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505395
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Das TheraCyte-Gerät liefert hochmolekulare Proteine von mindestens 900.000 Dalton und kann für die Forschung an Zellen derselben Spezies verwendet werden, ohne Immunsuppression oder Xenotransplantate mit Immunsuppression. Es ist perfekt für die Lieferung von Proteinen, die instabil und schwer herzustellen oder zu reinigen sind. TheraCyte-Geräte ermöglichen eine kontinuierliche Proteinabgabe.
| Bestellcode | Beschreibung | Größe | Steril |
| 505395 | TheraCyte implantierbares Zellgerät, 17,5 mm x 7,0 mm x 2 mm | 4,5 μL | Ja |
| 505396 | TheraCyte implantierbares Zellgerät, 22 mm x 11,2 mm x 3 mm | 20 μL | Ja |
| 505397 | TheraCyte implantierbares Zellgerät, 44,2 mm x 11,2 mm x 3 mm | 40 μL | Ja |
| 505398 | TheraCyte implantierbares Zellgerät, 44,2 mm x 11,2 mm x 3 mm, 4 Anschlüsse | 40 μL | Ja |
TheraCyte ist das einzige weltweit für alle Forscher verfügbare, markenrechtlich geschützte Zellkapselungsgerät für allgemeine Zwecke. Es ist das Goldstandard-Zellkapselungsgerät mit 20 Jahren veröffentlichter, peer-reviewter Forschung. Mit bewährter Technik und Prozessen zur Unterstützung der Entwicklung neuer Zelllinien und Proteinforschung hat TheraCyte sich einen internationalen Ruf als hochwertige Marke erarbeitet.
TheraCyte Zellkapselungsgeräte ermöglichen die Entwicklung zellbasierter therapeutischer Produkte zur Behandlung chronischer und wiederkehrender Erkrankungen, einschließlich Diabetes, Infektionskontrolle, Proteinmangel und immunologischen Störungen.
Das TheraCyte™-System zur Einkapselung und Transplantation von Zellen ist eine dünne, membranbasierte polymerische Kammer. Es wird aus biokompatiblen Membranen hergestellt, die allogene Zellen vor Abstoßung durch den Empfänger schützen und bei subkutaner Implantation die Entwicklung von Blutkapillaren nahe der Membranen fördern. Diese Vaskularisierungsfunktion sorgt für eine reichhaltige Blutversorgung zur Ernährung des Gewebes innerhalb der Membranen, unterstützt die Kommunikation der implantierten Zellen mit dem Wirt und gewährleistet eine schnelle Aufnahme therapeutischer Moleküle.

Insulinproduzierende Zellen aus adulten menschlichen mesenchymalen Stromazellen des Knochenmarks könnten chemisch induzierten Diabetes bei Hunden kontrollieren: eine vorläufige Studie. Gabr MM, Zakaria MM, Refaie AF, Ismail AM, Khater SM, Ashamallah SA, Azzam MM, Ghoneim MA. Cell Transplantation 1-11. DOI: 10.1177/0963689718759913
Funktionelle Beta-Zell-Masse aus geräteverkapseltem hESC-abgeleitetem pankreatischem Endoderm zur Erreichung metabolischer Kontrolle. Robert T, De Mesmaeker I, Stange GM, Suenens KG, Ling Z, Kroon EJ, Pipeleers DG. j.stemcr.2018.01.040. doi.org/10.1016.
3D-gedruckte poröse Polyamid-Makrokapsel kombiniert mit Alginat-Mikrokapseln für sicherere zellbasierte Therapien. Saenz del Burgo L, Ciriza J, Espona-Noguera A, Illa X, Cabruja E, Orive G, Hernandez RM, Villa R, Pedraz JL, Alvarez M. Scientific Reports (2018) 8:8512. DOI:10.1038/s41598-018-26869-5.
