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EVM-EL-03-03-01
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Die STX4-Elektrode ist die neueste Version der Essstäbchen-Elektrode für die EVOM™ Handgerät (oder die ältere Version, EVOM3) und wurde entwickelt, um Messungen der Spannung (Potentialdifferenz: PD) und des Widerstands (transepitheliale elektrische Resistenz: TEER) von kultivierten Epithelien (Zellschicht) zu erleichtern, die auf durchlässigen Membran-Einsätzen in 12- und 24-Well Zellkulturplatten wachsen. STX4 kann direkt innerhalb der Well-Platten mit 12 und 24 Einsätzen. Die STX4 ist hauptsächlich für 24-Well hängende Einsätzen oder Transwells (z. B. Corning 3470) ausgelegt, und die beste Leistung der Elektrode zeigt sich in diesem Format.
Die Elektrodenblätter sind austauschbar. Nach längerer Verwendung (über Monate oder Jahre) können sich Ablagerungen aus Medien oder Proben auf den Elektroden bilden und die Messwerte instabil werden. In diesem Fall können Sie die Elektrodenblätter austauschen, ohne die gesamte Elektrode ersetzen zu müssen.
HINWEIS: Regelmäßiges oder tägliches Reinigen nach dem Gebrauch verlängert die Lebensdauer der Elektrodenblätter.Die Elektrodenspitze ist speziell beschichtet und muss für eine einwandfreie Funktion nicht mit Bleichmittel oder Natriumhypochlorit chloriert werden. Auch wird sie durch das Chlorieren nicht beeinträchtigt. Beim Vorgängermodell (STX2-PLUS-Elektroden) war das Chlorieren entscheidend, um die Funktionsfähigkeit zu erhalten.

Die STX4-Elektrodenspitzen, also der Messbereich, sind speziell beschichtet und müssen nicht chloriert werden.
Die Elektrodenspitze (aktiver Messbereich) der STX4 ist kürzer als die des STX2-PLUS. Da sie speziell beschichtet ist, muss sie nicht so groß sein wie die des STX2-PLUS. Daher benötigt die STX4-Elektrode weniger apikale (obere Seite des Einsatzes) und basolaterale Flüssigkeit (Medium) als die STX2-PLUS, um die Elektrodenspitzen vollständig einzutauchen und stabile TEER-Messwerte zu erhalten.
Die STX4-Elektrode passt ideal auf hängende Zellkultureinsätze für Transwell-Platten mit 24 Wells (z. B. Corning 3470) und kann oben darauf hängen bleiben. Dies ermöglicht eine freihändige Bedienung und verbessert die Messgenauigkeit zusätzlich.
Die STX4-Elektrode bietet eine höhere Messgenauigkeit, da ihr Design, das dem des STX2-PLUS ähnelt, Schwankungen durch die Positionierung der Elektrode eliminiert oder minimiert, wie sie beim STX2 oder STX3 auftreten. Die STX2- oder STX3-Elektrode wird in der Hand gehalten. Ihr flexibles Design macht sie anfällig für ein Kippen, wodurch sich während der Messung der Abstand zwischen den beiden Elektrodenblättern verändert. Mit STX2 oder STX3 ist es schwierig, innerhalb derselben Probengruppe einen stabilen und konsistenten Messwert zu erhalten. Nutzer von STX2 oder STX3 führen in der Regel mehrere Messungen derselben Probe durch und verwenden den Durchschnittswert. Mit der STX4-Elektrode sind mehrere Messungen derselben Probe nicht erforderlich.
Die STX4-Elektrode verfügt über ein abgeschirmtes Kabel, und sogar das Metallgehäuse der Elektrode ist mit der Abschirmung verbunden. Durch die Minimierung oder Beseitigung elektrischer Störungen und Störungen durch Mobiltelefone sorgt die Abschirmung für stabile TEER-Messwerte (ohne Schwankungen), die nicht durch Störungen beeinträchtigt werden.
Austauschbare Elektrodenblätter – Diese neue STX4-Elektrode hat austauschbare Elektrodenblätter.
Kein Chlorieren erforderlich – Die Elektrodenspitzen sind speziell beschichtet und müssen nicht chloriert werden (Wartungsschritt), damit die Elektrode bei der TEER-Messung von Zellschichten wie Epithelkulturen ordnungsgemäß funktioniert. Beim STX2-PLUS war Chlorieren erforderlich.
Geringeres Flüssigkeitsvolumen erforderlich – Diese Elektrode benötigt weniger Flüssigkeit als die STX2-PLUS-Elektrode, um die Spitzen eingetaucht zu halten und stabile Messwerte zu liefern.
