{"product_id":"sys-773-duo-773-electrometer","title":"Électromètre Duo 773","description":"\u003c!-- section:details --\u003e\n\u003cp\u003e\u003ca href=\"\/fr\/blog\/post\/wpi-s-low-noise-amplifiers-outperform-cheap-imitations\"\u003eDécouvrez ce que vous devez savoir avant d'acheter un amplificateur\u003c\/a\u003e.\u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eAvantages\u003c\/h2\u003e\n\u003cul\u003e\n\u003cli\u003eEnregistrement double canal, simple extrémité\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eEnregistrement différentiel\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eLe circuit pont annule la chute de tension d'électrode\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eAttribuer un filtre passe-bas à l'un ou l'autre canal\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eCanal à très haute impédance pouvant être utilisé avec ISE intracellulaire\u003c\/li\u003e\n\u003c\/ul\u003e\n\u003ch2\u003eApplications\u003c\/h2\u003e\n\u003cul\u003e\n\u003cli\u003eÉlectrophysiologie intracellulaire utilisant des micropipettes fines\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eEnregistrement intracellulaire de tranches cérébrales\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003e\nEnregistrement intracellulaire \u003cem\u003ein vivo\u003c\/em\u003e du cerveau et de la moelle épinière\u003c\/li\u003e\n\u003c\/ul\u003e\n\u003cp\u003e\u003ciframe style=\"font-size: 12px;\" src=\"https:\/\/www.youtube.com\/embed\/hJGEkjS3OUk?rel=0\" width=\"560\" height=\"315\"\u003e\u003c\/iframe\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003ePour les études intracellulaires doubles ou différentielles, le \u003cstrong\u003eDuo773 \u003c\/strong\u003e dispose de commandes séparées de capacité négative et d'un filtrage actif intégré qui permet l'équilibrage précis des constantes de temps pour une mesure différentielle sans artefact. Livré complet avec deux têtes de sonde, des sondes 10\u003csup\u003e15\u003c\/sup\u003eΩ et 10\u003csup\u003e11\u003c\/sup\u003eΩ pour surveiller les signaux des microélectrodes ion-spécifiques ainsi que des électrodes remplies de KCl.\u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eTête de sonde pour positionnement précis\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003eDeux sondes actives miniatures plaquées or et scellées à l'époxy peuvent être positionnées directement sur le site de mesure. Les supports de microélectrodes contenant des demi-cellules électrochimiques Ag\/AgCl se branchent directement sur les sondes. La capacité parasite peut être réduite en plaçant le blindage de garde piloté inclus sur le support de microélectrode à l'extrémité de la sonde.\u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eCompensation de capacité\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003eLe canal A peut compenser jusqu'à 10 pF de capacité de dérivation d'électrode et le canal B peut compenser jusqu'à 50 pF.\u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eCircuit de stimulation pour pénétration\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003eUn circuit de stimulation (Tickler) aide à la pénétration cellulaire. La fréquence et l'amplitude des oscillations peuvent être ajustées selon l'épaisseur de la membrane ou la taille de la cellule. La durée de la stimulation peut être contrôlée soit par l'interrupteur momentané, un pédalier, ou en appliquant un signal à l'entrée distante du circuit de stimulation.\u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eFiltres actifs\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003eLes réglages passe-bas sur un filtre actif à -40 dB\/décade varient la coupure de 1 à 30 kHz. Les sorties de la sonde ou du pont peuvent être sélectionnées pour le filtrage.\u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eInjection de courant\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003eLe canal B peut éjecter du courant à travers le microélectrode en appliquant un signal de commande à la prise d'entrée de stimulation. La sortie résultante de la sonde sera une réplique de courant constant du signal d'entrée. Deux plages de livraison de courant sont fournies : 50 nA et 500 nA ou par une source externe. Cette source peut être utile pour délivrer des courants hyperpolarisants afin de stabiliser le potentiel de membrane cellulaire et comme courant de maintien pour la microiontophorèse.\u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eÉquilibre du pont\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003eSoustrait la tension d'électrode excédentaire associée à la livraison de courant à travers la micropipette d'enregistrement. Les résistances d'électrode jusqu'à 1000 MΩ peuvent être équilibrées sur deux plages. Le signal équilibré est disponible à partir des connecteurs de sortie x10 ou x50 en façade.\u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eSorties indépendantes\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003eLe \u003cstrong\u003eDuo773\u003c\/strong\u003e dispose d'une sortie pour chaque sonde indépendante du gain, du filtrage ou de l'équilibrage. De plus, le \u003cstrong\u003eDuo773\u003c\/strong\u003e possède une sortie 10x et une sortie 50x pour une intégration facile à la plupart des programmes d'acquisition de données.\u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eConfiguration typique\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003e\u003cimg src=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/Duo773-setup_4017456d-121f-4e59-8d5b-9a0fbd855624.jpg?v=1765947782\" alt=\"Schéma de configuration Duo773\"\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003eVoir \u003ca href=\"\/fr\/blog\/post\/choosing-cables-and-connectors\" rel=\"noopener\" target=\"_blank\"\u003eCâbles et connecteurs\u003c\/a\u003e.