Stammzelltherapien zur Behandlung von Diabetes: Fortschritte und verbleibende Herausforderungen. Sneddon JB, Tang Q, Stock P, Bluestone JA, Roy S, Desai T, Hebrok M. j.stem.2018.05.016. https://doi.org/10.1016.
Allogenes Ovarialgewebe verkapselt in synthetischem Poly(ethylenglykol)-Vinylsulfon (PEG-VS) und TheraCyte immunisoliert allogenes Ovarialgewebe und stellt die endokrine Funktion bei ovariektomierten Mäusen wieder her. David A, Day JR, Cichon A, Lefferts A, Cascalho M, Shikanov A. Tissue Engineering Part A Vol 22: S150-S150.
Colony Stimulating Factor-1-Rezeptor ist ein zentraler Bestandteil der Fremdkörperreaktion auf Biomaterialimplantate bei Nagetieren und nicht-menschlichen Primaten. Doloff JC, Veiseh O, Vegas AJ, Tam HH, Farah S, Ma M, Li J, et al. Nature materials 16 (6): 671-680. doi:10.1038/nmat4866.
Inselverkapselung: Physiologische Möglichkeiten und Grenzen. Korsgren O. Diabetes 2017 Jul; 66(7): 1748-1754. https://doi.org/10.2337/db17-0065.
Schwein-zu-Primaten-Xenotransplantation: Vergangenheit, Gegenwart und Zukunft. Liu Z, Hu W, He T, Dai Y, Hara H, Bottino R, Cooper DKC, Cai Z, Mou L. Cell Transplant. 2017 Jun; 26(6): 925–947. doi: 10.3727/096368917X694859
CXCL12-Modulation lokalisierter Immunantworten bei subkutaner Insel-Makroverkapselung. [abstract]. Penson M, Sremac M, Sirbulescu R, Brauns T, Harrington F, Poznansky M. Am J Transplant. 2017; 17 (suppl 3).
Lokalisierte Toleranz und Entwicklung eines alternativen Transplantationsortes zur Behandlung von Typ-1-Diabetes. Skoumal, MJ. PhD-Dissertation, University of Michigan. ORCID ID: 0000-0001-6993-7369.
Pankreatische Insel-Makroverkapselung mit mikrowellporösen Membranen. Skrzypek K, Nibbelink MG, vanLente J, Buitinga M, Engelse MA, deKoning EJP, Karperien M, vanApeldoorn A, Stamatialis D. Scientific Reports Band 7, Artikelnummer: 9186(2017)
Überlegungen für eine erfolgreiche verkapselte Beta-Zell-Therapie. Thanos CG, Gaglia JL, Pagliuca FW. Zelltherapie, Molekulare und Translationale Medizin, DF Emerich und G Orive (Hrsg.). DOI 10.1007/978-3-319-57153-9_2.
Ko-Verkapselung und Ko-Transplantation von mesenchymalen Stammzellen reduziert perikapsuläre Fibrose und verbessert das Überleben und die Funktion verkapselter Inseln bei Allotransplantation. Vaithilingam V, Evans MDM, Lewy DM, Bean PA, Bal S, Tuch BE Scientific Reports Band 7, Artikelnummer: 10059 (2017). doi:10.1038/s41598-017-10359-1.
73 Sox 10+ adulte Stammzellen tragen zur Biomaterialverkapselung und Mikrovaskularisierung bei. Wang D, Wang A, Wu F, Qiu X, Li Y, Chu J, Huang W-C, Xu K, Gong X, Li S. Sci Rep. 2017; 7: 40295. doi: 10.1038/srep40295.
Die mögliche Nomenklatur verkapselter Produkte [abstract]. Wani TA, Masoodi FA, Wani IA. Food Chem. 1. Nov. 2017;234:119-120. doi:10.1016/j.foodchem.2017.04.121.
