteína relacionada con frizzled de membrana. Molecular Therapy : The Journal of the American Society of Gene Therapy, 22(9), 1688–1697. https://doi.org/10.1038/mt.2014.100
Xu, Q., Liu, J., Wang, Z., Guo, X., Zhou, G., Liu, Y., … Su, L. (2015). La disrupción de la función de la barrera endotelial inducida por estrés térmico es a través de la señalización PAR1 y es suprimida por la inyección de Xuebijing. PloS One, 10(2), e0118057. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0118057
Reichert, M., Müller, T., & Hunziker, W. (2000). Los dominios PDZ de zonula occludens-1 inducen una transición epitelial a mesenquimal en células Madin-Darby de riñón canino I. Evidencia de un papel de la señalización beta-catenina/Tcf/Lef. The Journal of Biological Chemistry, 275(13), 9492–9500. Recuperado de http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10734097
Laksitorini, M. D., Kiptoo, P. K., On, N. H., Thliveris, J. A., Miller, D. W., & Siahaan, T. J. (2015). Modulación de uniones intercelulares por péptidos cíclicos-ADT como método para aumentar reversible la permeabilidad de la barrera hematoencefálica. Journal of Pharmaceutical Sciences, 104(3), 1065–1075. https://doi.org/10.1002/jps.24309
Zhang, J., Field, C. J., Vine, D., & Chen, L. (2015). Captación intestinal y transporte de nanopartículas de proteína de soja cargadas con vitamina B12. Pharmaceutical Research, 32(4), 1288–1303. https://doi.org/10.1007/s11095-014-1533-x
Lippmann, E. S., Azarin, S. M., Kay, J. E., Nessler, R. A., Wilson, H. K., Al-Ahmad, A., … Shusta, E. V. (2012). Derivación de células endoteliales de la barrera hematoencefálica a partir de células madre pluripotentes humanas. Nature Biotechnology, 30(8), 783–791. https://doi.org/10.1038/nbt.2247
Alhamoruni, A., Lee, A. C., Wright, K. L., Larvin, M., & O’Sullivan, S. E. (2010). Efectos farmacológicos de los cannabinoides en el modelo de cultivo celular Caco-2 de permeabilidad intestinal. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics, 335(1).
Kauffman, A. L., Gyurdieva, A. V., Mabus, J. R., Ferguson, C., Yan, Z., & Hornby, P. J. (2013). Modelos funcionales alternativos in vitro de epitelios intestinales humanos. Frontiers in Pharmacology, 4, 79. https://doi.org/10.3389/fphar.2013.00079
Chen, L., Zhu, J., Li, Y., Lu, J., Gao, L., Xu, H., … Yang, X. (2013). Mejora en la administración mucosal nasal e inmunogenicidad de la vacuna de ADN anti-caries mediante la incorporación de liposomas aniónicos en complejos de quitosano/ADN. PloS One, 8(8), e71953. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0071953
Meenach, S. A., Tsoras, A. N., McGarry, R. C., Mansour, H. M., Hilt, J. Z., & Anderson, K. W. (2016). Desarrollo de esferoides multicelulares tridimensionales de pulmón en cultivo de interfaz aire-líquido para la evaluación de terapias anticancerígenas. International Journal of Oncology, 48(4), 1701–1709. https://doi.org/10.3892/ijo.2016.3376
Reaves, D. K., Fagan-Solis, K. D., Dunphy, K., Oliver, S. D., Scott, D. W., & Fleming, J. M. (2014). El papel del receptor de lipoproteínas estimulado por lipólisis en el cáncer de mama y en la dirección del comportamiento de las células de cáncer de mama. PloS One, 9(3), e91747. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0091747
Brown, J. A., Pensabene, V., Markov, D. A., Allwardt, V., Neely, M. D., Shi, M., … Wikswo, J. P. (2015). Recreando la fisiología y estructura de la barrera hematoencefálica en chip: un novedoso biorreactor microfluídico neurovascular. Biomicrofluidics, 9(5), 054124. https://doi.org/10.1063/1.4934713
Lei, Y., Stamer, W. D., Wu, J., & Sun, X. (2014). La senescencia celular redujo la sensibilidad de mecanotransducción de las células del plexo acuoso angular porcino a la elevación de la presión. Investigative Ophthalmology & Visual Science, 55(4), 2324–2328. https://doi.org/10.1167/iovs.13-13317
Torr, E., Heath, M., Mee, M., Shaw, D., Sharp, T. V, & Sayers, I. (2016). La expresión de la proteína policomb BMI-1 mantiene la plasticidad de las células epiteliales basales bronquiales. Physiological Reports, 4(16). https://doi.org/10.14814/phy2.12847
Lei, Y., Stamer, W. D., Wu, J., & Sun, X. (2013). Impacto del estrés oxidativo en la función de barrera de monocapas de células del plexo acuoso angular porcino. Investigative Ophthalmology & Visual Science, 54(7), 4827–4835. https://doi.org/10.1167/iovs.12-11435
Sheller, R. A., Cuevas, M. E., & Todd, M. C. (2017). Comparación de técnicas para medir la resistencia transepitelial: palillos vs. Endohm. Biological Procedures Online, 19, 4. https://doi.org/10.1186/s12575-017-0053-6
Melvin, J. A., Lashua, L. P., Kiedrowski, M. R., Yang, G., Deslouches, B., Montelaro, R. C., & Bomberger, J. M. (2016). Actividades simultáneas antibiofilm y antivirales de un péptido antimicrobiano diseñado durante la coinfección virus-bacteria. MSphere, 1(3). https://doi.org/10.1128/mSphere.00083-16
Campbell, L., Abulrob, A.-N. G., Kandalaft, L. E., Plummer, S., Hollins, A. J., Gibbs, A., & Gumbleton, M. (2003). Expresión constitutiva de P-Glicoproteína en epitelio alveolar pulmonar normal y funcionalidad en cultivos primarios de epitelio alveolar. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics, 304(1).
