{"product_id":"evom3-epithelial-volt-ohm-teer-meter-3","title":"Compteur EVOM Épithélial Volt\/Ohm (TEER) 3 - ARRÊTÉ","description":"\u003c!-- section:details --\u003e\n\u003ch2\u003eMesure TEER avec enregistrement automatique des données\u003c\/h2\u003e\n\u003cul\u003e\n\u003cli\u003eConception à faible bruit offrant une meilleure résolution et précision\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eMoyennage automatique 20X des échantillons améliorant la précision et la stabilité\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eCourants de mesure fixes réglables (2, 4 ou 10 μA)\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003ePlage automatique de résistance de 1 Ω à 100 000 Ω ou avec trois plages de courant fixes\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eConception fiable à faible courant et basse tension empêchant le transport d'ions métalliques\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eStabilisation rapide de la résistance à de faibles niveaux sous 200 Ω avec une résolution de 0,1 Ω\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eSupport inclinable ergonomique pour une utilisation sans éblouissement\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eAffichage graphique des plaques populaires (6, 12, 24, 96) pour l'analyse des tendances\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eL'affichage montre le dernier ensemble de paramètres\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eFonctionnement automatique d'indexation des plaques avec ou sans soustraction du puits témoin pour les mesures de résistance et de différence de potentiel (PD)\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eEnregistrement continu des données via USB (PC, Mac, Linux)\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eEnregistre les données horodatées dans un fichier lisible par tableur sur une clé USB\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eMicrologiciel évolutif\u003c\/li\u003e\n\u003c\/ul\u003e\n\u003ch2\u003eEVOM3 surveille la santé cellulaire\u003c\/h2\u003e\n\u003cp style=\"text-align: left;\"\u003eLe système EVOM de WPI est populaire dans la communauté de recherche, et il est couramment utilisé pour l'évaluation de la santé cellulaire des mammifères en mesurant la résistance électrique transepitheliale\/transendothéliale (TEER ou TER) des couches cellulaires. \u003c\/p\u003e\n\u003cdiv class=\"category-view\"\u003e\n\u003cdiv class=\"category-description\"\u003e\n\u003cp\u003eL'EVOM3 fonctionne selon le même principe de base que les anciens modèles EVOM (EVOMX, EVOM et EVOM2). Il dispose de fonctionnalités avancées pour réaliser les expériences plus facilement. Avec le nouvel écran tactile, vous pouvez maintenant STOCKER LES DONNÉES sous Microsoft\u003csup\u003e®\u003c\/sup\u003e Fichiers Excel sur une clé USB. Il suffit de retirer la clé USB avec toutes vos données enregistrées depuis l'EVOM3 et de la brancher sur un ordinateur pour accéder à vos données et les tracer. C'est aussi simple que cela.\u003c\/p\u003e\n\u003c\/div\u003e\n\u003c\/div\u003e\n\u003ch2\u003eTEER : Voie transcellulaire \u0026 paracellulaire du flux d'ions ou de courant électrique\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003eLes ions et le courant électrique peuvent être transportés à travers les cellules (transcellulaire) et à travers l'espace entre les cellules adjacentes (paracellulaire) comme illustré dans l'image ci-dessous. \u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cimg width=\"900\" alt=\"Voie transcellulaire et paracellulaire du flux d'ions ou de courant électrique selon Evom\" src=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/EVOM3_transcellular-paracellular_e80776b8-f72d-4833-9396-72d2307fd0d8.jpg?v=1765952794\" style=\"display: block; margin-left: auto; margin-right: auto;\"\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003eLes lignes pointillées montrent la voie transcellulaire du flux d'ions ou de courant électrique. Les lignes pleines démontrent la voie paracellulaire du flux d'ions ou de courant.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e  \u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003ePrincipe de fonctionnement de base de la mesure TEER EVOM3\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003eLa résistance électrique (c.-à-d. TEER) d'une couche cellulaire est la présentation inverse de la conductance électrique à travers la couche cellulaire. Une valeur TEER élevée de la couche cellulaire indique un monocouche cellulaire intacte et suggère une perméabilité faible ou restreinte aux ions et aux molécules (c.-à-d. faible conductance). De même, une diminution de la valeur TEER suggère une fonction de barrière compromise et indique une perméabilité accrue. Les études de perméabilité tissulaire nécessitent une couche cellulaire confluente, et la mesure TEER est généralement utilisée pour confirmer la formation d'un monocouche confluente. \u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cimg height=\"188\" width=\"900\" alt=\"Principe de fonctionnement de base de l'EVOM pour mesurer TEER\" src=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/EVOM3_working_principle_2_aa5e96e1-b567-4480-b72c-f4083eaa0667.jpg?v=1765952800\" style=\"display: block; margin-left: auto; margin-right: auto;\"\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003eInitialement, 24 heures après l'ensemencement des cellules dans le transwell, les valeurs TEER sont généralement faibles, car le courant peut passer facilement entre les cellules. Avec le temps, les cellules se multiplient et commencent à couvrir les espaces. Finalement, une monocouche cellulaire confluente est formée. À ce moment, la membrane perméable est entièrement recouverte de cellules et ne permet pas le passage facile du courant électrique. Cela se traduit par une valeur TEER élevée.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e  \u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eMesure TEER des types cellulaires perméables et serrés\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003eLes valeurs TEER des monocouches cellulaires confluentes peuvent varier selon le type cellulaire. Les monocouches de certains types cellulaires (par exemple, type cellulaire A), qui montrent normalement de faibles valeurs TEER, ont généralement des jonctions serrées relativement \u003cem\u003eperméables\u003c\/em\u003e. Les monocouches d'autres types cellulaires (par exemple, type cellulaire B) montrent des valeurs TEER élevées, et ces types cellulaires sont connus pour avoir des jonctions serrées \u003cem\u003eétanches\u003c\/em\u003e. Il est connu que les ions et les molécules passent assez facilement à travers les couches cellulaires perméables comparées aux couches cellulaires plus serrées. La présence de plus de canaux ioniques transcellulaires sur les cellules peut permettre un flux plus facile d'ions ou de courant électrique via la voie transcellulaire, ce qui peut en outre diminuer les valeurs TEER.