Robuste, nanofaserbasierte Hydrogel-Geräte zur Inselverkapselung und -abgabe, An D, Ma M. Front. Bioeng. Biotechnol. Konferenzabstract: 10. World Biomaterials Congress. doi: 10.3389/conf.FBIOE.2016.01.02609.
Überleben verkapselter Inseln: mehr als nur eine Membrangeschichte. Barkai U, Rotem A, deVos P. World J Transplant 2016, 24. März; 6(1): 69-90. ISSN 2220-3230.
Hypothyreose beeinträchtigt die Reifung menschlicher, aus Stammzellen abgeleiteter pankreatischer Vorläuferzellen in Mäusen. Bruin JE, Saber N, O’Dwyer S, Fox JK, Mojibian M, Arora P, Rezania A, Kieffer TJ. Diabetes 2016;65:1297–1309. DOI: 10.2337/db15-1439.
Die Inflammasom-Komponenten ASC und AIM2 modulieren die akute Phase der Fremdkörperreaktionen auf Biomaterialimplantate. Christo SN, Diener KR, Manavis J, Grimbaldeston MA, Bachhuka A, Vasilev K, Hayball JD. Sci Rep. 2016; 6: 20635.
Fortschritte in der klinischen verkapselten Insel-Xenotransplantation. Cooper DKC, Matsumoto S, Abalovich A, Itoh T, Mourad NI, Gianello PR, Wolf E, Cozzi E. Transplantation. Nov. 2016; 100(11): 2301–2308. doi: 10.1097/TP.0000000000001371.
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Immunisolation zur Verhinderung der Abstoßung von Gewebetransplantaten: aktueller Wissensstand und zukünftige Anwendung. David A, Day J, Shikanov A. Exp Biol Med (Maywood). Mai 2016; 241(9): 955–961. doi: 10.1177/1535370216647129.
Bewertung der Immunisolation allogener Maus-Pankreas-Vorläuferzellen durch ein Makroverkapselungsgerät. Faleo G, Lee K, Nguyen V, Tang Q. World J Diabetes. 15. Nov. 2016;7(19): 523-533. doi: 10.4239/wjd.v7.i19.523.
Die Implantation von 1-1B4 menschlichen Beta-Zell-Pseudoinseln verbessert die glykämische Kontrolle bei diabetischen schwer immundefizienten Mäusen. Green AD, Vasu S, McClenaghan NH, Flatt PR. World J Diabetes. 15. Nov. 2016;7(19): 523-533. doi: 10.4239/wjd.v7.i19.523.
Fortschritte und Herausforderungen der bioartifiziellen Bauchspeicheldrüse. Hwang PTJ, Shah DK, Garcia JA, Bae CY, Lim D-J, Huiszoon RC, Alexander GC, Jun H-W. Nano Convergence20163:28. https://doi.org/10.1186/s40580-016-0088-4.
Nanomaterialien und Regenerative Medizin [textbook]. Lin Y, Gong T (Herausgeber). IAPC Publishing, Zagreb Kroatien, 2016.
Zelltherapien zur Auffüllung pankreatischer Betazellen. Okere B, Lucaccioni L, Dominici M, Lughetti L. Italian Journal of Pediatrics 2016 42:62. https://doi.org/10.1186/s13052-016-0273-4.
Kurzfassung: Marker zur Bewertung von aus menschlichen Stammzellen abgeleiteten Implantaten als B-Zell-Ersatz bei Typ-1-Diabetes. Pipeleers D, Robert T, DeMesmaeker I, Ling Z. Stem Cells Translational Medicine AlphaMed Press 1066-5099/2016. http://dx.doi.org/10.5966/sctm.2015-0187.
Fortschritte und Herausforderungen bei Makrokapselungsansätzen zur Behandlung von Typ-1-Diabetes (T1D): Zellen, Biomaterialien und Geräte. Song S und Roy S. Biotechnol Bioeng. Juli 2016; 113(7): 1381–1402. doi: 10.1002/bit.25895.