Richter, J. F., Schmauder, R., Krug, S. M., Gebert, A., & Schumann, M. (2016). Un método novedoso para la imagen de sitios de paso paracelular de macromoléculas en láminas epiteliales. Journal of Controlled Release, 229, 70–79. https://doi.org/10.1016/j.jconrel.2016.03.018
Meenach, S. A., Anderson, K. W., Hilt, J. Z., McGarry, R. C., Mansour, H. M., Samantha A. Meenach, Kimberly W. Anderson, J. Zach Hilt, Ronald C. McGarry, H. M. M., … Mansour, H. M. (2014, 20 de diciembre). Inhaladores de polvo seco de alto rendimiento con partículas multifuncionales que imitan el surfactante pulmonar DPPC/DPPG de paclitaxel en cáncer de pulmón: caracterización fisicoquímica, dispersión de aerosol in vitro y estudios celulares. https://doi.org/10.1208/s12249-014-0182-z
Schexnayder, C., & Stratford, R. E. (2015). Efectos de genisteína y glicéollin sobre ABCC2 (MRP2) y ABCG2 (BCRP) en células Caco-2. International Journal of Environmental Research and Public Health, 13(1), ijerph13010017. https://doi.org/10.3390/ijerph13010017
Pongkorpsakol, P., Turner, J. R., & Zuo, L. (2020). Cultivo de monocapas de células epiteliales intestinales y su uso en ensayos multiplex de permeabilidad macromolecular para el análisis in vitro de la selectividad del tamaño de las uniones estrechas. Current Protocols in Immunology, 131(1). https://doi.org/10.1002/cpim.112
Grover, A., Hirani, A., Pathak, Y., & Sutariya, V. (2014). Administración dirigida al cerebro de docetaxel mediante nanopartículas recubiertas con glutatión para cáncer cerebral. AAPS PharmSciTech, 15(6), 1562–1568. https://doi.org/10.1208/s12249-014-0165-0
Meerveld, G.-V. B., R, T. K., 文 タ イ ト ル和, & vitro の ラ ッ ト 空 腸 お よ び 結 腸 に お け る 木 ク レ オ ソ - ト お よ び ロ ペ ラ ミ ド の 止 瀉 効 果 の 比 較, I. (2000). Comparación de los efectos antidiarreicos del creosoto de madera y loperamida en el yeyuno y colon de rata in vitro. Biol Pharm Bull, 23, 952–956.
Pongkorpsakol, P., Pathomthongtaweechai, N., Srimanote, P., Soodvilai, S., Chatsudthipong, V., & Muanprasat, C. (2014). Inhibición de la secreción intestinal de cloruro activada por cAMP por diclofenaco: mecanismo celular y aplicación potencial en el cólera. PLoS Neglected Tropical Diseases, 8(9), e3119. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0003119
Li, G., Li, T., Li, Y., Cai, S., Zhang, Z., Zeng, Z., … Chen, Z. (2014). Ulinastatina inhibe la hiperpermeabilidad endotelial inducida por oxidantes y la señalización apoptótica. International Journal of Clinical and Experimental Pathology, 7(11), 7342–7350. Recuperado de http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25550770
Wise, S. K., Laury, A. M., Katz, E. H., Den Beste, K. A., Parkos, C. A., & Nusrat, A. (2014). La interleucina-4 y la interleucina-13 comprometen la barrera epitelial sinonasal y alteran la expresión de proteínas de las uniones intercelulares. International Forum of Allergy & Rhinology, 4(5), 361–370. https://doi.org/10.1002/alr.21298
Blenkinsop, T. A., Saini, J. S., Maminishkis, A., Bharti, K., Wan, Q., Banzon, T., … Stern, J. H. (2015). Monocapas derivadas de células madre del epitelio pigmentario retinal humano adulto exhiben características fisiológicas clave del tejido nativo. Investigative Ophthalmology & Visual Science, 56(12), 7085–7099. https://doi.org/10.1167/iovs.14-16246
Park, S. W., Kim, J. H., Park, S. M., Moon, M., Lee, K. H., Park, K. H., … Kim, J. H. (2015). La captación intracelular de Aβ mediada por RAGE contribuye a la ruptura de la unión estrecha en el epitelio pigmentario de la retina. Oncotarget, 6(34), 35263–35273. https://doi.org/10.18632/oncotarget.5894
Saeedi, B. J., Kao, D. J., Kitzenberg, D. A., Dobrinskikh, E., Schwisow, K. D., Masterson, J. C., … Glover, L. E. (2015). La regulación dependiente de HIF de claudina-1 es fundamental para la integridad de las uniones estrechas del epitelio intestinal. Molecular Biology of the Cell, 26(12), 2252–2262. https://doi.org/10.1091/mbc.E14-07-1194
Fossum, S. L., Mutolo, M. J., Yang, R., Dang, H., O’Neal, W. K., Knowles, M. R., … Harris, A. (2014). El factor homólogo Ets regula las vías que controlan la respuesta a lesiones en células epiteliales de las vías respiratorias. Nucleic Acids Research, 42(22), 13588–13598. https://doi.org/10.1093/nar/gku1146
Cao, X., Lin, H., Muskhelishvili, L., Latendresse, J., Richter, P., Heflich, R. H., … Browning, M. (2015). Disrupción de uniones estrechas por cadmio en un modelo in vitro de tejido de vías respiratorias humanas, 16(1), 30. https://doi.org/10.1186/s12931-015-0191-9
Booth, R., & Kim, H. (2014). Análisis de permeabilidad de fármacos neuroactivos a través de un modelo dinámico microfluídico in vitro de la barrera hematoencefálica. Anales de Ingeniería Biomédica, 42(12), 2379–2391. https://doi.org/10.1007/s10439-014-1086-5