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003cimg height=\"230\" width=\"900\" alt=\"Types cellulaires perméables et serrés\" src=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/EVOM3_leaky_tight_cell_types_8c3646d3-d36e-40be-8828-5d82e6b6efc1.jpg?v=1765952805\" style=\"display: block; margin-left: auto; margin-right: auto;\"\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003eLe type cellulaire A permet à des quantités plus importantes de courant et d'ions de passer entre les cellules et donne une faible valeur TEER. Avec ses jonctions \u003cem\u003eplus serrées\u003c\/em\u003e, les monocouches cellulaires de type B afficheront une valeur TEER plus élevée. Bien que les deux monocouches soient confluentes, les valeurs de résistance TEER peuvent être nettement différentes selon la nature même des cellules. \u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e  \u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003ePourquoi choisir le système EVOM de WPI ?\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003eWPI a été le pionnier dans l'introduction de la technique simplifiée de mesure TEER utilisant EVOM, et à ce jour, le système EVOM de WPI reste l'appareil le plus populaire pour mesurer les valeurs TEER dans les transwells. L'EVOM3 est la version la plus récente des voltmètres épithéliaux, avec plusieurs fonctionnalités avancées. L'EVOM3 dispose d'une interface tactile qui le rend simple à utiliser. La mesure TEER avec un EVOM est une méthode non invasive de surveillance de la santé cellulaire. L'EVOM3 avec la nouvelle électrode STX2PLUS offre une analyse d'échantillon plus précise et des fonctionnalités de stockage rapide et simple des données via une clé USB.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cimg height=\"232\" width=\"900\" alt=\"Pourquoi choisir l'EVOM3 de WPI\" src=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/EVOM3-why_choose-icons_2_0755580d-3bd7-4aef-8ae2-747f03030ea8.png?v=1765952812\" style=\"display: block; margin-left: auto; margin-right: auto;\"\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003ePour une analyse quantitative des échantillons avec une plus grande précision et un stockage facile des données, considérez EVOM3. La méthode non invasive de détection EVOM3 permet d'utiliser le même échantillon pour d'autres analyses expérimentales.  \u003c\/p\u003e\n\u003c!--End mc_embed_signup--\u003e\n\u003ch2\u003eEVOM3 TEER : Applications clés\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003eVoici trois applications où la mesure TEER est couramment utilisée. Lors de la mesure de la fonction de barrière cellulaire, l’augmentation des valeurs TEER est généralement corrélée à une fonction de barrière accrue. De même, l’élévation de la valeur TEER au niveau maximal peut indiquer que la couche cellulaire a atteint la confluence. La cytotoxicité cellulaire peut être évaluée en mesurant le TEER. Des valeurs TEER élevées indiquent une couche cellulaire en meilleure santé. À mesure que les cellules meurent, des lacunes peuvent se former dans la couche cellulaire, et la valeur TEER peut chuter.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003cimg height=\"229\" width=\"900\" alt=\"Applications clés de l’EVOM3, Barrière cellulaire, Croissance de la confluence cellulaire, Cytotoxicité\" src=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/EVOM3-key_applications_4900869a-eeae-4c6a-903a-b34e1792d6e3.jpg?v=1765952818\" style=\"display: block; margin-left: auto; margin-right: auto;\"\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e  \u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eEVOM3 TEER : Domaines d’application émergents\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003eLe système EVOM de WPI a été largement utilisé pour étudier la santé et la fonction des tissus 2D ou 3D \u003cem\u003ein vitro\u003c\/em\u003e. Ces dernières années, pour le criblage médicamenteux à haut débit et l’étude des maladies, la recherche s’est davantage concentrée sur la création de tissus 3D \u003cem\u003ein vitro\u003c\/em\u003e qui ressemblent aux tissus \u003cem\u003ein vivo\u003c\/em\u003e et présentent des propriétés fonctionnelles cohérentes. La mesure TEER est utilisée comme l’une des méthodes pour évaluer et comparer la capacité des tissus \u003cem\u003ein vitro\u003c\/em\u003e à imiter de manière constante les tissus \u003cem\u003ein vivo\u003c\/em\u003e. L’EVOM3 peut être utilisé dans des modèles 3D \u003cem\u003ein vitro\u003c\/em\u003e, tels que la barrière hémato-encéphalique (BBB), l’infection par le virus Ling, ainsi que les tissus intestinaux, rénaux et hépatiques. \u003ca href=\"\/fr\/#References\"\u003eLa section \u003cem\u003eRéférences\u003c\/em\u003e liste quelques publications sélectionnées.\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003cimg height=\"233\" width=\"900\" alt=\"EVOM3 Domaines d’application émergents, Vérification de la fonction tissulaire 3D, Modèle d’absorption médicamenteuse Caco-2, barrière hémato-encéphalique, transport épithélial rénal\" src=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/EVOM3-emerging_application_fields_98a820ce-e59f-4229-a66a-96b6c168451a.png?v=1765952824\" style=\"display: block; margin-left: auto; margin-right: auto;\"\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003e\u003ca rel=\"noopener\" href=\"\/fr\/blog\/post\/significance-of-teer-measurement-in-lung\" target=\"_blank\"\u003e\u003cimg height=\"252\" width=\"900\" alt=\"Lisez notre blog sur les modèles pulmonaires in vitro. Saviez-vous que : vous pouvez utiliser EVOM pour mesurer la différence de potentiel transepitheliale (TEPD) en plus de la mesure TEER\" src=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/evom3-read-our-blog-in-vitro_1_b5db9396-038a-4280-9060-a321a36b4728.png?v=1765952830\" style=\"display: block; margin-left: auto; margin-right: auto;\"\u003e\u003c\/a\u003e\u003c\/h2\u003e\n\u003ch2 style=\"text-align: center;\"\u003e\u003cspan style=\"font-size: 14pt;\"\u003e\u003ca rel=\"noopener\" href=\"\/fr\/blog\/post\/significance-of-teer-measurement-in-lung\" target=\"_blank\"\u003e\u003cspan class=\"pdf-button\"\u003e\u003cstrong\u003eEN SAVOIR PLUS\u003c\/strong\u003e\u003c\/span\u003e\u003c\/a\u003e\u003c\/span\u003e\u003c\/h2\u003e\n\u003ch2\u003eVIDÉOS \u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003eDe courtes vidéos mettent en avant certaines des principales nouveautés de l’EVOM3. Cliquez sur l’onglet \u003cstrong\u003eRessources\u003c\/strong\u003e \u003ca href=\"\/fr\/evom3-epithelial-volt-ohm-teer-meter-3#application.notes\"\u003e \u003c\/a\u003ede cette page pour voir toutes les vidéos EVOM3.