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003eVoir \u003ca href=\"\/fr\/blog\/post\/compare-dri-ref-reference-electrodes\" rel=\"noopener\" target=\"_blank\"\u003eélectrodes de référence Dri-Ref\u003c\/a\u003e. \u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eSupports optionnels pour amplificateurs intracellulaires\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003e\u003cimg src=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/773-Holder-Options_548c4a34-c4b6-4b79-8337-dcc14934184b.jpg?v=1765947787\" alt=\"Supports Duo773\" width=\"336\" height=\"305\"\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003eAutres \u003ca href=\"\/fr\/blog\/post\/a-visual-catalog-of-electrode-holders\" rel=\"noopener\" target=\"_blank\"\u003esupports de microélectrodes\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003c!-- \/section:details --\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003c!-- section:resources --\u003e\n\u003cp\u003e\u003cstrong\u003e\u003ca href=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/Duo773_IM.pdf\" target=\"_self\"\u003eManuel d'instructions DUO773\u003c\/a\u003e\u003c\/strong\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003c!-- \/section:resources --\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003c!-- section:specifications --\u003e\n\u003ctable border=\"1\" cellspacing=\"0\" cellpadding=\"2\"\u003e\n\u003ctbody\u003e\n\u003ctr style=\"background-color: #0081c2;\"\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cspan style=\"color: #ffffff;\"\u003e\u003cstrong\u003eTÊTE (SONDE)\u003c\/strong\u003e\u003c\/span\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cspan style=\"color: #ffffff;\"\u003e\u003cstrong\u003e712P (rouge, port B)\u003c\/strong\u003e\u003c\/span\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cspan style=\"color: #ffffff;\"\u003e\u003cstrong\u003e715P (bleu, port A)\u003c\/strong\u003e\u003c\/span\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr bgcolor=\"#e6e6e6\"\u003e\n\u003ctd\u003eIMPÉDANCE D'ENTRÉE DE LA SONDE ACTIVE\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u0026gt;10\u003csup\u003e11\u003c\/sup\u003e Ω\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e10\u003csup\u003e15\u003c\/sup\u003e Ω\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003eGAIN\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ex1, x10\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ex1\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr bgcolor=\"#e6e6e6\"\u003e\n\u003ctd\u003eRÉSISTANCE DE SORTIE \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e100 Ω\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e100 Ω\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003ePLAGE DE TENSION DE SORTIE\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e±10 V\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e±10 V\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr bgcolor=\"#e6e6e6\"\u003e\n\u003ctd\u003eTENSION MAXIMALE D'ENTRÉE \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e±15 V\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e±15 V\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003eCOURANT DE FUITE DE LA SONDE\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e5 X 10\u003csup\u003e-12\u003c\/sup\u003e A\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e10\u003csup\u003e-14\u003c\/sup\u003e A\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr bgcolor=\"#e6e6e6\"\u003e\n\u003ctd\u003ePLAGE DE RÉGLAGE DE POSITION DC\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e± 300 mV\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e± 300 mV \u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003eCOURANT DE TEST DE RÉSISTANCE D'ÉLECTRODE\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e1 nA\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e1 pA, 1 nA sélectionnable\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr bgcolor=\"#e6e6e6\"\u003e\n\u003ctd\u003eCOMPENSATION DE CAPACITÉ D'ENTRÉE \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e+10 à -50 pF\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0 à -10 pF\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr style=\"background-color: #ffffff;\" bgcolor=\"#e6e6e6\"\u003e\n\u003ctd\u003eBRUIT\u003cbr\u003e  Entrée court-circuitée 712P \u003cbr\u003e  Résistance carbone 20 MΩ\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\n\u003cbr\u003e\u0026lt;50 µV crête à crête bande passante 10 kHz\u003cbr\u003e\u0026lt;200 µV crête à crête bande passante 10 kHz\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\n\u003cbr\u003e\u0026lt;50 µV crête à crête bande passante 10 kHz\u003cbr\u003e\u0026lt;200 µV crête à crête bande passante 10 kHz\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr bgcolor=\"#e6e6e6\"\u003e\n\u003ctd\u003eTEMPS DE MONTÉE\u003cbr\u003e  10-90% entrée directe petit signal\u003cbr\u003e  10-90% à travers 20 MΩ (-C « activé »)\u003c\/td\u003e\n\u003ctd colspan=\"2\"\u003e\n\u003cbr\u003e1 µs, typique\u003cbr\u003e25 µs, typique \u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003eINJECTION DE COURANT (712P uniquement)**\u003cbr\u003e  Courant continu interne\u003cbr\u003e  Courant commandé externe 712P (rouge, port B)\u003cbr\u003e  Facteur de commande de courant externe\u003cbr\u003e  Moniteur de courant\u003cbr\u003e  Conformité\u003cbr\u003e  Équilibre du pont\u003cbr\u003e  Gain de l'amplificateur pont\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\n\u003cbr\u003e± 50 nA plage basse, ± 500 nA plage haute\u003cbr\u003e± 500 nA plage basse, ±5 µA plage haute\u003cbr\u003e20 mV\/nA plage basse, 2 mV\/nA plage haute\u003cbr\u003e100mV\/nA plage basse, 10mV\/nA plage haute\u003cbr\u003e3V plage basse, 10V plage haute\u003cbr\u003e0-100 MΩ, 0-1000 MΩ\u003cbr\u003ex 10, x 50\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e n\/a\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr bgcolor=\"#e6e6e6\"\u003e\n\u003ctd\u003eFILTRAGE PASSE-BAS\u003c\/td\u003e\n\u003ctd colspan=\"2\"\u003e40 dB\/décade, variable en continu 