Mooren, O. L., Kim, J., Li, J., & Cooper, J. A. (2015). Papel de N-WASP en la formación y la integridad del monocapa endotelial. Revista de Química Biológica, 290(30), 18796–18805. https://doi.org/10.1074/jbc.M115.668285
Bernocchi, B., Carpentier, R., Lantier, I., Ducournau, C., Dimier-Poisson, I., & Betbeder, D. (2016). Mecanismos que permiten la entrega de proteínas en la mucosa nasal usando nanopartículas NPL. Revista de Liberación Controlada: Revista Oficial de la Sociedad de Liberación Controlada, 232, 42–50. https://doi.org/10.1016/j.jconrel.2016.04.014
Byeon, H. J., Thao, L. Q., Lee, S., Min, S. Y., Lee, E. S., Shin, B. S., … Youn, Y. S. (2016). Nanopartículas cargadas con doxorrubicina consistentes en albúminas catiónicas y modificadas con manosa para doble objetivo en tumores cerebrales. Revista de Liberación Controlada, 225, 301–313. https://doi.org/10.1016/j.jconrel.2016.01.046
Crane, J. K., Broome, J. E., Reddinger, R. M., & Werth, B. B. (2014). El zinc protege contra Escherichia coli productora de toxina Shiga actuando tanto en los tejidos del huésped como en las bacterias. BMC Microbiología, 14, 145. https://doi.org/10.1186/1471-2180-14-145
Ahmed, C. M., Biswal, M. R., Li, H., Han, P., Ildefonso, C. J., & Lewin, A. S. (2016). Reutilización de un fármaco disponible por vía oral para el tratamiento de la atrofia geográfica. Visión Molecular, 22, 294–310. Recuperado de http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27110092
Cieza, R. J., Hu, J., Ross, B. N., Sbrana, E., & Torres, A. G. (2015). La invasina IbeA de Escherichia coli adherente-invasiva media la interacción con epitelios intestinales y macrófagos. Infección e Inmunidad, 83(5), 1904–1918. https://doi.org/10.1128/IAI.03003-14
Leir, S.-H., Browne, J. A., Eggener, S. E., & Harris, A. (2015). Caracterización de cultivos primarios de células epiteliales del epidídimo humano adulto. Fertility and Sterility, 103(3), 647-54.e1. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2014.11.022
Wise, S. K., Laury, A. M., Katz, E. H., Den Beste, K. A., Parkos, C. A., & Nusrat, A. (2014). La interleucina-4 y la interleucina-13 comprometen la barrera epitelial sinonasal y alteran la expresión de proteínas de las uniones intercelulares. International Forum of Allergy & Rhinology, 4(5), 361–370. https://doi.org/10.1002/alr.21298
Ferguson, M. C., Saul, S., Fragkoudis, R., Weisheit, S., Cox, J., Patabendige, A., … Fazakerley, J. K. (2015). La capacidad del arbovirus encefalítico Semliki Forest Virus para cruzar la barrera hematoencefálica está determinada por la carga de la glicoproteína E2. Journal of Virology, 89(15), 7536–7549. https://doi.org/10.1128/JVI.03645-14
Ross, B. N., Rojas-Lopez, M., Cieza, R. J., McWilliams, B. D., & Torres, A. G. (2015). El papel de las fimbrias polares largas en la adhesión y colonización de Escherichia coli O104:H4. PLOS ONE, 10(10), e0141845. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0141845
Kuehn, D., Majeed, S., Guedj, E., Dulize, R., Baumer, K., Iskandar, A., … Peitsch, M. C. (2015). Evaluación del impacto de la exposición repetida a humo completo de cigarrillo en modelos de cultivo tisular organotípico 3D de bronquios y nariz. Journal of Visualized Experiments, (96), e52325–e52325. https://doi.org/10.3791/52325
Castro, R., Barlow-Walden, L., Woodson, T., Kerecman, J. D., Zhang, G. H., & Martinez, J. R. (2000). Transporte iónico en una línea celular inmortalizada de submandibular de rata SMG-C6. Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine. Society for Experimental Biology and Medicine (New York, N.Y.), 225(1), 39–48. https://doi.org/10.1046/J.1525-1373.2000.22505.X
Pastor-Clerigues, A., Serrano, A., Milara, J., Marti-Bonmati, E., Lopez-Perez, F. J., Garcia-Montanes, S., … Cortijo, J. (2016). Evaluación de la tolerancia ocular de tres preparaciones farmacéuticas tópicas de tacrolimus mediante la prueba de opacidad y permeabilidad corneal bovina. Current Eye Research, 41(7), 890–896. https://doi.org/10.3109/02713683.2015.1082187
Mishra, R., & Singh, S. K. (2014). La fosforilación de HIV-1 Tat C del complejo VE-cadherina aumenta la permeabilidad de las células endoteliales microvasculares cerebrales humanas. BMC Neuroscience, 15, 80. https://doi.org/10.1186/1471-2202-15-80
Guzman-Aranguez, A., Calvo, P., Ropero, I., & Pintor, J. (2014). Efectos in vitro de fármacos antialérgicos preservados y no preservados en células epiteliales corneales humanas. Journal of Ocular Pharmacology and Therapeutics : The Official Journal of the Association for Ocular Pharmacology and Therapeutics, 30(9), 790–798. https://doi.org/10.1089/jop.2014.0030