\u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003ePlus sur la physiologie épithéliale \u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003eWPI propose une gamme de produits pour l’étude de la physiologie épithéliale, incluant une variété d’électrodes, les compteurs EVOM et le système robotisé automatisé pour le criblage à haut débit (HTS). Découvrez les détails sur les options d’électrodes dans l’article « \u003ca rel=\"noopener\" href=\"\/fr\/blog\/post\/select-electrodes-for-making-teer-measurements\" title=\"Sélectionner les électrodes TEER\" target=\"_blank\"\u003eComment sélectionner les électrodes pour effectuer des mesures TEER\u003c\/a\u003e. »\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003ca rel=\"noopener\" href=\"\/fr\/blog\/post\/select-electrodes-for-making-teer-measurements\" target=\"_blank\"\u003e\u003cimg width=\"900\" alt=\"Evom3 Lisez notre blog sur la gamme de produits WPI concernant la mesure TEER (EVOM - Electrode REMS)\" src=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/evom3-read-our-blog-2_56b637a1-3285-43b3-99e4-a5470b5b896e.png?v=1765952836\" style=\"display: block; margin-left: auto; margin-right: auto;\"\u003e\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cspan style=\"text-align: center;\"\u003e \u003c\/span\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003c!--End mc_embed_signup--\u003e\n\u003ch2\u003eAvantages\u003c\/h2\u003e\n\u003cul\u003e\n\u003cli\u003eÉlimine les erreurs et réduit le temps de traitement expérimental\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eL’enregistrement automatique des données élimine la nécessité de suivre les données manuellement\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eLa petite taille permet de libérer plus d’espace sur le plan de travail\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eCalibration et vérification faciles\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003ePédale pour enregistrement mains libres\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003ePrévenez la perte de données grâce à la sauvegarde automatique et à la récupération des données lorsque la batterie est faible\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eLe TEER se calcule facilement en appliquant une formule par unité de surface à la résistance\u003c\/li\u003e\n\u003c\/ul\u003e\n\u003ch2\u003eApplications\u003c\/h2\u003e\n\u003cul\u003e\n\u003cli\u003eMesurer les tissus épithéliaux ou endothéliaux pour la confluence, TEER et la différence de potentiel\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eÉtudes de perméabilité, conductance et médicaments\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eSurveillance numérique continue d'une membrane cible\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eÉtudes courantes\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eTransport à travers la barrière hémato-encéphalique\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eÉtudes de tissus épithéliaux pulmonaires\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eÉtudes de tissus intestinaux\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eÉtudes cutanées\u003c\/li\u003e\n\u003c\/ul\u003e\n\u003ch2\u003eEVOM3 pour la mesure TEER\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003eL'EVOM3 offre une meilleure efficacité de travail, des mesures plus stables et répétables par rapport aux compteurs traditionnels de Résistance Électrique Transépithéliale (TEER). Fournissant aux utilisateurs un retour vital pendant les mesures expérimentales, le grand écran de l'EVOM3 propose plusieurs vues informatives. Les nouveaux affichages graphiques pour l'analyse des tendances et les valeurs de mesure aident les scientifiques à appliquer une méthodologie simple et progressive lors des mesures expérimentales. L'interface tactile offre aux utilisateurs un menu intuitif et facile à utiliser pour la configuration.\u003cbr\u003eÉliminant le besoin de consigner les données manuellement, l'EVOM3 écrit les informations de résistance ou de tension sur une clé USB au format CSV pour un transfert facile vers des tableurs et des programmes d'analyse de données. Utilisé avec l'interrupteur au pied, il permet un enregistrement mains libres des mesures.\u003cbr\u003eAu cœur de l'EVOM3 se trouve notre dernier processeur et circuit, offrant aux utilisateurs des lectures rapides, faciles et fiables grâce à sa stabilisation rapide, sa moyenne automatique sur vingt échantillons et son faible bruit. La fonction de résistance à plage automatique permet des mesures rapides, et l'affichage de dépassement de plage élimine les lectures erronées. L'EVOM3 dispose de niveaux de courant réglables dans trois plages fixes avec deux plages inférieures pour membranes sensibles et des plages de haute résistance jusqu'à 100 KΩ.\u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eÉlectrode de mesure TEER\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003eL'électrode STX2-PLUS a été conçue pour une insertion facile dans de nombreuses plaques de 24 puits. Elle est repositionnable dans l'insert pour des mesures répétables et cohérentes. Les nouvelles électrodes blindées sont désormais conçues pour minimiser les interférences électriques et être plus faciles à entretenir.\u003c\/p\u003e\n\u003cul\u003e\n\u003cli\u003eNouvelle électrode STX2-PLUS conçue pour plaques de 12 et 24 puits.\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eÉlectrode autoportante pondérée pour des mesures stables sans les mains\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eCâble blindé pour minimiser les interférences électriques et téléphoniques\u003c\/li\u003e\n\u003c\/ul\u003e\n\u003ch2\u003eComposants du système\u003c\/h2\u003e\n\u003ctable width=\"100%\" class=\"product-table\"\u003e\n\u003ctbody\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003eCe qui est inclus avec l'EVOM3\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eQTE\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003eEVOM3 Voltmètre Ohmètre Épithélial\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e 1\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003eEnsemble d'électrodes STX2-PLUS\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e 1\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e300749 Clé USB 32 Go (Utilisée pour le stockage. Contient également un programme Python 3.8 pour la surveillance numérique continue d'un insert cible).