Langfristige glykämische Kontrolle durch polymerverkapselte, aus menschlichen Stammzellen abgeleitete B-Zellen bei immunkompetenten Mäusen. Vegas A, Veiseh O, Gurtler M, Millman JR, Pagliuca FW, Bader AR, Doloff JC, Li J, Chen M, Olejnik K, Tam HH, Jhunjhunwala S, Langan et al. Nat Med. März 2016; 22(3): 306–311. doi:10.1038/nm.4030.
Quantitative Charakterisierung von Kollagen in der fibrotischen Kapsel um implantierte polymere Mikropartikel mittels Second Harmonic Generation Imaging. Akilbekova D, Bratlie KM. PLoS ONE 10(6): e0130386. doi:10.1371/journal.pone.0130386.
Wirtreaktion auf Biomaterialien: die Auswirkung der Wirtreaktion auf die Auswahl von Biomaterialien. Badylak, SF. New York, NY: Academic Press, 2015. 470 S.
Pankreasgewebe, das in TheraCyte-Kapselungsgeräten transplantiert wurde, ist geschützt und verhindert Hyperglykämie in einem Mausmodell der immunvermittelten Diabetes. Boettler T, Schneider D, Cheng Y, Kadoya K, von Herrath M. Cell Transplantation 08/2015; 25(3). DOI: 10.3727/096368915X688920.
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Polycaprolacton-Dünnfilm-Mikro- und Nanoporen-Zellverkapselungsgeräte. Nyitray CE, Chang R, Faleo G, Lance KD, Bernards DA, Tang Q, Desai TA. ACS Nano, 2015, 9 (6), S. 5675–5682. DOI: 10.1021/acsnano.5b00679.
Makroverkapselung von Pankreasvorläufern – Eine neue Ära in der Diabetes-Therapie? Polidori GP. 2015, Bd. 1 Nr. 1: 5. DOI: 10.21767/2472-1964.100005.
Entwicklung einer verkapselten, stammzellbasierten Therapie für Diabetes. Tomei AA, Villa C, Ricordi C. Expert Opinion on Biological Therapy 15:9, 1321-1336. DOI: 10.1517/14712598.2015.1055242.
Minireview: Gerichtete Differenzierung und Verkapselung von Insel-B-Zellen – Neueste Fortschritte und zukünftige Überlegungen. Tse HM, Kozlovskaya V, Kharlampieva E, Hunter CS. Molecular Endocrinology Oktober 2015, 29(10):1388–1399. doi: 10.1210/me.2015-1085.
Größen- und formabhängige Fremdkörper-Immunantwort auf implantierte Materialien bei Nagetieren und nicht-menschlichen Primaten. Veiseh O, Doloff JC, Ma M, Vegas AJ, Tam HH, Bader AR, Li J, Langan E, Wyckoff J, Loo WS, Jhunjhunwala S, Chiu A, Siebert S, Tang K, et al. Nat Mater. Juni 2015; 14(6): 643–651. doi:10.1038/nmat4290.
Behandlung von Diabetes mit verkapselten Schweineinseln: ein Update zu aktuellen Entwicklungen. Zhu H, Lu L, Liu X-Y, Yu L, Lyu Y, Wang B. Zhejiang Univ. Sci. B (2015) 16: https://doi.org/10.1631/jzus.B1400310.
Human embryonale Stammzell-abgeleitete Inselvorläufer reifen innerhalb eines Verkapselungsgeräts heran, ohne Anzeichen von erhöhter Biomasse oder Zellflucht. Kirk K, Hao E, Lahmy R, Itkin-Ansari P. Stem Cell Research (2014) 12, 807–814. www.elsevier.com/locate/scr
Insel- und Stammzellverkapselung für die klinische Transplantation Krishnan R, Alexander M, Robles L, Foster 3rd CE, Lakey JRT Rev Diabet Stud. Frühjahr 2014; 11(1): 84–101. doi: 10.1900/RDS.2014.11.84.
