Die Rolle der Aladdin-Spritzenpumpen in Organ-on-Chip-Anwendungen

Unter der Vielzahl von Zelllinien, die im präklinischen Organ-on-a-Chip (OOC)-Bereich untersucht werden, gibt es viele Pumpenlösungen auf hohem, mittlerem und Einstiegsniveau. Während verschiedene High-End-Lösungen, die eine äußerst genaue Durchflusskontrolle (innerhalb von 1 %) über einen längeren Beobachtungszeitraum bieten, attraktiv sein können, ist dieses Präzisionsniveau möglicherweise nicht entscheidend, um Konfluenz bei allen Zelllinien zu erreichen. Dies eröffnet vielen Anwendern, die Einfachheit in ihren Arbeitsabläufen suchen, vielversprechende Möglichkeiten.

Entdecken Sie die vielfältigen Einsatzmöglichkeiten der Aladdin-Spritzenpumpe von WPI sowohl im Labor- als auch im Organ-on-Chip-Bereich:

  1. Abbasi, R., LeFevre, T. B., Benjamin, A. D., Thornton, I. J., & Wilking, J. N. (2021). Kopplung des Flüssigkeitsflusses an hydrogelbasierte mikrofluidische Geräte mit reversiblen „Pop-it“-Verbindungen. Lab on a Chip, 21(10), 2050–2058. https://doi.org/10.1039/d1lc00135c
  2. Busek, M., Nøvik, S., Aizenshtadt, A., Amirola-Martinez, M., Combriat, T., Grünzner, S., & Krauss, S. (2021). Thermoplastische Elastomer (TPE)-Poly(Methylmethacrylat) (PMMA) Hybridgeräte für aktives Pumpen in PDMS-freien Organ-on-a-Chip-Systemen. Biosensors, 11(5), 162. https://doi.org/10.3390/bios11050162
  3. Carvalho, D. J., Kip, A. M., Romitti, M., Nazzari, M., Tegel, A., Stich, M., Krause, C., Caiment, F., Costagliola, S., Moroni, L., & Giselbrecht, S. (2023). Schilddrüse-on-a-Chip: Eine Organoid-Plattform zur in vitro Bewertung endokriner Disruption. Advanced healthcare materials, 12(8), e2201555. https://doi.org/10.1002/adhm.202201555
  4. Chen, Z., Huang, J., Zhang, J., Xu, Z., Li, Q., Ouyang, J., Yan, Y., Sun, S., Ye, H., Wang, F., Zhu, J., Wang, Z., Chao, J., Pu, Y., & Gu, Z. (2023). Ein Sturm im Wasserglas – Ein biomimetisches Lungen-Mikrophysiologiesystem in Verbindung mit einem Deep-Learning-Algorithmus zur Überwachung von Lungenpathologien und Entzündungsreaktionen. Biosensors & Bioelectronics, 219, 114772. https://doi.org/10.1016/j.bios.2022.114772
  5. Conde, A. J., Keraite, I., Ongaro, A. E., & Kersaudy-Kerhoas, M. (2020). Vielseitiger hybrider akustischer Mikromischer mit Demonstration der Extraktion zirkulierender zellfreier DNA aus Sub-ml-Plasmaproben. Lab on a Chip, 20(4), 741–748. https://doi.org/10.1039/c9lc01130g
  6. Deli, M.A., Porkoláb, G., Kincses, A., Mészáros, M., Szecskó, A., Kocsis, A.E., Vigh, J.P., Valkai, S., Veszelka, S., Walter, F.R., & Dér, A. Lab-on-a-Chip-Modelle der Blut-Hirn-Schranke: Entwicklung, Probleme, Perspektiven. Lab on a Chip, 24(5), 1030-1063. https://doi.org/10.1039/D3LC00996C
  7. Elitas, M., Dhar, N., & McKinney, J. D. (2021). Aufdeckung der Antibiotika-Toleranz des Mycobacterium smegmatis Xanthin/Uracil-Permease-Mutanten mittels Mikrofluidik und Einzelzell-Analyse. Antibiotics (Basel), 10(7), 794. https://doi.org/10.3390/antibiotics10070794