\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e 1\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e503535 Câble USB\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e 1\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e99673 Kit d'étalonnage, Résistance de test 1000Ω\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e 1\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e803025 Cordon d'alimentation A\/C et chargeur\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e 1\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e13142 Interrupteur au pied\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e 1\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003c\/tbody\u003e\n\u003c\/table\u003e\n\u003cp\u003e\u003cstrong\u003eREMARQUE\u003c\/strong\u003e : Un adaptateur d'électrode 99672 EVOM2 vers EVOM3 est vendu séparément. Les STX2, STX3 et tous les STX100 nécessitent l'utilisation de cet adaptateur avec l'EVOM3.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cimg height=\"500\" width=\"500\" alt=\"STX2-Plus\" src=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/EVOM3-kit_897e322f-0036-4646-9bf2-eb94d9f95156.jpg?v=1765952846\"\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eSTX2-Plus\u003c\/h2\u003e\n\u003ch2\u003eAvantages STX2-Plus\u003c\/h2\u003e\n\u003cul\u003e\n\u003cli\u003eBase d’électrode codée pour un positionnement répétable offrant des résultats plus cohérents, éliminant le besoin de lectures multiples.\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eFacile à entretenir\u003c\/li\u003e\n\u003c\/ul\u003e\n\u003cp\u003e\u003cimg height=\"250\" width=\"250\" alt=\"STX2-Plus\" src=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/STX2-PLUS-electrode_e3fe3b9d-403e-4a3e-a5cb-5ad54b48d352.jpg?v=1765952851\"\u003e                      \u003cimg height=\"250\" width=\"250\" alt=\"STX2-Plus\" src=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/stx2-plus-tip_4c84c609-0217-451e-a939-135c9dca8856.jpg?v=1765952857\"\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eComment fonctionne l’EVOM3 ?\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003eLa confluence d’un monocouche cellulaire est déterminée par une augmentation ou un plateau de la résistance tissulaire détectée grâce au circuit électronique unique de l’EVOM3 et à la nouvelle électrode STX2-PLUS. L’EVOM3 mesure qualitativement la santé du monocouche cellulaire et mesure quantitativement la confluence cellulaire. L’EVOM3 produit un courant alternatif faible qui évite les dépôts métalliques sur les électrodes et les effets indésirables sur les tissus qui peuvent autrement être causés par des courants continus plus élevés. L’EVOM3 utilise de faibles courants et tensions et est conçu pour des tests non destructifs de la confluence des monocouches épithéliales en cultures cellulaires. De plus, les lectures de résistance ne sont pas affectées par la capacité de la membrane ni par la tension membranaire. La précision et la répétabilité du système EVOM3-STX2-PLUS font de cet instrument un outil idéal pour les études de perméabilité, PD et autres études détaillées de membranes. \u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eÉlectrodes pour mesure TEER (épithéliale)\u003c\/h2\u003e\n\u003ctable width=\"100%\" class=\"product-table\"\u003e\n\u003ctbody\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003e Réf. #\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eDescriptions\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003eSTX2-PLUS\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003eJeu d’électrodes de remplacement\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e\n\u003ca href=\"\/fr\/stx2-chopstick-electrode-set-for-evom2-4mm\"\u003eSTX2\u003c\/a\u003e*\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003eJeu d’électrodes de remplacement (Nécessite 99672 pour utilisation avec l’EVOM3)\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003eSTX3*\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003eJeu d’électrodes réglable pour puits peu profonds, profondeur 5-9 mm\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e\n\u003ca href=\"\/fr\/3993-electrode-adapter-for-evom2\"\u003e3993\u003c\/a\u003e*\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003eAdaptateur 2 mm pour EVOM2\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003c\/tbody\u003e\n\u003c\/table\u003e\n\u003cp\u003e*(Nécessite \u003ca href=\"\/fr\/99672-evom3-legacy-probe-kit\"\u003e99672\u003c\/a\u003e pour utilisation avec l’EVOM3)\u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eChambres ENDOHM pour mesure endothéliale\/épithéliale\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003eLes nouvelles chambres EndOhm incluent le câble EVOM3 \u003ca href=\"\/fr\/99916-evom3-endohm-cable\"\u003e99916\u003c\/a\u003e.\u003c\/p\u003e\n\u003ctable width=\"100%\" class=\"product-table\"\u003e\n\u003ctbody\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003e Réf. #\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eDescriptions\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e\u003ca href=\"\/fr\/var-2737-cell-culture-cup-chambers-for-teer-measurement\"\u003eENDOHM-6G\u003c\/a\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003eEndOhm pour coupelle de culture de 6 mm (24 puits par plaque)\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e\u003ca href=\"\/fr\/var-2737-cell-culture-cup-chambers-for-teer-measurement\"\u003eENDOHM-12G\u003c\/a\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003eEndOhm pour coupelle de culture de 12 mm (12 puits par plaque)\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e\u003ca href=\"\/fr\/var-2737-cell-culture-cup-chambers-for-teer-measurement\"\u003eENDOHM-24G\u003c\/a\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003eEndOhm pour inserts de 24 mm et coupelle Costar Snapwell (6 puits par plaque)\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003c\/tbody\u003e\n\u003c\/table\u003e\n\u003cp\u003e  \u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003ca href=\"https:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pmc\/articles\/PMC4652793\/\"\u003eTechniques de mesure TEER pour les systèmes modèles de barrières in vitro\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003c!-- \/section:details --\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003c!