Zusammensetzung und Funktion makroverkapselter Implantate aus humanen embryonalen Stammzellen: Vergleich mit klinischen humanen Inselzelltransplantaten. Motte E, Szepessy E, Suenens K, Stange G, Pipeleers D. AJP Endocrinology and Metabolism 09/2014; 307(9). DOI:10.1152/ajpendo.00219.2014.
Aktueller Stand der Inselverkapselung. Robles L, Storrs R, Lamb M, Alexander M, Lakey JRT. Cell Transplantation Bd. 23, S. 1321–1348, 2014. DOI: http://dx.doi.org/10.3727/096368913X670949.
Einkapselte Inseln für die Diabetes-Therapie: Geschichte, aktueller Fortschritt und kritische Probleme, die gelöst werden müssen. Scharp DW, Marchetti P. Advanced Drug Delivery Reviews 67–68 (2014) 35–73. www.elsevier.com/locate/addr
Übersicht: Makroverkapselung von Inseln in Polyvinylalkohol-Hydrogel [abstract]. Sumi S, Yanai G, Qi M, Sakata N, Qi Z, Yang K, Shirouzu Y, Hiura A, Gu Y, Inoue K. Med. Bio. Eng. 34(3): 204-210. doi: 10.5405/jmbe.1579.
Übersicht: B-Zell-Regeneration und -Differenzierung: Wie nah sind wir am „heiligen Gral“? Tan G, Elefanty AG, Stanley EG. Molecular Endocrinology 2014 Dez;53(3):R119-29. doi: 10.1530/JME-14-0188.
Anreicherung von aus menschlichen embryonalen Stammzellen stammenden NKX6.1-exprimierenden pankreatischen Vorläuferzellen beschleunigt die Reifung insulinsekretierender Zellen in vivo. Rezania A, deBruin EC, Xu J, Narayan K, Kieffer TJ. Diabetologia 06/2013; 56(9). DOI:10.1007/s00125-013-2955-4.
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Das TheraCyte-Gerät schützt vor der Abstoßung von Insel-Allotransplantaten bei immunisierten Wirten. Kumagai-Braesch M, Jacobsonb S, Moria H, Jiaa X, Tibella A. Cell Transplantation 10/2012; 22(7). DOI:10.3727/096368912X657486.
Inkonsistente Bildung und Funktionslosigkeit insulinpositiver Zellen aus pankreatischem Endoderm, das aus menschlichen embryonalen Stammzellen bei athymischen Nacktmäusen abgeleitet wurde. Matveyenko AV, Georgia S, Bhushan A, Butler PC. AJP Endocrinology and Metabolism 299(5),e713-e720, 2010. https://doi.org/10.1152/ajpendo.00279.2010.
Echtzeit-Biolumineszenz-Bildgebung von makroverkapselten Fibroblasten zeigt Allotransplantatschutz bei Rhesusaffen (Macaca mulatta). Tarantal AF, Lee CC, Itkin-Ansari P. Transplantation. 2009 Jul 15;88(1):38-41. PubMed PMID: 19584678.
Vorläufer menschlicher Beta-Zellen reifen in einem Immunisolationsgerät zu funktionellen insulinproduzierenden Zellen heran: Implikationen für Zelltherapien bei Diabetes. Lee SH, Hao E, Savinov AY, Geron I, Strongin AY, Itkin-Ansari P. Transplantation. 2009 Apr 15;87(7):983-91. PubMed PMID: 19352116; PubMed Central PMCID: PMC2715156.
Behandlung von diabetischen Ratten mit einkapselten Inseln. J Cell Mol Med. Sweet IR, Yanay O, Waldron L, Gilbert M, Fuller JM, Tupling T, Lernmark A, Osborne WR. 2008 Dez;12(6B):2644-50. Epub 2008 Mar 28. PubMed PMID: 18373735.