Odijk, M., van der Meer, A. D., Levner, D., Kim, H. J., van der Helm, M. W., Segerink, L. I., … van den Berg, A. (2015). Medición de la resistencia eléctrica trans-epitelial de corriente continua en microsistemas organ-on-a-chip. Lab on a Chip, 15(3), 745–752. https://doi.org/10.1039/c4lc01219d
Mansourpour, M., Mahjub, R., Amini, M., Ostad, S. N., Shamsa, E. S., Rafiee-Tehrani, M., & Dorkoosh, F. A. (2015). Desarrollo de nanopartículas de alginato/trimetil quitosano resistentes al ácido que contienen polímeros catiónicos de β-ciclodextrina para la administración oral de insulina. AAPS PharmSciTech, 16(4), 952–962. https://doi.org/10.1208/s12249-014-0282-9
Sjöqvist, S., Jungebluth, P., Lim, M. L., Haag, J. C., Gustafsson, Y., Lemon, G., … Macchiarini, P. (2014). Trasplante ortotópico experimental de un esófago bioingenierizado en ratas. Nature Communications, 5, 3562. https://doi.org/10.1038/ncomms4562
Roh-Johnson, M., Bravo-Cordero, J. J., Patsialou, A., Sharma, V. P., Guo, P., Liu, H., … Condeelis, J. (2014). El contacto con macrófagos induce la señalización de la GTPasa RhoA para desencadenar la intravasación de células tumorales. Oncogene, 33(33), 4203–4212. https://doi.org/10.1038/onc.2013.377
Senyavina, N. V., & Tonevitskaya, S. A. (2015). Efecto de la hipoxantina en la actividad funcional de los transportadores de nucleósidos ENT1 y ENT2 en células epiteliales intestinales polares Caco-2. Bulletin of Experimental Biology and Medicine, 160(1), 160–164. https://doi.org/10.1007/s10517-015-3118-z
Khan, N., Pantakani, D. V. K., Binder, L., Qasim, M., & Asif, A. R. (2015). El inmunosupresor MPA modula la unión estrecha mediante la activación epigenética de la vía MLCK/MLC-2 a través de p38MAPK. Frontiers in Physiology, 6, 381. https://doi.org/10.3389/fphys.2015.00381
Couturier, J., Hutchison, A. T., Medina, M. A., Gingaras, C., Urvil, P., Yu, X., … Lewis, D. E. (2014). Replicación del VIH junto con producción de granzima B por células T CD4 de memoria CCR5+: implicaciones para patologías de células y tejidos vecinos. Virología, 462–463, 175–188. https://doi.org/10.1016/j.virol.2014.06.008
Biswal, M. R., Ahmed, C. M., Ildefonso, C. J., Han, P., Li, H., Jivanji, H., … Lewin, A. S. (2015). Tratamiento sistémico con un agonista 5HT1a induce protección antioxidante y preserva la retina del estrés oxidativo mitocondrial. Investigación Experimental Ocular, 140, 94–105. https://doi.org/10.1016/j.exer.2015.07.022
Netsomboon, K., Laffleur, F., & Bernkop-Schnürch, A. (2016). Inhibidores de la P-glicoproteína: síntesis y evaluación in vitro de un tiomer preactivado. Desarrollo de Medicamentos y Farmacia Industrial, 42(4), 668–675. https://doi.org/10.3109/03639045.2015.1075025
Lewis, S. B., Cook, V., Tighe, R., & Schüller, S. (2015). Colonización de Escherichia coli enterohemorrágica en epitelio colónico humano in vitro y ex vivo. Infección e Inmunidad, 83(3), 942–949. https://doi.org/10.1128/IAI.02928-14
Yan, Y., Shapiro, A. P., Mopidevi, B. R., Chaudhry, M. A., Maxwell, K., Haller, S. T., … Liu, J. (2016). Carbonilación de proteínas en un residuo de aminoácido de la subunidad α1 de la Na/K-ATPasa determina la señalización de Na/K-ATPasa y el transporte de sodio en células tubulares proximales renales. Revista de la Asociación Americana del Corazón, 5(9). https://doi.org/10.1161/JAHA.116.003675
Wang, G., Zabner, J., Deering, C., Launspach, J., Shao, J., Bodner, M., … McCray, P. B. (2000). Aumento de la permeabilidad de las uniones epiteliales mejora la transferencia génica a epitelios de las vías respiratorias in vivo. Revista Americana de Biología Celular y Molecular Respiratoria, 22(2), 129–138. https://doi.org/10.1165/ajrcmb.22.2.3938
Zaccone, E. J., Goldsmith, W. T., Shimko, M. J., Wells, J. R., Schwegler-Berry, D., Willard, P. A., … Fedan, J. S. (2015). Exposición a diacetilo y 2,3-pentanodiona de células epiteliales de las vías respiratorias humanas cultivadas: efectos en el transporte iónico y metabolismo de agentes aromatizantes de mantequilla. Toxicología y Farmacología Aplicada, 289(3), 542–549. https://doi.org/10.1016/j.taap.2015.10.004
Czupalla, C. J., Liebner, S., & Devraj, K. (2014). Modelos in vitro de la barrera hematoencefálica (pp. 415–437). https://doi.org/10.1007/978-1-4939-0320-7_34
Sei, Y. J., Ahn, S. I., Virtue, T., Kim, T., & Kim, Y. (2017). Detección de la respuesta endotelial dependiente de la frecuencia al esfuerzo cortante oscilatorio usando un monitor transcelular microfluídico. Scientific Reports, 7(1), 10019. https://doi.org/10.1038/s41598-017-10636-z