-- section:resources --\u003e\n\u003cp\u003e\u003ca href=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/EVOM3_BR.pdf\"\u003eBrochure EVOM3\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003ca href=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/EVOM3_QSG.pdf\"\u003eGuide de démarrage rapide\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003ca href=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/EVOM3_IM.pdf\"\u003eManuel d’instructions EVOM3\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003ca href=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/STX2-PLUS_IM.pdf\"\u003eManuel d’instructions STX2-PLUS\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eLogiciel pour EVOM™ Manuel\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003e\u003ca href=\"https:\/\/firebasestorage.googleapis.com\/v0\/b\/x-caregiver-recruiting.firebasestorage.app\/o\/wpi-pdf%2Fevm-mt-03-02-upgrade.zip?alt=media\u0026amp;token=d2bfbbb8-05aa-49f0-b472-0d5b4d1b40c5\"\u003eTélécharger la mise à jour du manuel EVOM3\/EVOM™\u003c\/a\u003e (Publié en février 2025)\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003ca href=\"https:\/\/firebasestorage.googleapis.com\/v0\/b\/x-caregiver-recruiting.firebasestorage.app\/o\/wpi-pdf%2FEVOM3_Python.zip?alt=media\u0026amp;token=0f378579-3fe3-42de-9719-aae3fe564deb\"\u003ePackage de sortie numérique Python\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eFAQ\u003c\/h2\u003e\n\u003cul\u003e\n\u003cli\u003e\u003cstrong\u003eL’EVOM3 fonctionne-t-il avec les Endohm ?\u003c\/strong\u003e\u003c\/li\u003e\n\u003c\/ul\u003e\n\u003cp\u003eOui, mais l’adaptateur 99672 est requis ou le nouveau câble EVOM3 99916.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cul\u003e\n\u003cli\u003e\u003cstrong\u003ePourquoi voudrais-je utiliser la fonction blanc ?\u003c\/strong\u003e\u003c\/li\u003e\n\u003c\/ul\u003e\n\u003cp\u003eLa fonction blanc est utilisée lorsque vous souhaitez soustraire toute mesure qui ne provient pas de la membrane, comme les résistances des électrodes et du fluide.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cul\u003e\n\u003cli\u003e\u003cstrong\u003eLe système EVOM3 calcule-t-il automatiquement le TEER ?\u003c\/strong\u003e\u003c\/li\u003e\n\u003c\/ul\u003e\n\u003cp\u003eNon, la mesure TEER nécessite un calcul de surface. Pour calculer le TEER, multipliez la résistance mesurée par la surface appropriée (ci-dessous). Par exemple, un insert de 12 mm mesure 565 Ω, le TEER est 565 Ω × 1,13 cm\u003csup\u003e2\u003c\/sup\u003e = 638,5 Ω- cm\u003csup\u003e2\u003c\/sup\u003eVoici les surfaces généralement applicables aux différents formats de transwell\/insert : plaque 6 puits (inserts de 24 mm) 4,52 cm\u003csup\u003e2\u003c\/sup\u003e, plaque 12 puits (inserts 12 mm) 1,13 cm\u003csup\u003e2\u003c\/sup\u003e, plaque 24 puits (inserts 6,5 mm) 0,33 cm\u003csup\u003e2\u003c\/sup\u003e, plaque 96 puits (inserts 4,3 mm) 0,14 cm\u003csup\u003e2\u003c\/sup\u003e.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cul\u003e\n\u003cli\u003e\u003cstrong\u003eLes données EVOM3 sont enregistrées automatiquement lorsque le dernier puits est atteint. Comment enregistrer les données si je veux seulement mesurer 8 puits sur 96 ?\u003c\/strong\u003e\u003c\/li\u003e\n\u003c\/ul\u003e\n\u003cp\u003eEffacez toutes les données en mémoire en ouvrant les paramètres, le menu de stockage, puis en appuyant sur nouvelle plaque, cela effacera toutes les lectures précédentes. Revenez à l'écran principal, ouvrez l'écran d'aperçu, sélectionnez chaque puits à mesurer (la sélection devient verte), placez l'électrode, puis mesurez. Une fois que vous avez terminé de mesurer les puits sélectionnés, ouvrez les paramètres, appuyez sur le menu d'écran de stockage, puis appuyez sur enregistrer nouveau pour sauvegarder les données de la plaque sur la clé USB.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cul\u003e\n\u003cli\u003e\u003cstrong\u003eComment devez-vous stocker l'EVOM3 et les électrodes s'ils seront exposés à la lumière UV dans une hotte à flux laminaire pendant de longues périodes ?\u003c\/strong\u003e\u003c\/li\u003e\n\u003c\/ul\u003e\n\u003cp\u003eSortez l'EVOM3 de la hotte à flux laminaire après utilisation. La prochaine fois, allumez la lumière UV à l'intérieur de la hotte. Une fois la hotte désinfectée par UV, éteignez les UV, puis vaporisez de l'éthanol ou de l'isopropanol à 70-100 % sur un essuie-tout et essuyez l'EVOM3. Ne vaporisez pas d'alcool directement sur l'EVOM3.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cul\u003e\n\u003cli\u003e\u003cstrong\u003ePourquoi est-ce que j'obtiens des tirets comme lecture sur l'EVOM3, même si j'ai l'électrode STX2-PLUS dans l'échantillon ? \u003c\/strong\u003e\u003c\/li\u003e\n\u003c\/ul\u003e\n\u003cp\u003eL'électrode dans l'air ou partiellement immergée dans le liquide peut afficher des tirets car elle enregistre des lectures instables. La partie de la pointe de l'électrode (zone de détection) doit rester entièrement immergée. Vous pouvez également remarquer des lectures instables lorsque la pointe de l'électrode n'est pas complètement immergée. Assurez-vous de sélectionner des volumes apicaux et basolatéraux pour que la pointe de l'électrode reste entièrement immergée. Vous devez utiliser des volumes apicaux et basolatéraux supérieurs à ceux suggérés par le fabricant de l'insert. Par exemple, pour le Transwell Corning-24 puits (exemple Corning 3470), nous recommandons un minimum de 300 µL en haut (apical) et 850 µL en bas (basolatéral). [Ces volumes sont un peu plus élevés que le minimum requis pour l'électrode STX2-PLUS.]\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003eVoici les étapes :\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cimg style=\"display: block; margin-left: auto; margin-right: auto;\" src=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/STX2-PLUS-1.jpg\" alt=\"STX2-PLUS\" width=\"403\" height=\"144\"\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003eFigure 1 : Réglage de la hauteur de l'électrode STX2-PLUS. Tournez la bague avant dans le sens des aiguilles d'une montre pour que l'électrode puisse pénétrer à la profondeur maximale à l'intérieur du puits.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cimg style=\"display: block; margin-left: auto; margin-right: auto;\" src=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/STX2-PLUS-2.jpg\" alt=\"STX2-PLUS\" width=\"173\" height=\"357\"\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003eFigure 2 : Pointe de l'électrode STX2-PLUS et exigences en volume de liquide. Assurez-vous que la pointe de détection de l'électrode (parties encadrées en rouge) sur les deux lames reste entièrement immergée dans un liquide conducteur, tel que le milieu de culture cellulaire ou un tampon, pendant la mesure. Vous devez disposer de volumes apicaux et basolatéraux adéquats pour obtenir une lecture stable. Comme le STX2-PLUS reste suspendu, le volume augmenté doit être utilisé pour garantir que la zone de détection de l'électrode soit entièrement immergée.