Vorimplantation eines immunprotektiven Geräts kann die heilende Dosis von Inseln auf die von freier Inseltransplantation senken: Studien in einem Nagetiermodell. Sörenby AK, Kumagai-Braesch M, Sharma A, Hultenby KR, Wernerson AM, Tibell AB. Transplantation. 2008 Jul 27;86(2):364-6. PubMed PMID: 18645504.
Behandlung der Osteoporose mit TheraCyte-verkapselten Nebenschilddrüsenzellen: eine Studie in einem Rattenmodell. Chou FF, Huang SC, Chen SS, Wang PW, Huang PH, Lu KY. Osteoporos Int. 2006;17(6):936-41. Epub 2006 Apr 5. PubMed PMID: 16596462.
Lösliche Faktoren aus Knochenmarkzellen können lethale Bestrahlung bei Mäusen durch Schutz endogener hämatopoetischer Stammzellen überleben lassen. Zhao Y, Zhan Y, Burke KA, Anderson WF. (2005) Exp Hematol. 2005 Apr;33(4):428-34.
Xenotransplantation von neugeborenen porzinen Leberzellen. Garkavenko O, Emerich DF, Muzina M, Muzina Z, Vasconcellos AV, Ferguson AB, Cooper IJ, Elliott RB. (2005) Transplant Proc. 2005 Jan-Feb;37(1):477-80.
Transplantation von mikro- und makroverkapselten Ferkelinseln in Mäuse und Affen. Elliott RB, Escobar L, Calafiore R, Basta G, Garkavenko O, Vasconcellos A, Bambra C. (2005) Transplant Proc. 2005 Jan-Feb;37(1):466-9.
Zellbasierte Gentherapie-Experimente bei muriner experimenteller Autoimmunenzephalomyelitis. Louie KA, Weiner LP, Du1 J, Kochounian HH, Fling SP, Wei1 W und McMillan M. (2005) Gene Therapy 2005, Jul;12, 1145-1153. (Ausgewählter Artikel)
Porzines endogenes retrovirales Nukleinsäurematerial in peripheren Geweben ist mit der Migration porziner Zellen nach Inseltransplantation assoziiert. Binette TM, Seeberger KL, Lyon JG, Rajotte RV, Korbutt GS. (2004) Am. J. Transplant. 2004 Jul;4(7):1051-60.
Langfristige Erythropoietin-Genexpression aus transfizierten Zellen in Bioisolator-Geräten. Ofer Yanay, Simon C. Barry, Lisa Y. Flint, Margaret Brzezinski, Randall W. Barton und William R.A. Osborne Human Gene Therapy, Band 14, Seiten 1587-1593 (20. November 2003)
Retrovirale Verpackungszellen, eingekapselt in TheraCyte-Immunisolationsgeräten, ermöglichen langfristige in vivo Genübertragung. Anna Krupetsky, Zahida Parveen, Elena Marusich, Adrienne Goodrich und Ralph Dornburg Frontiers in Bioscience 8, a94-101, 1. Mai 2003
Überleben von xenotransplantierten Pankreasinseln in NOD-Mäusen mit dem TheraCyte-Gerät. Z. Yanga, M. Chena, L. B. Fialkowa, J. D. Elletta, R. Wua und J. L. Nadler Transplantation Proceedings, Band 34, Seiten 3349-3350, 2002. Forschung gefördert von The Islet Replacement Research Foundation
Überleben makroverkapselter allogener Nebenschilddrüsengewebe ein Jahr nach Transplantation bei nicht immunsupprimierten Menschen. Tibell A, Rafael E, Wennberg L, Nordenstrom J, Bergstrom M, Geller RL, Loudovaris T, Johnson RC, Brauker JH, Neuenfeldt S, Wernerson A. Cell Transplant 2001;10(7):591-9