1-30 kHz\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr style=\"background-color: #ffffff;\"\u003e\n\u003ctd\u003eFusible (anciens modèles)\u003c\/td\u003e\n\u003ctd colspan=\"2\"\u003e120 V : 0,5 A, rapide, 0,25x1,25” USA\u003cbr\u003e230 V : 0,25 A, rapide, 0,25x1,25” USA\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr bgcolor=\"#e6e6e6\"\u003e\n\u003ctd\u003eFusible (modèles 2019)\u003c\/td\u003e\n\u003ctd colspan=\"2\"\u003e120 V : 0,5 A, rapide, 5 x 20 mm métrique\u003cbr\u003e230 V : 0,25 A, rapide, 5 x 20 mm métrique\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003eSECTION MÈTRE\u003cbr\u003e  Affichage\u003cbr\u003e  Plages\u003cbr\u003e  Précision et résolution\u003c\/td\u003e\n\u003ctd colspan=\"2\"\u003e\n\u003cbr\u003eLED 3,5 chiffres\u003cbr\u003e200 mV, 2000 mV, 20 V, 200 nA, 2000 nA \u003cbr\u003e1 chiffre\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr bgcolor=\"#e6e6e6\"\u003e\n\u003ctd\u003eDIMENSIONS : \u003cbr\u003e  Instrument\u003cbr\u003e  Sonde\u003c\/td\u003e\n\u003ctd colspan=\"2\"\u003e\n\u003cbr\u003e17 x 5,25 x 10 in. (43 x 13 x 25 cm)\u003cbr\u003eDiamètre : 12 mm Longueur : 34 mm \u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003eALIMENTATION\u003c\/td\u003e\n\u003ctd colspan=\"2\"\u003e95-135 V ou 220-240 V, 50\/60 Hz \u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr bgcolor=\"#e6e6e6\"\u003e\n\u003ctd\u003ePOIDS D'EXPÉDITION\u003c\/td\u003e\n\u003ctd colspan=\"2\"\u003e15 lb. (7 kg) \u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003eCERTIFICATION\u003c\/td\u003e\n\u003ctd colspan=\"2\"\u003eCE, CSA \u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003c\/tbody\u003e\n\u003c\/table\u003e\n\u003cp class=\"p1\"\u003e\u003cem\u003e* Bien que les courants injectés soient « constants », le courant maximal dans une situation donnée sera toujours limité par la conformité du système de 10 V.\u003c\/em\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp class=\"p2\"\u003e\u003cem\u003e**La tête 712P peut être utilisée sur les canaux A ou B, cependant les spécifications d'injection de courant ne s'appliquent pas lorsqu'elle est utilisée sur le canal A. La tête 715P ne peut pas être utilisée sur le canal B.\u003c\/em\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003c!-- \/section:specifications --\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003c!-- section:references --\u003e\n\u003cp\u003ePLantes Utilisées Comme Dispositifs Capteurs | Projets | FP7-ICT | CORDIS | Commission européenne. (s.d.). Consulté le 27 novembre 2018, depuis \u003ca href=\"https:\/\/cordis.europa.eu\/project\/rcn\/103686_en.html\"\u003ehttps:\/\/cordis.europa.eu\/project\/rcn\/103686_en.html\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eZhang, J., Chen, M., Li, B., Lv, B., Jin, K., Zheng, S., … Long, C. (2016).\u003c\/b\u003e Activité rythmique striatale altérée chez les souris knock-out pour la cylindromatose due à une inhibition GABAergique renforcée. \u003ci\u003eNeuropharmacologie\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e110\u003c\/i\u003e, 260–267. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/j.neuropharm.2016.06.021\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/j.neuropharm.2016.06.021\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eCros, C., Chaigne, S., Pascarel-Auclerc, C., Benoist, D., Walton, R., Pasdois, P., … Brette, F. (2016).\u003c\/b\u003e 0514 : Isolement de myocytes cardiaques du cœur humain. \u003ci\u003eArchives des Maladies Cardiovasculaires Suppléments\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e8\u003c\/i\u003e(3), 230. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/S1878-6480(16)30430-X\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/S1878-6480(16)30430-X\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eMañé, N., Viais, R., Martínez-Cutillas, M., Gallego, D., Correia-de-Sá, P., \u0026amp; Jiménez, M. (2016).\u003c\/b\u003e Gradient inverse de la cotransmission inhibitrice nitrergique et purinergique dans le côlon de souris. \u003ci\u003eActa Physiologica\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e216\u003c\/i\u003e(1), 120–131. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1111\/apha.12599\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1111\/apha.12599\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eChang, J.-H., Cheng, P.-Y., Hsu, C.-H., Chen, Y.-C., \u0026amp; Hong, P.-D. (2016).\u003c\/b\u003e Effets de l'acétaminophène sur la contractilité de l'oreillette gauche. \u003ci\u003eActa Cardiologica Sinica\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e32\u003c\/i\u003e(4), 485–490. Consulté sur \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/27471362\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/27471362\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eHuo, Q., Chen, M., He, Q., Zhang, J., Li, B., Jin, K., … Yang, L. (2016).\u003c\/b\u003e La dysfonction GABAergique corticale préfrontale contribue à une durée aberrante de l'état UP chez les souris APP Knockout. \u003ci\u003eCortex Cérébral (New York, N.Y. : 1991)\u003c\/i\u003e. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1093\/cercor\/bhw218\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1093\/cercor\/bhw218\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eSpong, K. E., Rodríguez, E. C., \u0026amp; Robertson, R. M. (2016).\u003c\/b\u003e La dépolarisation propagée dans le cerveau de Drosophila est induite par l'inhibition de la Na+\/K+-ATPase et atténuée par une diminution de l'activité de la protéine kinase G. \u003ci\u003eJournal de Neurophysiologie\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e116\u003c\/i\u003e(3).\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eMañé, N., Jiménez-Sábado, V., \u0026amp; Jiménez, M. (2016). \u003c\/b\u003eBPTU, un antagoniste allostérique du récepteur P2Y1, bloque les réponses neuromusculaires inhibitrices médiées par les nerfs dans le tractus gastro-intestinal des rongeurs. \u003ci\u003eNeuropharmacologie\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e110\u003c\/i\u003e, 376–385. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/j.neuropharm.2016.07.033\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/j.neuropharm.2016.07.033\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eBredeloux, P., Finday, I., Pasqualin, C., Yu, A., \u0026amp; Maupoil, V. (2016).\u003c\/b\u003e 0194 : Conséquences fonctionnelles de l'activation des récepteurs -adrénergiques dans les veines pulmonaires et les oreillettes gauches du rat. \u003ci\u003eArchives des Maladies Cardiovasculaires Suppléments\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e8\u003c\/i\u003e(3). \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/S1878-6480(16)30431-1\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/S1878-6480(16)30431-1\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eCoskun, D., Britto, D. T., Kochian, L. V., \u0026amp; Kronzucker, H. J. (2016). \u003c\/b\u003eJusqu'où vont les flux ioniques ? Une réévaluation du modèle à deux mécanismes du transport de K+ dans les racines des plantes. \u003ci\u003ePlant Science\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e243\u003c\/i\u003e, 96–104. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/j.plantsci.2015.12.003\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/j.plantsci.2015.12.003\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eMagown, P., Shettar, B., Zhang, Y., \u0026amp; Rafuse, V. F. (2015).\u003c\/b\u003e Activation optique directe des fibres musculaires squelettiques contrôlant efficacement la contraction musculaire et atténuant l'atrophie par dénervation. \u003ci\u003eNature Communications\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e6\u003c\/i\u003e(1), 8506. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1038\/ncomms9506\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1038\/ncomms9506\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eYi, F., Ling, T.-Y., Lu, T., Wang, X.-L., Li, J., Claycomb, W. C., … Lee, H.-C. (2015).\u003c\/b\u003e Régulation à la baisse des canaux potassiques activés par le calcium à petite conductance dans les oreillettes de souris diabétiques. \u003ci\u003eThe Journal of Biological Chemistry\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e290\u003c\/i\u003e(11), 7016–7026. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1074\/jbc.M114.607952\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1074\/jbc.M114.607952\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003evan der Schoot, C., \u0026amp; Rinne, P. L. H. (2015).\u003c\/b\u003e Cartographie des champs symplasmatiques au méristème apical de la pousse en utilisant l'iontophorèse et les mesures du potentiel de membrane (pp. 157–171). \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1007\/978-1-4939-1523-1_11\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1007\/978-1-4939-1523-1_11\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eChatterjee, S. K., Das, S., Maharatna, K., Masi, E., Santopolo, L., Mancuso, S., \u0026amp; Vitaletti, A. (2015).\u003c\/b\u003e Exploration de stratégies pour la classification des stimuli externes utilisant les caractéristiques statistiques de la réponse électrique des plantes. \u003ci\u003eJournal of The Royal Society Interface\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e12\u003c\/i\u003e(104), 20141225–20141225. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1098\/rsif.2014.1225\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1098\/rsif.2014.1225\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003ePan, X., Zhang, Z., Huang, Y.-Y., Zhao, J., \u0026amp; Wang, L. (2015).\u003c\/b\u003e Effets électrophysiologiques du dexmédétomidine sur les nœuds sino-auriculaires de lapins. \u003ci\u003eActa Cardiologica Sinica\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e31\u003c\/i\u003e(6), 543–549. Consulté sur \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/27122920\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/27122920\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eHuang, J., Dosdall, D. J., Cheng, K., Li, L., Rogers, J. M., \u0026amp; Ideker, R. E. (2014).\u003c\/b\u003e L'importance de l'activation de Purkinje dans la fibrillation ventriculaire de longue durée. \u003ci\u003eJournal of the American Heart Association\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e3\u003c\/i\u003e(1), e000495. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1161\/JAHA.113.000495\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1161\/JAHA.113.000495\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eAltamirano, F., Eltit, J. M., Robin, G., Linares, N., Ding, X., Pessah, I. N., … López, J. R. (2014).\u003c\/b\u003e L'influx de Ca \u003csup\u003e2+\u003c\/sup\u003e via l'échangeur Na \u003csup\u003e+\u003c\/sup\u003e \/Ca \u003csup\u003e2+\u003c\/sup\u003e est augmenté dans le muscle squelettique atteint d'hyperthermie maligne. \u003ci\u003eJournal of Biological Chemistry\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e289\u003c\/i\u003e(27), 19180–19190. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1074\/jbc.M114.550764\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1074\/jbc.M114.550764\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eAltamirano, F., Perez, C. F., Liu, M., Widrick, J., Barton, E. R., Allen, P. D., … Lopez, J. R. (2014).\u003c\/b\u003e L'accélération périodique du corps entier est une thérapie efficace pour améliorer la dystrophie musculaire chez les souris mdx. \u003ci\u003ePLoS ONE\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e9\u003c\/i\u003e(9), e106590. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0106590\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0106590\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eLiu, D.