Freihändige Bedienung – Die STX4-Elektrode passt genau in hängende 24-Well-Transwell-Zellkulturplatten und kann oben auf diesen Transwells eingehängt bleiben, sodass die Bedienung freihändig möglich ist.
Höhere Präzision – Die STX4-Elektrode bietet eine höhere Präzision bei TEER-Messungen, da sie Schwankungen durch Änderungen des Elektrodenabstands und der Positionierung vermeidet, wie sie bei der STX2-Elektrode auftreten.
Abschirmung gegen Hochfrequenzstörungen (RFI) – Diese STX4-Elektrode verfügt über ein abgeschirmtes Kabel und beseitigt oder minimiert Störungen durch elektrische Quellen oder Mobiltelefone, die die TEER-Messwerte beeinträchtigen.

Die STX4-Elektrode sitzt auf dem Well und ermöglicht so eine freihändige Bedienung. Mit dem Einstellring können Sie die Elektrodenblätter genau dort im Well positionieren, wo sie sein müssen: in der Lösung aufgehängt, ohne die Membran oder den Boden der Zellkultur-Wellplatte zu berühren.
HINWEIS: Verbessern Sie die Präzision Ihrer TEER-Messungen mit dem älteren EVOM2, indem Sie das STX2 oder STX3 durch das neue STX4 ersetzen. Das STX4 kann mit dem EVOM2 (Vorgängermodell) mithilfe des separat erhältlichen Adapters EVM-AC-02-01-01 verwendet werden.
Schonen Sie Ressourcen, denn das STX4 benötigt geringere Flüssigkeitsvolumina.
Sparen Sie Zeit, denn das STX4 benötigt weniger Wartung. Eine Chlorierung ist nicht erforderlich.
Das STX4 ist langfristig kostengünstiger, da die Elektrodenblätter vom Benutzer ausgetauscht werden können.
Einzelheiten finden Sie in der folgenden Tabelle (Unterschiede und Gemeinsamkeiten zwischen STX4 und STX2-PLUS).
| Typ | STX2-Plus | STX4 |
| Erforderliche Flüssigkeitsvolumina für stabile Messungen |
Mit dem STX2-PLUS sind größere Flüssigkeits- (Medien-)Volumina pro Probe erforderlich, damit die längeren Sensorbereiche vollständig eingetaucht sind und stabile Messwerte erzielt werden. Beispielvolumina: Für Corning 3470, 24-Well-Transwell, sind für das STX2-PLUS Mindestvolumina von 300 µL oben (apikal) und 850 µL unten (basolateral) erforderlich. |
Für stabile und genaue Messwerte mit dem STX4 sind geringere Flüssigkeits- (Medien-)Volumina pro Probe erforderlich. Da die Sensorbereiche des STX4 kürzer und speziell beschichtet sind, benötigt das STX4 weniger Flüssigkeit als das STX2-PLUS. Die Verwendung geringerer Medienvolumina mit dem STX4 schont Ihre Ressourcen. Beispielvolumina: Für Corning 3470, 24-Well-Transwell, sind für das STX4 Mindestvolumina von 150 µl apikalem Medium und 500 µl basolateralem Medium erforderlich. |
| Chlorierung (Wartung durch den Benutzer) erforderlich |
Ja, das ist wichtig. Bei täglichem Gebrauch muss die Elektrode chloriert werden. Tauchen Sie dazu die Elektrodenspitzen 10 Minuten lang in 3-6 % Natriumhypochlorit und spülen Sie sie anschließend mit DI-Wasser ab, um die ordnungsgemäße Funktion der Elektrode sicherzustellen. |
Nein, das ist nicht erforderlich. Die Elektrode muss nicht chloriert werden. (Die Chlorierung beeinträchtigt auch ihre Funktion nicht.) Eine spezielle Beschichtung der Messbereiche der Elektrode gewährleistet die ordnungsgemäße Funktion. Der Benutzer muss weniger Wartungsarbeiten durchführen und spart dadurch Zeit. |
| Austauschbare Blätter durch den Benutzer (Diese Blätter kommen direkt mit den Proben in Kontakt und enthalten den Messbereich.) |
Nein. Die Blätter sind nicht abnehmbar. |
Ja. Sie können die Blätter austauschen, wodurch der STX4 langfristig kostengünstiger ist. |
| Anwendung | • Ideal für Zellkulturplatten mit Transwell-Einsätzen mit 24 Wells. • Für Widerstands- und Millivolt-Messungen geeignet. |
Wie beim STX2-PLUS |
| Direkte Verbindung mit EVOM Manual oder einer älteren Version des EVOM3 | Ja | Ja |
| Kompatibel mit EVOM2, EVOM, Millicell ERS-2 und ERS (mit dem Adapter EVM-AC-02-01-01) | Ja | Ja |
Bedienungsanleitung für die STX4-Elektrode mit austauschbaren Blättern
Kompatibilitätstabellen für Einsätze/Wellplatten
7 Gründe für ein Upgrade Ihrer EVOM-Elektroden - Vorstellung des neuen STX4
So tauschen Sie die STX4-Elektrodenblätter für die Verwendung mit dem EVOM3 aus
Dunkeln die Spitzen der STX4-Elektrodenblätter während der Nutzung oder bei der Lagerung nach?