  8. Liu, E.Y., Jung, S., Weitz, D.A., Yi, H., & Choi, C.H. (2018). Hochdurchsatz-Mikrofluidikproduktion von Hydrogel-Mikrosphären mit einstellbaren chemischen Funktionalitäten zur biomolekularen Konjugation basierend auf Doppel-Emulsion. Lab on a Chip, 18(2), 323-334. https://doi.org/10.1039/C7LC01088E
  9. Mazzarda, F., D'Elia, A., Massari, R., De Ninno, A., Bertani, F. R., Businaro, L., Ziraldo, G., Zorzi, V., Nardin, C., Peres, C., Chiani, F., Tettey-Matey, A., Raspa, M., Scavizzi, F., Soluri, A., Salvatore, A. M., Yang, J., & Mammano, F. (2020). Organ-on-Chip-Modell zeigt, dass ATP-Freisetzung durch Connexin-Hemikanäle spontane Ca2+-Signalgebung in nicht-sensorischen Zellen des größeren epithelialen Kamms in der sich entwickelnden Cochlea antreibt. Lab on a Chip, 20(16), 3011–3023. https://doi.org/10.1039/d0lc00427h
  10. McMillan, K.S., Boyd, M., & Zagnoni, M. (2016). Übergang von Mehrphasen- zu Einphasen-Mikrofluidik für Langzeitkultur und Behandlung von mehrzelligen Sphäroiden. Lab on a Chip, 16(18), 3548-3557. https://doi.org/10.1039/C6LC00884D
  11. Nguyen, A., Brandt, M., Muenker, T. M., & Betz, T. (2021). Multi-Oszillations-Mikrorheologie mittels akustischer Kraftspektroskopie ermöglicht frequenzabhängige Messungen an Endothelzellen mit hoher Durchsatzrate. Lab on a Chip, 21(10), 1929–1947. https://doi.org/10.1039/d0lc01135e
  12. Protopapa, G., Bono, N., Visone, R., D'Alessandro, F., Rasponi, M., & Candiani, G. (2023). Eine neue mikrofluidische Plattform für die hochreproduzierbare Herstellung von nicht-viralen Genliefersystem-Komplexen. Lab on a Chip, 23(1), 136-145. https://doi.org/10.1039/D2LC00744D
  13. Stanley, C.E., Shrivastava, J., Brugman, R., Heinzelmann, E., van Swaay, D., & Grossmann, G. (2018). Dual-flow-RootChip zeigt lokale Anpassungen von Wurzeln an Umweltasymmetrien auf physiologischer und genetischer Ebene. New Phytol, 217(3): 1357-1369. https://doi.org/10.1111/nph.14887
  14. Wang, Y., Deng, R., Yanga, L., & Bain, C.D. (2019). Herstellung von Monolayern einheitlicher polymerer Partikel durch Inkjet-Druck monodisperser Emulsionen, die mittels Mikrofluidik erzeugt wurden. Lab on a Chip, 19(18), 3077-3085. https://doi.org/10.1039/C9LC00588A
  15. Wang, H., Enders, A., Preuss, J. A., Bahnemann, J., Heisterkamp, A., & Torres-Mapa, M. L. (2021). 3D-gedrucktes mikrofluidisches Lab-on-a-Chip-Gerät für faserbasierte duale Strahloptische Manipulation. Scientific Reports, 11(1), 14584. https://doi.org/10.1038/s41598-021-93205-9
  16. Zecong, F., Ding, Y., Zhang, Z., Wang, F., Wang, Z., Wange, H., & Pan, T. (2020). Digitaler mikrofluidischer Meter-on-Chip. Lab on a Chip, 20(4), 722-733. https://doi.org/10.1039/C9LC00989B
  17. Zhuang, Y., Cheng, S., Kovalchuk, N.M., Simmons, M.J., Matar, O.K., Guo, Y., & Arcucci, R. (2022). Ensemble latente Assimilation mit Deep-Learning-Ersatzmodell: Anwendung auf Tropfeninteraktion in einem Mikrofluidik-Gerät. Lab on a Chip, 22(17), 3187-3202. https://doi.org/10.1039/D2LC00303A