Inglis, V. I., Jones, M. P. J., Tse, A. D. Y., & Easton, A. S. (2004). Los neutrófilos tanto reducen como aumentan la permeabilidad en un modelo de cultivo celular de la barrera hematoencefálica. Brain Research, 998(2), 218–229. https://doi.org/10.1016/J.BRAINRES.2003.11.031
Xing, F., Sharma, S., Liu, Y., Mo, Y.-Y., Wu, K., Zhang, Y.-Y., … Watabe, K. (2015). miR-509 suprime la metástasis cerebral de células de cáncer de mama modulando RhoC y TNF-α. Oncogene, 34(37), 4890–4900. https://doi.org/10.1038/onc.2014.412
Booth, R., & Kim, H. (2012). Caracterización de un modelo microfluídico in vitro de la barrera hematoencefálica (μBBB). Lab on a Chip, 12(10), 1784. https://doi.org/10.1039/c2lc40094d
Srinivasan, B., Kolli, A. R., Esch, M. B., Abaci, H. E., Shuler, M. L., & Hickman, J. J. (2015). Técnicas de medición TEER para sistemas modelo de barrera in vitro. Journal of Laboratory Automation, 20(2), 107–126. https://doi.org/10.1177/2211068214561025
S. Jayaraman, Y. Song, L.Vetrivel, L.Shankar, A. S. V. (2001). Medición no invasiva in vivo de fluorescencia para la profundidad del líquido en la superficie de las vías respiratorias, concentración de sal y pH. The Journal of Clinical Investigation, 107(3), 317. https://doi.org/10.1172/JCI11154
Chen, S., Einspanier, R., & Schoen, J. (2015). Resistencia eléctrica transepitelial (TEER): un parámetro funcional para monitorear la calidad de células epiteliales del oviducto cultivadas en soportes filtrantes. Histochemistry and Cell Biology, 144(5), 509–515. https://doi.org/10.1007/s00418-015-1351-1
Yu, J., Li, N., Lin, P., Li, Y., Mao, X., Bao, G., … Zhao, R. (2014). Transportes intestinales de las principales composiciones químicas de polygoni multiflori radix en el modelo celular caco-2. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine : ECAM, 2014, 483641. https://doi.org/10.1155/2014/483641
Pothoven, K. L., Norton, J. E., Hulse, K. E., Suh, L. A., Carter, R. G., Rocci, E., … Schleimer, R. P. (2015). Oncostatina M promueve la disfunción de la barrera epitelial mucosa, y su expresión está aumentada en pacientes con enfermedad mucosa eosinofílica. The Journal of Allergy and Clinical Immunology, 136(3), 737-746.e4. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2015.01.043
Williams, K. M., Gokulan, K., Cerniglia, C. E., & Khare, S. (2016). Efectos dependientes del tamaño y la dosis de la exposición a nanopartículas de plata sobre la permeabilidad intestinal en un modelo in vitro del epitelio intestinal humano. Journal of Nanobiotechnology, 14(1), 62. https://doi.org/10.1186/s12951-016-0214-9
Johnson, L. G., Olsen, J. C., Naldini, L., & Boucher, R. C. (2000). Transferencia génica mediada por vector lentiviral humano seudotipado a epitelios de las vías respiratorias in vivo. Gene Therapy, 7(7), 568–574. https://doi.org/10.1038/sj.gt.3301138
Li, Q., Chen, B., Zeng, C., Fan, A., Yuan, Y., Guo, X., … Huang, Q. (2015). Activación diferencial de receptores y vías de señalización tras la estimulación con diferentes dosis de esfingosina-1-fosfato en células endoteliales. Experimental Physiology, 100(1), 95–107. https://doi.org/10.1113/expphysiol.2014.082149
Busch, C., Hofmann, F., Gerhard, R., & Aktories, K. (2000). Participación de un residuo conservado de triptófano en la unión de UDP-glucosa de las glucosiltransferasas de citotoxinas clostridiales grandes. The Journal of Biological Chemistry, 275(18), 13228–13234. https://doi.org/10.1074/JBC.275.18.13228
Healy, L. L., Cronin, J. G., & Sheldon, I. M. (2015). Las células epiteliales polarizadas secretan interleucina 6 apicalmente en el endometrio bovino1. Biology of Reproduction, 92(6), 151. https://doi.org/10.1095/biolreprod.115.127936
Enjoji, S., Ohama, T., & Sato, K. (2014). Regulación de las uniones estrechas de células epiteliales por el receptor activado por proteasa 2. The Journal of Veterinary Medical Science, 76(9), 1225–1229. https://doi.org/10.1292/jvms.14-0191
Maherally, Z., Fillmore, H. L., Tan, S. L., Tan, S. F., Jassam, S. A., Quack, F. I., … Pilkington, G. J. (2018). Adquisición en tiempo real de la resistencia eléctrica transendotelial en un modelo humano in vitro tridimensional de la barrera hematoencefálica que ejemplifica la integridad de las uniones estrechas. The FASEB Journal, 32(1), 168–182. https://doi.org/10.1096/fj.201700162R
Blaisdell, C. J., Edmonds, R. D., Wang, X. T., Guggino, S., & Zeitlin, P. L. (2000). Secreción de cloruro regulada por pH en epitelios pulmonares fetales. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology, 278(6), L1248-55. Recuperado de http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10835331