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cstrong\u003eREMARQUE : Vous devez utiliser des volumes de liquide supérieurs à ceux recommandés par le fabricant de l'insert. Les volumes recommandés par le fabricant de l'insert ne maintiendront pas la pointe de l'électrode entièrement immergée.\u003c\/strong\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e[As mentioned as an example previously, for Corning-24 well Transwell (e.g., Corning 3470) we recommend using minimum 300 µL on top (apical) and 850 µL on bottom (basolateral). These volumes are a little more than the least required for STX2-PLUS electrode. You can check visually to make sure the apical and basolateral volumes are adequate to keep the electrode tips fully immersed, and then consistently use those volumes.]\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003eMême si la lecture instable ou le problème de tirets est toujours visible, l'électrode a très probablement besoin d'être chlorée. La chloration consiste à maintenir les pointes de l'électrode immergées dans une solution de 3-6 % d'hypochlorite de sodium ou d'eau de Javel pendant 10-15 minutes, suivie d'un rinçage à l'eau distillée. C'est une partie de l'entretien du STX2-PLUS et un processus d'entretien critique. Veuillez vous référer à l'instruction d'entretien ci-dessous (étape 1). **\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cul\u003e\n\u003cli\u003e\u003cstrong\u003eL'augmentation ou le changement des volumes de liquide d'échantillon peut-il modifier mes valeurs de résistance ? \u003c\/strong\u003e\u003c\/li\u003e\n\u003c\/ul\u003e\n\u003cp\u003eVous pouvez vous attendre à voir un changement des valeurs de résistance brute. Cependant, vous soustrayez les valeurs de blanc (Transwell blanc sans cellules) des valeurs d'échantillon (Transwell avec cellules). De cette façon, vous soustrayez la valeur de blanc avec volume augmenté des échantillons avec volume augmenté. Ainsi, tout changement de résistance dû à l'augmentation du volume est éliminé. Utilisez systématiquement les mêmes volumes pour tous vos échantillons dans une expérience.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cul\u003e\n\u003cli\u003e\u003cstrong\u003eExiste-t-il une instruction de nettoyage ou d'entretien des électrodes que je peux suivre ?\u003c\/strong\u003e\u003c\/li\u003e\n\u003c\/ul\u003e\n\u003cp\u003eVoici les étapes à suivre pour le nettoyage ou l'entretien du STX2-PLUS. Assurez-vous d'utiliser un niveau de liquide suffisant pendant le nettoyage ou l'entretien, au moins jusqu'à la zone encadrée en rouge.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003cimg style=\"display: block; margin-left: auto; margin-right: auto;\" src=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/STX2-PLUS-2.jpg\" alt=\"STX2-PLUS\" width=\"173\" height=\"357\"\u003e\u003cbr\u003e1. Avant de les utiliser, chlorurez l'électrode en maintenant les pointes de l'électrode immergées dans une solution de 3-6 % d'hypochlorite de sodium (eau de Javel) pendant 10-15 minutes. La chloration doit être effectuée tous les 3 jours lorsque les électrodes sont utilisées fréquemment ou après plus d'une semaine de stockage. **\u003cbr\u003e2. Rincez avec de l'eau DI stérile\/tampon.\u003cbr\u003e3. Étape optionnelle : trempage rapide dans 70 % d'éthanol ou d'isopropanol puis trempage rapide dans de l'eau DI\/tampon. \u003cbr\u003e4. Utilisez l'électrode pour les mesures.\u003cbr\u003e5. Étape optionnelle entre les mesures d'échantillons : trempage rapide dans 70 % d'éthanol ou d'isopropanol puis trempage rapide dans de l'eau DI\/tampon. \u003cbr\u003e6. Après les mesures, faites tremper\/immergez les pointes de l'électrode dans 70 % d'isopropanol ou d'éthanol pendant 5-10 minutes.\u003cbr\u003e7. Rincez à l'eau DI. Laissez sécher à l'air. Rangez l'électrode sèche et dans un endroit à l'abri de la lumière\/lumière minimale. \u003cbr\u003e8. Lors d'une utilisation fréquente, faites tremper les pointes de l'électrode chaque semaine dans 1 % de Tergazyme pendant 15 minutes. Suivez d'un rinçage à l'eau DI. \u003cbr\u003e9. Ensuite, chlorurez en maintenant les pointes de l'électrode immergées dans une solution de 3-6 % d'hypochlorite de sodium (eau de Javel) pendant 10-15 minutes. (Même que l'étape n°1.)\u003cbr\u003e10. Rincez avec de l'eau DI stérile\/tampon.\u003cbr\u003e11. Utilisez pour les mesures.\u003cbr\u003e12. Répétez à partir de l'étape 5.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cul\u003e\n\u003cli\u003e\u003cstrong\u003eY a-t-il d'autres instructions de manipulation des électrodes recommandées par WPI ?\u003c\/strong\u003e\u003c\/li\u003e\n\u003c\/ul\u003e\n\u003ctable style=\"border-collapse: collapse; width: 100%; height: 1004px;\" border=\"0\"\u003e\n\u003ctbody\u003e\n\u003ctr style=\"height: 489px;\"\u003e\n\u003ctd style=\"width: 50%; height: 489px;\"\u003e\u003cimg src=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/STX2-PLUS-3.jpg\" alt=\"Électrode\" width=\"552\" height=\"485\"\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd style=\"width: 50%; height: 489px;\"\u003eNE PAS tenir l'électrode par le câble. Cela peut progressivement casser physiquement les connexions internes.\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr style=\"height: 497px;\"\u003e\n\u003ctd style=\"width: 50%; height: 497px;\"\u003e\u003cimg src=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/STX2-PLUS-4.jpg\" alt=\"Électrode\" width=\"523\" height=\"494\"\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd style=\"width: 50%; height: 497px;\"\u003eTenez l'électrode par la zone fléchée (plastique).\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr style=\"height: 18px;\"\u003e\n\u003ctd style=\"width: 50%; height: 18px;\"\u003e\u003cimg src=\"https:\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/STX2-PLUS-5.jpg\" alt=\"Électrode\" width=\"511\" height=\"445\"\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd style=\"width: 50%; height: 18px;\"\u003e\n\u003cp\u003eLimitez le niveau d'immersion ou de pulvérisation du liquide jusqu'ici (\u003cstrong\u003emaximum\u003c\/strong\u003e). Vous ne voulez pas que le liquide pénètre à l'intérieur et atteigne les câbles ou connecteurs internes, c'est pourquoi. Vous pouvez essuyer le reste de l'électrode avec un essuie-tout vaporisé d'isopropanol ou d'éthanol (ne pas vaporiser directement).