-H., Huang, X., Guo, X., Meng, X.-M., Wu, Y.-S., Lu, H.-L., … Xu, W.-X. (2014).\u003c\/b\u003e Remodelage des canaux potassiques dépendants du voltage dans l'hypertrophie du muscle lisse intestinal murin induite par une obstruction partielle. \u003ci\u003ePLoS ONE\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e9\u003c\/i\u003e(2), e86109. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0086109\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0086109\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eMousavi, S. A. R., Chauvin, A., Pascaud, F., Kellenberger, S., \u0026amp; Farmer, E. E. (2013). \u003c\/b\u003eLes gènes GLUTAMATE RECEPTOR-LIKE médiatisent la signalisation de blessure feuille à feuille. \u003ci\u003eNature\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e500\u003c\/i\u003e(7463), 422–426. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1038\/nature12478\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1038\/nature12478\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eAltamirano, F., Valladares, D., Henríquez-Olguín, C., Casas, M., López, J. R., Allen, P. D., \u0026amp; Jaimovich, E. (2013).\u003c\/b\u003e Le traitement par nifédipine réduit la concentration calcique au repos, l'expression des gènes oxydatifs et apoptotiques, et améliore la fonction musculaire chez les souris mdx dystrophiques. \u003ci\u003ePLoS ONE\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e8\u003c\/i\u003e(12), e81222. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0081222\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0081222\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eChen, J., Du, L., Xiao, Y.-T., \u0026amp; Cai, W. (2013).\u003c\/b\u003e Perturbation des réseaux de cellules interstitielles de Cajal après une résection massive de l'intestin grêle. \u003ci\u003eWorld Journal of Gastroenterology\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e19\u003c\/i\u003e(22), 3415. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.3748\/wjg.v19.i22.3415\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.3748\/wjg.v19.i22.3415\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eEltit, J. M., Ding, X., Pessah, I. N., Allen, P. D., \u0026amp; Lopez, J. R. (2013).\u003c\/b\u003e Les canaux cationiques sarcolémmaux non spécifiques sont essentiels pour la pathogenèse de l'hyperthermie maligne. \u003ci\u003eThe FASEB Journal\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e27\u003c\/i\u003e(3), 991–1000. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1096\/fj.12-218354\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1096\/fj.12-218354\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eHafke, J. B., Höll, S.-R., Kühn, C., \u0026amp; van Bel, A. J. E. (2013).\u003c\/b\u003e Approche électrophysiologique pour déterminer les paramètres cinétiques de l'absorption du saccharose par des éléments criblés uniques ou des cellules parenchymateuses du phloème dans des plantes intactes de Vicia faba. \u003ci\u003eFrontiers in Plant Science\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e4\u003c\/i\u003e, 274. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.3389\/fpls.2013.00274\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.3389\/fpls.2013.00274\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eGuo, X., Huang, X., Wu, Y., Liu, D., Lu, H., Kim, Y., … Xu, W. (2012).\u003c\/b\u003e La régulation à la baisse de la biosynthèse du sulfure d'hydrogène accompagne la dysfonction des cellules interstitielles de Cajal murines dans l'obstruction iléale partielle. \u003ci\u003ePLoS ONE\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e7\u003c\/i\u003e(11), e48249. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0048249\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0048249\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eUEHLEIN, N., SPERLING, H., HECKWOLF, M., \u0026amp; KALDENHOFF, R. (2012).\u003c\/b\u003e L'aquaporine PIP1;2 d'Arabidopsis régule l'absorption cellulaire de CO2. \u003ci\u003ePlant, Cell \u0026amp; Environment\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e35\u003c\/i\u003e(6), 1077–1083. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1111\/j.1365-3040.2011.02473.x\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1111\/j.1365-3040.2011.02473.x\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eAltamirano, F., López, J. R., Henríquez, C., Molinski, T., Allen, P. D., \u0026amp; Jaimovich, E. (2012).\u003c\/b\u003e L'augmentation du calcium intracellulaire au repos module l'expression génique de la synthase inductible de l'oxyde nitrique dépendante de NF-κB dans les myotubes dystrophiques \u003ci\u003emdx\u003c\/i\u003e. \u003ci\u003eJournal of Biological Chemistry\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e287\u003c\/i\u003e(25), 20876–20887. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1074\/jbc.M112.344929\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1074\/jbc.M112.344929\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eHamaguchi, K., Yamamoto, N., Nakagawa, T., Furuyashiki, T., Narumiya, S., \u0026amp; Ito, J. (2012).\u003c\/b\u003e Rôle du récepteur de type PGE4 dans la fonction auditive et la perte auditive induite par le bruit chez la souris. \u003ci\u003eNeuropharmacology\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e62\u003c\/i\u003e(4), 1841–1847. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/j.neuropharm.2011.12.007\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/j.neuropharm.2011.12.007\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eArmstrong, G. A. B., Rodríguez, E. C., \u0026amp; Meldrum Robertson, R. (2012).\u003c\/b\u003e L'acclimatation au froid module l'homéostasie du K+ dans le cerveau de Drosophila melanogaster pendant le coma froid. \u003ci\u003eJournal of Insect Physiology\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e58\u003c\/i\u003e(11), 1511–1516. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/J.JINSPHYS.2012.09.006\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/J.JINSPHYS.2012.09.006\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eTsai, C.-F., Chen, Y.-C., Lin, Y.-K., Chen, S.-A., \u0026amp; Chen, Y.-J. (2011).\u003c\/b\u003e Effets électromécaniques de l'inhibiteur direct de la rénine (aliskiren) sur la veine pulmonaire et l'oreillette. \u003ci\u003eBasic Research in Cardiology\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e106\u003c\/i\u003e(6), 979–993. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1007\/s00395-011-0206-8\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1007\/s00395-011-0206-8\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eHan, Y., Huang, X., Guo, X., Wu, Y., Liu, D., Lu, H., … Xu, W. (2011). \u003c\/b\u003ePreuve que le sulfure d'hydrogène endogène exerce un effet excitateur sur la motilité gastrique chez la souris. \u003ci\u003eEuropean Journal of Pharmacology\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e673\u003c\/i\u003e(1–3), 85–95. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/j.ejphar.2011.10.018\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/j.ejphar.2011.10.018\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eHaugan, B. M., Halberg, K. A., Jespersen, Å., Prehn, L. R., \u0026amp; Møbjerg, N. (2010).\u003c\/b\u003e Caractérisation fonctionnelle de l'uretère primaire des vertébrés : Structure et mécanismes de transport ionique du conduit pronéphrique chez les larves d'axolotl (Amphibia). \u003ci\u003eBMC Developmental Biology\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e10\u003c\/i\u003e(1), 56. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1186\/1471-213X-10-56\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1186\/1471-213X-10-56\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eLi, H., Ding, X., Lopez, J. R., Takeshima, H., Ma, J., Allen, P. D., \u0026amp; Eltit, J. M. (2010).\u003c\/b\u003e L'entrée de Ca \u003csup\u003e2+\u003c\/sup\u003e au repos médiée par Orai1 altérée réduit la concentration cytosolique en [Ca \u003csup\u003e2+\u003c\/sup\u003e ] et le chargement en Ca \u003csup\u003e2+\u003c\/sup\u003e du réticulum sarcoplasmique dans les myotubes Junctophilin 1 Knock-out au repos. \u003ci\u003eJournal of Biological Chemistry\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e285\u003c\/i\u003e(50), 39171–39179. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1074\/jbc.M110.149690\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1074\/jbc.M110.149690\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eRuonala, R., Rinne, P. L. H., Kangasjarvi, J., \u0026amp; van der Schoot, C. (2008). \u003c\/b\u003eL'expression de CENL1 dans le méristème de la côte affecte l'élongation de la tige et la transition vers la dormance chez Populus. \u003ci\u003eTHE PLANT CELL ONLINE\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e20\u003c\/i\u003e(1), 59–74. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1105\/tpc.107.056721\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1105\/tpc.107.056721\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eKeller, C. P., Barkosky, R. R., Seil, J. E., Mazurek, S. A., \u0026amp; Grundstad, M. L. (2008).\u003c\/b\u003e Réponse électrique des racines de Phaseolus vulgaris à une exposition brutale à l'hydroquinone. \u003ci\u003ePlant Signaling \u0026amp; Behavior\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e3\u003c\/i\u003e(9), 633–640. Consulté sur \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/19513254\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/19513254\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eMcDonnell, B., Hamilton, R., Fong, M., Ward, S. M., \u0026amp; Keef, K. D. (2008). \u003c\/b\u003ePreuve fonctionnelle d'une transmission neuromusculaire inhibitrice purinergique dans le sphincter anal interne de la souris. \u003ci\u003eAmerican Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e294\u003c\/i\u003e(4), G1041–G1051. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1152\/ajpgi.00356.2007\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1152\/ajpgi.00356.2007\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eLew, R. R. (2007).\u003c\/b\u003e Courants ioniques et flux d'ions dans les hyphes de Neurospora crassa. \u003ci\u003eJournal of Experimental Botany\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e58\u003c\/i\u003e(12), 3475–3481. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1093\/jxb\/erm204\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1093\/jxb\/erm204\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003ePatterson, E., Po, S. S., Scherlag, B. J., \u0026amp; Lazzara, R. (2005).\u003c\/b\u003e Déclenchement de décharges dans les veines pulmonaires initié par une stimulation nerveuse autonome in vitro. \u003ci\u003eHeart Rhythm\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e2\u003c\/i\u003e(6), 624–631. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/j.hrthm.2005.02.012\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/j.hrthm.2005.02.012\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eCho, S. Y., Beckett, E. A., Baker, S. A., Han, I., Park, K. J., Monaghan, K., … Koh, S. D. (2005).\u003c\/b\u003e Une conductance potassique sensible au pH (TASK) et sa fonction dans le tractus gastro-intestinal murin. \u003ci\u003eThe Journal of Physiology\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e565\u003c\/i\u003e(Pt 1), 243–259. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1113\/jphysiol.2005.084574\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1113\/jphysiol.2005.084574\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eKreindler, J. L., Jackson, A. D., Kemp, P. A., Bridges, R. J., \u0026amp; Danahay, H. (2005). \u003c\/b\u003eInhibition de la sécrétion de chlorure dans les cellules épithéliales bronchiques humaines par l'extrait de fumée de cigarette. \u003ci\u003eAmerican Journal of Physiology-Lung Cellular and Molecular Physiology\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e288\u003c\/i\u003e(5), L894–L902. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1152\/ajplung.00376.2004\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1152\/ajplung.00376.2004\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eVerheule, S., Sato, T., Everett, T., Engle, S. K., Otten, D., Rubart-von der Lohe, M., … Olgin, J. E. (2004).\u003c\/b\u003e Augmentation de la vulnérabilité à la fibrillation atriale chez des souris transgéniques présentant une fibrose atriale sélective causée par la surexpression de TGF-β1. \u003ci\u003eCirculation Research\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e94\u003c\/i\u003e(11), 1458–1465. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1161\/01.RES.0000129579.59664.9d\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1161\/01.RES.0000129579.59664.9d\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eHwang, H.-R., Shen, Y.-F., Chen, Y.-C., Liu, C.-P., \u0026amp; Lin, C.-I. (2004). \u003c\/b\u003eEffets de l'acide cyclopiazonique sur les activités déclenchées dans le muscle ventriculaire et les cardiomyocytes isolés de cœurs de hamster. \u003ci\u003eThe Chinese Journal of Physiology\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e47\u003c\/i\u003e(3), 137–142. Consulté sur \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/15612531\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/15612531\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eErmilov, L. G., Schmalz, P. F., Miller, S. M., \u0026amp; Szurszewski, J. H. (2004).\u003c\/b\u003e Modulation par le PACAP du réflexe côlon-ganglion mésentérique inférieur chez le cobaye. \u003ci\u003eThe Journal of Physiology\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e560\u003c\/i\u003e(1), 231–247. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1113\/jphysiol.2004.070060\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1113\/jphysiol.2004.070060\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eBruusgaard, J. C., Liestøl, K., Ekmark, M., Kollstad, K., \u0026amp; Gundersen, K. (2003).\u003c\/b\u003e Nombre et distribution spatiale des noyaux dans les fibres musculaires de souris normales étudiées in vivo. \u003ci\u003eThe Journal of Physiology\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e551\u003c\/i\u003e(Pt 2), 467–478. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1113\/jphysiol.2003.045328\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1113\/jphysiol.2003.045328\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eLennon, V. A., Ermilov, L. G., Szurszewski, J. H., \u0026amp; Vernino, S. (2003).\u003c\/b\u003e Immunisation avec le récepteur nicotinique neuronal de l'acétylcholine induit une maladie auto-immune neurologique. \u003ci\u003eThe Journal of Clinical Investigation\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e111\u003c\/i\u003e(6), 907–913. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1172\/JCI17429\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1172\/JCI17429\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eChen, Y. J., Chen, S. A., Chang, M. S., \u0026amp; Lin, C. I. (2000).\u003c\/b\u003e Activité arythmogène du muscle cardiaque dans les veines pulmonaires du chien : implication pour la genèse de la fibrillation atriale. \u003ci\u003eCardiovascular Research\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e48\u003c\/i\u003e(2), 265–273. Consulté sur \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/11054473\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/11054473\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eWard, S. M., Beckett, E. A., Wang, X., Baker, F., Khoyi, M., \u0026amp; Sanders, K. M. (2000).\u003c\/b\u003e Les cellules interstitielles de Cajal médiatisent la neurotransmission cholinergique des neurones moteurs entériques. \u003ci\u003eThe Journal of Neuroscience : The Official Journal of the Society for Neuroscience\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e20\u003c\/i\u003e(4), 1393–1403. Consulté sur \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/10662830\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/10662830\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eKilb, W., \u0026amp; Schlue, W. R. (1999).\u003c\/b\u003e Mécanisme de l'acidification intracellulaire induite par la kainate dans les neurones de Retzius de la sangsue. \u003ci\u003eBrain Research\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e824\u003c\/i\u003e(2), 168–182. Consulté sur \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/10196447\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/10196447\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eHara, M., Shvilkin, A., Rosen, M. R., Danilo, P., \u0026amp; Boyden, P. A. (1999).\u003c\/b\u003e Potentiels d'action en état stable et non stable dans l'oreillette canine fibrillante : adaptation anormale à la fréquence et ses mécanismes possibles. \u003ci\u003eCardiovascular Research\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e42\u003c\/i\u003e(2), 455–469. Récupéré de \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/10533581\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/10533581\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eMuto, S., Asano, Y., Seldin, D., \u0026amp; Giebisch, G. (1999).\u003c\/b\u003e La pompe Na+ basolatérale module les conductances apicales Na+ et K+ dans les tubules collecteurs corticaux de lapin. \u003ci\u003eThe American Journal of Physiology\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e276\u003c\/i\u003e(1 Pt 2), F143-58. Récupéré de \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/9887090\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/9887090\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eHara, M., Danilo, P. R., \u0026amp; Rosen, M. R. (1998).