Ja, das ist ein normaler Vorgang. Die Elektrodenspitzen des STX4 dunkeln in der Regel nach (kosmetisch bedingt), die Funktion der Elektrode oder des Elektrodenblatts bleibt davon jedoch unbeeinträchtigt.
Kann sich die Farbe der STX4-Elektrodenblätter an der Außenseite deutlich von der an der Innenseite unterscheiden?
Ja, das ist normal (kosmetisch bedingt) und lässt sich auf den Stromfluss zwischen den beiden Elektrodenblättern zurückführen. In der Regel dunkeln die Außenseiten der Elektrodenspitzen stärker nach, da die äußeren Elektroden den elektrischen Strom vom EVOM zuführen (Abb. 29). Die Innenseiten der Elektrodenspitzen bleiben in der Regel relativ weißlich (Farbe der Spitze), da durch diese Seite kein elektrischer Strom fließt. Diese inneren Elektroden (die Innenseiten der Elektrodenspitzen) erfassen die Veränderung (Spannung) als Reaktion auf den angelegten Strom. Dieser beobachtete Unterschied bzw. die Uneinheitlichkeit der Spitzenfarbe (Innenseite gegenüber Außenseite) beeinträchtigt die tatsächliche Funktion des Elektrodenblatts oder der Elektrode nicht.

Eine Verdunkelung der Elektrodenspitze des STX4 und ein deutlicher Farbunterschied zwischen der Innen- und Außenseite der Elektrodenblätter (während der Lagerung oder nach einer gewissen Nutzungsdauer) gelten als normal.
HINWEIS: WPI führt an jedem Elektrodenblatt, insbesondere an den Spitzen, eine spezielle individuelle Konditionierung durch und überprüft die einwandfreie Funktion jedes hergestellten Elektrodenblatts und jeder STX4-Elektrode.
Befindet sich eine Elektrode in der Luft oder ist sie nur teilweise in die Flüssigkeit eingetaucht, können Striche angezeigt werden, da die Messwerte instabil sind. Der Bereich der Elektrodenspitze (Messbereich) muss vollständig eingetaucht bleiben. Auch wenn die Elektrodenspitze nicht vollständig eingetaucht ist, können die Messwerte instabil sein. Achten Sie darauf, dass die apikalen und basolateralen Volumina so gewählt werden, dass die Spitzen beider Elektrodenblätter vollständig eingetaucht bleiben.
Drehen Sie den Längeneinstellring im Uhrzeigersinn, damit die Elektrodenblätter tiefer in die Probe eintauchen können und die Elektrodenspitzen vollständig in die Flüssigkeit eingetaucht bleiben.

Die freiliegende Länge der STX4-Elektrodenblätter lässt sich durch Drehen des Einstellrings anpassen.
Achten Sie darauf, dass die Messspitzen an beiden Elektrodenblättern während der Messung vollständig in eine leitfähige Flüssigkeit (Zellkulturmedium oder Puffer) eingetaucht sind. Das apikale und basolaterale Volumen muss ausreichend groß sein, um stabile Messwerte zu erhalten.
Ja, es ist wichtig, die Elektrode nach jedem Gebrauch zu reinigen, an der Luft trocknen zu lassen und trocken aufzubewahren. Dies ist notwendig, damit die Elektrodenblätter lange funktionsfähig bleiben. Weitere Informationen finden Sie im Abschnitt WARTUNG der STX4-Bedienungsanleitung.
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A. Halten Sie die Elektrode NICHT am Kabel. (Falsche Handhabung) |
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B. Halten Sie die Elektrode am durch den roten Pfeil markierten Kunststoffbereich. (Richtige Handhabung) |
Tauchen Sie die Elektrode nur bis unterhalb der durch die Pfeile im Bild unten angezeigten Höchstgrenze in die Flüssigkeit ein und besprühen Sie sie nicht über diese Höhe hinaus mit Flüssigkeit. Die Flüssigkeit darf nicht ins Innere gelangen und bis zu den Kabeln oder Anschlüssen reichen. Den übrigen Teil der Elektrode können Sie mit einem mit Isopropanol oder Ethanol besprühten Papiertuch abwischen. (Nicht direkt besprühen.)