\u003c\/p\u003e\n\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003c\/tbody\u003e\n\u003c\/table\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eVidéo\u003c\/h2\u003e\n\u003ch2\u003e7 raisons d'aimer le nouvel EVOM3 pour la mesure TEER\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003e\u003ciframe src=\"https:\/\/www.youtube.com\/embed\/ROCQFTLLUCA?rel=0\" width=\"747\" height=\"420\"\u003e\u003c\/iframe\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eNouvelles fonctionnalités remarquables de l'EVOM3\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003e\u003ciframe src=\"https:\/\/www.youtube.com\/embed\/uyH2FRfQNLw?rel=0\" width=\"747\" height=\"420\"\u003e\u003c\/iframe\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003eLe système de mesure TEER EVOM3 permet aux chercheurs de réaliser des expériences plus efficacement en améliorant le flux de travail et en augmentant la stabilité et la précision des lectures par rapport à l'EVOM2. Si vous préférez lire les détails, consultez l'article \"\u003ca title=\"video comparing EVOM3 and EVOM2\" href=\"https:\/\/www.wpiinc.com\/blog\/post\/why-choose-an-evom3-over-an-evom2-for-teer-measurement\" rel=\"noopener\" target=\"_blank\"\u003ePourquoi choisir un EVOM3 plutôt qu'un EVOM2\u003c\/a\u003e.\" \u003c\/p\u003e\n\u003ch2\u003eEVOM3 : Quoi de neuf ?\u003c\/h2\u003e\n\u003cp\u003e\u003ciframe src=\"https:\/\/www.youtube.com\/embed\/p4BMjc_awYU?rel=0\" width=\"747\" height=\"420\"\u003e\u003c\/iframe\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003eCompact et léger - Voici une comparaison entre l'EVOM3 et l'EVOM2. Pesant moins de 1 lb, l'EVOM3 est léger et portable. Il présente un design élégant avec une interface tactile.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003ciframe src=\"https:\/\/www.youtube.com\/embed\/WfWCO7_s32w?rel=0\" width=\"747\" height=\"420\"\u003e\u003c\/iframe\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003eAffichage intelligent des données et contrôle par pédale - Découvrez la facilité de configuration et d'utilisation de la pédale pour collecter les données.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003ciframe src=\"https:\/\/www.youtube.com\/embed\/-qvhx4wp66o?rel=0\" width=\"747\" height=\"420\"\u003e\u003c\/iframe\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003eStockage des données sur clé USB - Enregistrez les données sous forme de fichiers Microsoft Excel sur la clé USB d'une simple pression sur un bouton. Le fichier de données peut être consulté sur un ordinateur en branchant la clé USB sur un port USB.  \u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e\u003ciframe src=\"https:\/\/www.youtube.com\/embed\/zsF4FR99uaU?rel=0\" width=\"747\" height=\"420\"\u003e\u003c\/iframe\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003eConception améliorée de l'électrode - Comparez l'électrode STX2 et la NOUVELLE électrode STX2-PLUS. La nouvelle électrode se tient verticalement sur la plaque à puits, assurant des lectures stables et cohérentes.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003c!-- \/section:resources --\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003c!-- section:specifications --\u003e\n\u003cp\u003eCet appareil est conforme aux spécifications suivantes :\u003c\/p\u003e\n\u003ctable class=\"product-table\" width=\"100%\"\u003e\n\u003ctbody\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd style=\"text-align: center;\"\u003e\u003cstrong\u003eType\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd style=\"text-align: center;\"\u003e\u003cstrong\u003eDescriptions\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e Fréquence d'échantillonnage des tissus\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e 12,5 Hz\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e Moyenne des échantillons\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e 20 échantillons par seconde\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e Plages de résistance\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\n\u003cul\u003e\n\u003cli\u003e 0 à 10 000 Ω\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003e 0 à 50 000 Ω\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003e 0 à 100 000 Ω +5%\u003c\/li\u003e\n\u003c\/ul\u003e\n\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e Mode automatique\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e 1 à 100 000 Ω courant auto 2 μA, 4 μA, 10 μA\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e Résolution de la résistance\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e 0,1 Ω (sous 200 Ω) ; 1 Ω (au-dessus de 200 Ω)\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e Précision de la résistance\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\n\u003cul\u003e\n\u003cli\u003e 0,1 Ω (sous 200 Ω), 1 Ω (au-dessus de 200 Ω) 0,1%\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003e 100 000 Ω ± 2 μA (jusqu'à 105 KΩ)\u003c\/li\u003e\n\u003c\/ul\u003e\n\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e Résolution de la tension\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e 0,001 V, 0,1 mV\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e Précision de la résistance\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e 0,1 Ω (200 Ω) ; 1 Ω (au-dessus de 200 Ω)\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e Précision de la tension\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e ± 0,1 mV\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e Niveaux de courant\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\n\u003cul\u003e\n\u003cli\u003e10 000 Ω ± 10 μA\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003e50 000 Ω ± 4 μA\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003e100 000 Ω ± 2 μA\u003c\/li\u003e\n\u003cli\u003eMode auto 1 à 100 000 Ω courant auto 2 μA, 4 μA, 10 μA\u003c\/li\u003e\n\u003c\/ul\u003e\n\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e Fréquence de mise à jour de l'affichage\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e 0,5 seconde\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e Batterie\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e Batterie Li-ion 3,7 V 2500 mAh**\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e Période de charge\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e 5,5 heures (hors tension) ; 6 heures (durée de fonctionnement)\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e Courant de charge\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e 200 mA\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e Consommation d'énergie\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e ~250 mA\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e Certifications\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e CE\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003c\/tbody\u003e\n\u003c\/table\u003e\n\u003cp\u003e** mAH signifie milliampères-heure.