Di, S., Gujie, M., & Thomas, W. (2016). Ferri-liposomas magnéticos para la liberación controlada de fármacos a través de la barrera hematoencefálica. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology, 4. https://doi.org/10.3389/conf.FBIOE.2016.01.00061
Costello, C. M., Hongpeng, J., Shaffiey, S., Yu, J., Jain, N. K., Hackam, D., & March, J. C. (2014). Andamios sintéticos de intestino delgado para mejorar los estudios de diferenciación intestinal. Biotechnology and Bioengineering, 111(6), 1222–1232. https://doi.org/10.1002/bit.25180
Molenda, N., Urbanova, K., Weiser, N., Kusche-Vihrog, K., Günzel, D., Schillers, H., … Howell, S. (2014). Transporte paracelular a través de líneas celulares epiteliales bronquiales sanas y con fibrosis quística – ¿Tenemos un modelo adecuado? PLoS ONE, 9(6), e100621. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0100621
Costello, C. M., Sorna, R. M., Goh, Y.-L., Cengic, I., Jain, N. K., & March, J. C. (2014). Andamios intestinales 3-D para evaluar el potencial terapéutico de probióticos. Molecular Pharmaceutics, 11(7), 2030–2039. https://doi.org/10.1021/mp5001422
Iacovelli, J., Rowe, G. C., Khadka, A., Diaz-Aguilar, D., Spencer, C., Arany, Z., & Saint-Geniez, M. (2016). PGC-1α induce el metabolismo oxidativo y la capacidad antioxidante del epitelio pigmentario de la retina humano. Investigative Ophthalmology & Visual Science, 57(3), 1038–1051. https://doi.org/10.1167/iovs.15-17758
Bartakova, A., Alvarez-Delfin, K., Weisman, A. D., Salero, E., Raffa, G. A., Merkhofer, R. M., … Goldberg, J. L. (2016). Nuevos marcadores de identidad y funcionales para células endoteliales corneales humanas. Investigative Ophthalmology & Visual Science, 57(6), 2749–2762. https://doi.org/10.1167/iovs.15-18826
Srimanee, A., Regberg, J., Hällbrink, M., Vajragupta, O., & Langel, Ü. (2016). Papel de los receptores scavenger en la entrega basada en péptidos de ADN plasmídico a través de un modelo de barrera hematoencefálica. International Journal of Pharmaceutics, 500(1–2), 128–135. https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2016.01.014
Garate, M. A., & Nunez, M. T. (2000). La sobreexpresión del elemento sensible al hierro de la ferritina disminuye el pool de hierro lábil y anula la regulación de la absorción de hierro por células epiteliales intestinales (Caco-2). Journal of Biological Chemistry, 275(3), 1651–1655. https://doi.org/10.1074/jbc.275.3.1651
Yang, J. J., Kim, K. J., & Lee, V. H. (2000). Papel de la P-glucoproteína en la restricción del transporte de propranolol en capas de células epiteliales conjuntivales de conejo cultivadas. Pharmaceutical Research, 17(5), 533–538. Recuperado de http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10888304
Zhang, J., Ni, C., Yang, Z., Piontek, A., Chen, H., Wang, S., … Piontek, J. (2015). Unión específica del fragmento de enterotoxina de Clostridium perfringens a Claudin-b y modulación de la barrera epidérmica en pez cebra. Experimental Dermatology, 24(8), 605–610. https://doi.org/10.1111/exd.12728
Lewis, S. B., Prior, A., Ellis, S. J., Cook, V., Chan, S. S. M., Gelson, W., & Schüller, S. (2016). La flagelina induce β-defensina 2 en infección ex vivo del colon humano con Escherichia coli enterohemorrágica. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology, 6, 68. https://doi.org/10.3389/fcimb.2016.00068
Marvin, S. A., Huerta, C. T., Sharp, B., Freiden, P., Cline, T. D., & Schultz-Cherry, S. (2016). La respuesta de interferón tipo I limita la replicación del astrovirus y protege contra el aumento de la permeabilidad de la barrera in vitro y in vivo. Journal of Virology, 90(4), 1988–1996. https://doi.org/10.1128/JVI.02367-15
Shirasawa, M., Sonoda, S., Terasaki, H., Arimura, N., Otsuka, H., Yamashita, T., … Sakamoto, T. (2013). El TNF-α altera las propiedades morfológicas y funcionales de la barrera del epitelio pigmentario de la retina polarizado. Experimental Eye Research, 110, 59–69. https://doi.org/10.1016/j.exer.2013.02.012
Prewitt, A. R., Ghose, S., Frump, A. L., Datta, A., Austin, E. D., Kenworthy, A. K., & de Caestecker, M. P. (2015). Las mutaciones heterocigotas nulas del receptor tipo 2 de la proteína morfogenética ósea promueven defectos de tráfico caveolar dependientes de la quinasa SRC y disfunción endotelial en la hipertensión arterial pulmonar. The Journal of Biological Chemistry, 290(2), 960–971. https://doi.org/10.1074/jbc.M114.591057
Loma, P., Guzman-Aranguez, A., Pérez de Lara, M. J., & Pintor, J. (2015). La diadenosina tetrafosfato induce el desensamblaje de uniones estrechas aumentando así la permeabilidad del epitelio corneal. British Journal of Pharmacology, 172(4), 1045–1058. https://doi.org/10.1111/bph.12972