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Tauchen Sie die Elektrode höchstens bis zu dieser Linie an der Spitze in die Flüssigkeit ein. Der übrige Teil der Elektrode kann mit einem feuchten Papiertuch abgewischt werden. |
Die STX4-Elektrode eignet sich ideal für gängige hängende Einsätze mit 24 Wells (z. B. von Corning, Millipore und Greiner). Die Elektrode kann mit den meisten anderen Einsätzen mit 24 oder 12 Wells verwendet werden. Bei Einsätzen mit 12 Wells muss die Elektrode während der Messung in der Hand gehalten oder von Hand gestützt werden. Eine Liste kompatibler Einsätze finden Sie hier oder im „ANHANG B: KOMPATIBLE EINSÄTZE UND PLATTEN“ der STX4-Bedienungsanleitung.
Ja. Es ist zu erwarten, dass sich die Rohwiderstandswerte ändern. Ziehen Sie jedoch die Blindwerte (Blind-Transwell ohne Zellen) von den Probenwerten (Transwell mit Zellen) ab. So ziehen Sie den Blindwert mit erhöhtem Volumen von den Proben mit erhöhtem Volumen ab. Dadurch wird jede durch das erhöhte Volumen verursachte Widerstandsänderung herausgerechnet. Verwenden Sie in allen Proben eines Versuchsaufbaus stets dieselben Volumina.
Nein. Multiplizieren Sie den gemessenen Widerstand mit der entsprechenden Membranoberfläche, um den TEER zu berechnen. Beträgt der Messwert beispielsweise bei einem 6,5-mm-Insert (24-Well-Platte) 565 Ω, ergibt sich ein TEER von:
565 Ω × 0,33 cm2 = 186,45 Ω-cm2
[Für eine 24-Well-Platte (6,5-mm-Insert) beträgt die Fläche 0,33 cm2; für eine 12-Well-Platte (12-mm-Insert) beträgt sie 1,13 cm2. Genaue Angaben zur Membranfläche des jeweiligen Insert-Teilenummer finden Sie in den technischen Daten des Herstellers des jeweiligen Insert/Transwell (z. B. Millipore, Corning usw.).]
Es ist bekannt, dass die Temperatur die TEER-Werte beeinflusst. Um konsistente Werte zu erhalten, empfehlen wir, die Probentemperatur konstant zu halten. Nehmen Sie die Well-Platte mit den Inserts, die Zellen enthalten, aus dem Inkubator und lassen Sie sie vor der Messung 15-20 Minuten bei Raumtemperatur in der Laminar-Flow-Werkbank stabilisieren. Bis dahin haben alle Proben ungefähr dieselbe Raumtemperatur.
Warten Sie nach dem Hinzufügen von Flüssigkeiten zu den Transwells 15 Minuten, bevor Sie Messungen vornehmen. Die Flüssigkeitsspiegel innerhalb und außerhalb des Insert gleichen sich tendenziell an und sorgen für eine stabilere Messung.
Wir empfehlen, sowohl auf der apikalen Seite (oben im Zellkultur-Insert) als auch auf der basolateralen Seite (unten im Insert) dieselbe leitfähige Flüssigkeit mit derselben Ionenkonzentration zu verwenden. Verwenden Sie beispielsweise sowohl innerhalb als auch außerhalb des Insert dasselbe Medium.
Die Verwendung konsistenter Flüssigkeitsvolumina (Medium/Puffer) in allen Experimenten verringert die Variabilität.

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Transepitheliale/transendotheliale elektrische Widerstandsmessung (TEER) ist eine weit verbreitete quantitative Methode zur Beurteilung der Integrität von Tight Junctions in Zellmonolayern. Das EVOM™ von WPI ist der Goldstandard für TEER-Messungen und besonders wertvoll in Studien zu Arzneimitteltransport, Toxikologie, Entzündungen und Organ-on-Chip-Systemen. Die TEER-Messung liefert schnelle und quantitative Daten und kann als effiziente und kostengünstige Methode für die Arzneimittelentdeckung und -entwicklung eingesetzt werden. Es gibt bestimmte biologische und technische Faktoren, die die TEER-Werte beeinflussen können. Dieser Artikel gibt einen Überblick über die wichtigsten Variablen, die TEER-Ergebnisse in Zellkulturstudien beeinflussen, und wie durch Minimierung oder Beseitigung dieser Faktoren eine konsistente TEER-Messung gewährleistet werden kann.
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