Mesenchymale Stammzellen von Pavianen können genetisch modifiziert werden, um in vivo humanes Erythropoetin zu sezernieren. Amelia Bartholomew, Sheila Patil, Alastair Mackay, Mary Nelson, Diana Buyaner, Wayne Hardy, Joseph Mosca, Cord Sturgeon, Mandy Siatskas, Nadim Mahmud, Karen Ferrer, Robert Deans, Annemarie Moseley, Ronald Hoffman und Steven M. Devine Human Gene Therapy (2001). 12:1527–1541
Schutz von Xenotransplantaten durch eine Kombination aus Immunisolation und einer Einzeldosis Anti-CD4-Antikörper. Mckenzie AW, Georgiou HM, Zhan Y, Brady JL, Lew AM. Cell Transplant 2001 Mär-Apr; 10(2):183-93
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Korrektur diabetischer NOD-Mäuse mit Insulinomen, die in Baxter-Immunisolationsgeräten implantiert wurden. Loudovaris T., Jacobs S., Young S., Maryanov D., Brauker J. und Johnson RC. (1999). J. Mol. Med. Bd. 77, 219-222
Umkehr der Hyperglykämie bei Mäusen nach subkutaner Transplantation makroverkapselter Inseln. Tatarkiewicz K, Hollister-Lock J, Quickel RR, Colton CK, Bonner-Weir S, Weir GC. (1999). Transplantation, 15. März;67(5):665-71
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Lang anhaltende Expression hoher Mengen humanen Faktors IIX aus humanen Zellen, implantiert in einem Immunisolationsgerät bei athymischen Nagetieren. Brauker, J., Frost, G., Dwarki, V., Carr-Brendel, V., Jasunas, C., Hodgett, D., Stone, W., und Johnson, R.C. (1998). Human Gene Therapy 9:879-888
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Immunisolation von Tumorzellen: Erzeugung von Anti-Tumor-Immunität durch indirekte Antigenpräsentation. Geller, R.L., Neuenfeldt, S., Levon, S.A., Maryanov, D.A., Thomas, T.J., und Brauker, J.H. (1997). J. Immunother. 20(2):131-137.
Transplantation von Zellen in einem Immunisolationsgerät für die Gentherapie. Carr-Brendel, V.E., Geller, R.L., Thomas, T.J., Boggs, D.R., Young, S.K., Crudele, J., Martinson, L.A., Maryanov, D.A., Johnson, R.C., und Brauker, J.H. (1997). Methods Mol Biol. 63:373-87.
Lokale Entzündungsreaktion um Diffusionskammern mit Xenotransplantaten: unspezifische Gewebezerstörung und verminderte lokale Vaskularisation. Brauker, J., Martinson, L.A., Young, S.K., und Johnson, R.C. (1996). Transplantation, Bd. 61: Nr. 12, 1671-1677
CD4+ T-Zell-vermittelte Zerstörung von Xenotransplantaten innerhalb zellundurchlässiger Membranen in Abwesenheit von CD8+ T-Zellen und B-Zellen. Loudovaris, T., Mandel, T.E., und Charlton, B. (1996). Transplantation, 61:1678-1684
Struktur und Funktion makroverkapselter humaner und Nagetier-Pankreasinseln, transplantiert in Nacktmäuse. Andersson A, Eizirik DL, Bremer C, Johnson RC, Pipeleers DG, Hellerstrom C. (1996). Horm Metab Res. Jun; 28(6):306-9
Neovaskularisation synthetischer Membranen gesteuert durch die Mikroarchitektur der Membran. Brauker, J. H., Carr-Brendel, V. E., Martinson, L.A., Crudele, J., Johnston, W.D., und Johnson, R.C. (1995). J. Biomed. Mat. Res., Bd. 29: 1517-1524
Implantierbare biohybride künstliche Organe. Colton, CK. (1995). Cell Transplantation 4(4):415-436. Übersichtsartikel. TheraCyte-Daten, S. 427,432,433

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