De Chiara, L., Fagoonee, S., Ranghino, A., Bruno, S., Camussi, G., Tolosano, E., … Altruda, F. (2014). Células renales derivadas de células madre germinales espermatogoniales protegen contra lesiones renales. Journal of the American Society of Nephrology : JASN, 25(2), 316–328. https://doi.org/10.1681/ASN.2013040367
Sawai, T., Usui, N., Dwaihy, J., Drongowski, R. A., Abe, A., Coran, A. G., & Harmon, C. M. (n.d.). El efecto de la fosfolipasa A2 en la translocación bacteriana en un modelo de cultivo celular. Pediatric Surgery International, 16(4), 262–266. https://doi.org/10.1007/S003830050741
Ao, M., Sarathy, J., Domingue, J., Alrefai, W. A., & Rao, M. C. (2013). El ácido chenodesoxicólico estimula la secreción de Cl(-) mediante señalización cAMP y aumenta la fosforilación del regulador de conductancia transmembrana de la fibrosis quística en células T84. American Journal of Physiology. Cell Physiology, 305(4), C447-56. https://doi.org/10.1152/ajpcell.00416.2012
Gipson, I. K., Spurr-Michaud, S., Tisdale, A., & Menon, B. B. (2014). Comparación de las mucinas transmembrana MUC1 y MUC16 en la función de barrera epitelial. PloS One, 9(6), e100393. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0100393
Othman, R., E Morris, G., Shah, D. A., Hall, S., Hall, G., Wells, K., … Dixon, J. E. (2015). Una estrategia automatizada de fabricación para crear arquitecturas tubulares con patrones a escala celular y tisular. Biofabricación, 7(2), 025003. https://doi.org/10.1088/1758-5090/7/2/025003
Al-Ghoul, W. M., Kim, M. S., Fazal, N., Azim, A. C., & Ali, A. (2014). Evidencia de las acciones antiinflamatorias de la simvastatina basadas en análisis cuantitativos de NETosis y otros marcadores de inflamación/oxidación. Resultados en Inmunología, 4, 14–22. https://doi.org/10.1016/j.rinim.2014.03.001
Katz, J., Sambandam, V., Wu, J. H., Michalek, S. M., & Balkovetz, D. F. (2000). Caracterización de la degradación inducida por Porphyromonas gingivalis de los complejos de unión celular epitelial. Infección e Inmunidad, 68(3), 1441–1449. https://doi.org/10.1128/IAI.68.3.1441-1449.2000
Tsata, V., Velegraki, A., Ioannidis, A., Poulopoulou, C., Bagos, P., Magana, M., & Chatzipanagiotou, S. (2016). Efectos de levaduras y comensales bacterianos y patógenos del tracto genital femenino sobre la resistencia eléctrica transepitelial de células HeLa. The Open Microbiology Journal, 10, 90–96. https://doi.org/10.2174/1874285801610010090
Bohara, M., Kambe, Y., Nagayama, T., Tokimura, H., Arita, K., & Miyata, A. (2014). El péptido natriurético tipo C modula la permeabilidad de la barrera hematoencefálica. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism : Official Journal of the International Society of Cerebral Blood Flow and Metabolism, 34(4), 589–596. https://doi.org/10.1038/jcbfm.2013.234
Pacifico, A., Garnet, A., & Reed, K. (2015). Medición de cambios en la biodisponibilidad de la artemisinina. Major Qualifying Projects (All Years). Recuperado de https://digitalcommons.wpi.edu/mqp-all/229
Gu, M. J., Song, S. K., Lee, I. K., Ko, S., Han, S. E., Bae, S., … Yun, C.-H. (2016). Protección de la barrera a través de la señalización del receptor Toll-like 2 en células epiteliales intestinales porcinas dañadas por deoxinivalenol. Veterinary Research, 47, 25. https://doi.org/10.1186/s13567-016-0309-1
Keenan, C. R., Mok, J. S., Harris, T., Xia, Y., Salem, S., & Stewart, A. G. (2014). Las células epiteliales bronquiales se vuelven insensibles a la transactivación por glucocorticoides debido al factor de crecimiento transformante-β1. Respiratory Research, 15(1), 55. https://doi.org/10.1186/1465-9921-15-55
Schneditz, G., Rentner, J., Roier, S., Pletz, J., Herzog, K. A. T., Bücker, R., … Zechner, E. L. (2014). Enterotoxicidad de un péptido no ribosomal causa colitis asociada a antibióticos. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 111(36), 13181–13186. https://doi.org/10.1073/pnas.1403274111
Sun, H., Harris, W. T., Kortyka, S., Kotha, K., Ostmann, A. J., Rezayat, A., … Clancy, J. P. (2014). Regulación a la baja de Tgf-beta de canales de cloruro distintos en epitelios afectados por fibrosis quística. PloS One, 9(9), e106842. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0106842
Ali, M. H., Schlidt, S. A., Chandel, N. S., Hynes, K. L., Schumacker, P. T., & Gewertz, B. L. (1999). Permeabilidad endotelial y producción de IL-6 durante la hipoxia: papel de los ROS en la transducción de señales. The American Journal of Physiology, 277(5 Pt 1), L1057-65. Recuperado de http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10564193