\u003c\/b\u003e Effets des stéroïdes gonadiques sur la repolarisation ventriculaire et sur la réponse à E4031. \u003ci\u003eIndéfini\u003c\/i\u003e. Récupéré de \u003ca href=\"https:\/\/www.semanticscholar.org\/paper\/Effects-of-gonadal-steroids-on-ventricular-and-on-Hara-Danilo\/1be02ac45630bf87ec224f8484890f68981572e3\"\u003ehttps:\/\/www.semanticscholar.org\/paper\/Effects-of-gonadal-steroids-on-ventricular-and-on-Hara-Danilo\/1be02ac45630bf87ec224f8484890f68981572e3\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eWelsh, D. G., Jackson, W. F., \u0026amp; Segal, S. S. (1998).\u003c\/b\u003e L'oxygène induit un couplage électromécanique dans les cellules musculaires lisses artériolaires : un rôle pour les canaux Ca \u003csup\u003e2+\u003c\/sup\u003e de type L. \u003ci\u003eAmerican Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e274\u003c\/i\u003e(6), H2018–H2024. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1152\/ajpheart.1998.274.6.H2018\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1152\/ajpheart.1998.274.6.H2018\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eKuwana, S., Okada, Y., \u0026amp; Natsui, T. (1998).\u003c\/b\u003e Effets du calcium et du magnésium extracellulaires sur le contrôle respiratoire central dans le tronc cérébral-moelle épinière du rat nouveau-né. \u003ci\u003eBrain Research\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e786\u003c\/i\u003e(1–2), 194–204. Récupéré de \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/9555011\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/9555011\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eBotha, C. E. J., \u0026amp; Cross, R. H. M. (1997).\u003c\/b\u003e Fréquence des plasmodesmes en relation avec le transport à courte distance et le chargement du phloème dans les feuilles d'orge (Hordeum vulgare). Le phloème n'est pas chargé directement depuis le symplasme. \u003ci\u003ePhysiologia Plantarum\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e99\u003c\/i\u003e(3), 355–362. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1111\/j.1399-3054.1997.tb00547.x\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1111\/j.1399-3054.1997.tb00547.x\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eKeef, K. D., Murray, D. C., Sanders, K. M., \u0026amp; Smith, T. K. (1997).\u003c\/b\u003e La libération basale d'oxyde nitrique induit un motif moteur oscillatoire dans le côlon canin. \u003ci\u003eThe Journal of Physiology\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e499 ( Pt 3)\u003c\/i\u003e(Pt 3), 773–786. Récupéré de \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/9130172\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/9130172\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eFelle, H. H., \u0026amp; Hepler, P. K. (1997).\u003c\/b\u003e Le gradient de concentration cytosolique de Ca2+ des poils racinaires de Sinapis alba révélé par des tests au microélectrode sélective au Ca2+ et l’imagerie par rapport Fura-Dextran. \u003ci\u003ePhysiologie végétale\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e114\u003c\/i\u003e(1), 39–45. Consulté sur \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/12223687\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/12223687\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eLu, G., Qian, X., Berezin, I., Telford, G. L., Huizinga, J. D., \u0026amp; Sarna, S. K. (1997). \u003c\/b\u003eL’inflammation module in vitro l’activité myoélectrique et contractile colique ainsi que les cellules interstitielles de Cajal. \u003ci\u003eLe Journal américain de physiologie\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e273\u003c\/i\u003e(6 Pt 1), G1233-45. Consulté sur \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/9435548\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/9435548\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eWang, R., \u0026amp; Crawford, N. M. (1996).\u003c\/b\u003e Identification génétique d’un gène impliqué dans le transport constitutif à haute affinité du nitrate chez les plantes supérieures. \u003ci\u003eActes de l’Académie nationale des sciences des États-Unis d’Amérique\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e93\u003c\/i\u003e(17), 9297–9301. 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(1993).\u003c\/b\u003e Régulation nerveuse inhibitrice entérique du muscle circulaire du côlon humain : rôle de l’oxyde nitrique. \u003ci\u003eGastroentérologie\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e105\u003c\/i\u003e(4), 1009–1016. \u003ca href=\"https:\/\/pubmed.ncbi.nlm.nih.gov\/8104837\/\" target=\"_blank\" rel=\"noopener\"\u003ehttps:\/\/pubmed.ncbi.nlm.nih.gov\/8104837\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eStark, M. E., Bauer, A. J., \u0026amp; Szurszewski, J. H. (1991).\u003c\/b\u003e Effet de l’oxyde nitrique sur le muscle circulaire de l’intestin grêle canin. \u003ci\u003eLe Journal de Physiologie\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e444\u003c\/i\u003e, 743–761. Consulté sur \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/1688034\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/1688034\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eButt, A. M., Jones, H. C., \u0026amp; Abbott, N. J. (1990). \u003c\/b\u003eRésistance électrique à travers la barrière hémato-encéphalique chez des rats anesthésiés : une étude développementale. \u003ci\u003eLe Journal de Physiologie\u003c\/i\u003e, \u003ci\u003e429\u003c\/i\u003e, 47–62. Consulté sur \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/2277354\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/2277354\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cb\u003eWright, J. P., Fisher, D. B., Kelling, F., Furch, A. C. U., Gaupels, F., \u0026amp; Bel, A. J. E. van. 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