Lea, T. (2015). Modelos de células epiteliales; Introducción general. En El impacto de los bioactivos alimentarios en la salud (pp. 95–102). Cham: Springer International Publishing. https://doi.org/10.1007/978-3-319-16104-4_9
Lever, A. R., Park, H., Mulhern, T. J., Jackson, G. R., Comolli, J. C., Borenstein, J. T., … Prantil-Baun, R. (2015). Evaluación integral de la respuesta inflamatoria inducida por poly(I:C) en un modelo de epitelio de las vías respiratorias. Physiological Reports, 3(4). https://doi.org/10.14814/phy2.12334
Hellinger, É., Bakk, M. L., Pócza, P., Tihanyi, K., & Vastag, M. (2010). Modelo de penetración de fármaco en cultivos de Caco-2 tratados con vinblastina. European Journal of Pharmaceutical Sciences, 41(1), 96–106. https://doi.org/10.1016/j.ejps.2010.05.015
Hirano, M., & Hirano, K. (2016). Difenilación de miosina y formación de haces periféricos de actina como eventos iniciales durante la disrupción de la barrera endotelial. Scientific Reports, 6(1), 20989. https://doi.org/10.1038/srep20989
Schexnayder, C., & Stratford, R. E. (2015). Efectos de genisteína y glicéollin sobre ABCC2 (MRP2) y ABCG2 (BCRP) en células Caco-2. International Journal of Environmental Research and Public Health, 13(1), ijerph13010017. https://doi.org/10.3390/ijerph13010017
Liu, D.-Z., Lecluyse, E. L., & Thakker, D. R. (1999). Mejora mediada por dodecilfosfocolina de la permeabilidad paracelular y citotoxicidad en monocapas de células Caco-2. Journal of Pharmaceutical Sciences, 88(11), 1161–1168. https://doi.org/10.1021/js990094e
Travanty, E., Zhou, B., Zhang, H., Di, Y. P., Alcorn, J. F., Wentworth, D. E., … Wang, J. (2015). Susceptibilidades diferenciales de células primarias humanas del pulmón a virus de influenza H1N1. Journal of Virology, 89(23), 11935–11944. https://doi.org/10.1128/JVI.01792-15
Igarashi, Y., Utsumi, H., Chiba, H., Yamada-Sasamori, Y., Tobioka, H., Kamimura, Y., … Sawada, N. (1999). El factor neurotrófico derivado de la línea celular glial induce la función de barrera de las células endoteliales que forman la barrera hematoencefálica. Biochemical and Biophysical Research Communications, 261(1), 108–112. https://doi.org/10.1006/bbrc.1999.0992
Enjoji, S., Ohama, T., & Sato, K. (2014). Regulación de las uniones estrechas de células epiteliales por el receptor activado por proteasa 2. The Journal of Veterinary Medical Science, 76(9), 1225–1229. Recuperado de http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24881651
Stanifer, M. L., Rippert, A., Kazakov, A., Willemsen, J., Bucher, D., Bender, S., … Boulant, S. (2016). Las partículas subvirales intermedias del reovirus constituyen una estrategia para infectar células epiteliales intestinales explotando la señalización pro-supervivencia dependiente de TGF-β. Cellular Microbiology, 18(12), 1831–1845. https://doi.org/10.1111/cmi.12626
Elbakary, B., & Badhan, R. K. S. (2020). Un modelo dinámico de perfusión de la barrera hematoencefálica para pruebas de citotoxicidad y permeación de fármacos. Scientific Reports, 10(1), 3788. https://doi.org/10.1038/s41598-020-60689-w
Takakuwa, R., Kokai, Y., Kojima, T., Akatsuka, T., Tobioka, H., Sawada, N., & Mori, M. (2000). Desacoplamiento de las funciones de puerta y cerca de las células MDCK por el reactivo despolimerizador de actina Mycalolide B. Experimental Cell Research, 257(2), 238–244. https://doi.org/10.1006/excr.2000.4887
Gallagher, E., Minn, I., Chambers, J. E., & Searson, P. C. (2016). Caracterización in vitro del transporte de pralidoxima y la reactivación de acetilcolinesterasa a través de células MDCK y células endoteliales microvasculares cerebrales humanas derivadas de células madre (BC1-hBMECs). Fluids and Barriers of the CNS, 13(1), 10. https://doi.org/10.1186/s12987-016-0035-0
Curtis, V. F., Ehrentraut, S. F., Campbell, E. L., Glover, L. E., Bayless, A., Kelly, C. J., … Colgan, S. P. (2015). La estabilización de HIF mediante la inhibición de la neddilación de Cullin-2 es protectora en respuestas inflamatorias mucosas. FASEB Journal : Official Publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology, 29(1), 208–215. https://doi.org/10.1096/fj.14-259663
Liu, D. Z., Morris-Natschke, S. L., Kucera, L. S., Ishaq, K. S., Thakker, D. R., Hoogdalem, E. J. Van, … Magnusson, C. (1999). Relaciones estructura-actividad para la mejora de la permeabilidad paracelular por 2-alcoxi-3-alquilamidopropilfosfocolinas a través de monocapas celulares Caco-2. Journal of Pharmaceutical Sciences, 88(11), 1169–1174. https://doi.org/10.1021/JS9900957
Ross, B. N.,

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