\u003c\/p\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003ch2 class=\"p1\"\u003eInserts et plaques compatibles avec les électrodes STX2-PLUS\u003c\/h2\u003e\n\u003ctable class=\"product-table\" width=\"100%\"\u003e\n\u003ctbody\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eCorning \u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\n\u003cstrong\u003eMillipore\u003c\/strong\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003e Matériau\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eDiamètre de la membrane (mm)\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eSurface de croissance (cm²)\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eTaille des pores de la membrane (μm)\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e3470\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e6.5\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.33\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.4\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e3472\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePITP01250\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e6.5\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.33\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e3.0\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e3413\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003eInsert PCF\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e6.5\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.33\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.4\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e3415\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePITP 01250\u003cbr\u003eInsert PCF\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e6.5\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.33\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e3.0\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e3421\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e6.5\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.33\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e5.0\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e3422\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePIEP 01250\u003cbr\u003eInsert PCF\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e6.5\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.33\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e8.0\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e3495 \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePIHT12R48* \u003cbr\u003eInsert PET\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e6.5\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.33\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.4\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePIHA012 50\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003eInsert HA\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e6.5\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.33\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.45\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePICM012 50\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003eInsert CM\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e6.5\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.33\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.4\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e3496\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePISP12R48*\u003cbr\u003eInsert PET\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e6.5\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.33\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e3.0\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePIRP12R48*\u003cbr\u003eInsert PET\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e6.5\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.33\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e1.0\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePIMP12R48*\u003cbr\u003eInsert PET\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e6.5\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.33\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e5.0\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePIEP12R48*\u003cbr\u003eInsert PET\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e6.5\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.33\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e8.0\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePIXP01250\u003cbr\u003eInsert PCF\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e6.5\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.33\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e12\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePIHP01250\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e1.0\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePITT01250\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e3.0\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003c\/tbody\u003e\n\u003c\/table\u003e\n\u003cp\u003e* Tri-supports \u003c\/p\u003e\n\u003ctable class=\"product-table\" width=\"100%\"\u003e\n\u003ctbody\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eNunc\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eTaille des pores (μm)\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eSurface de culture (cm²)\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e140620\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.4\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.47\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e140627\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e3.0\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.47\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e140629\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e8.0\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.47\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003c\/tbody\u003e\n\u003c\/table\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003ctable class=\"product-table\" width=\"100%\"\u003e\n\u003ctbody\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eThinCert\u003csup\u003eTM\u003c\/sup\u003e\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eMatériau de la membrane\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eTaille des pores [µm]\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eDensité des pores [cm\u003csup\u003e-2\u003c\/sup\u003e]\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003ePropriétés optiques de la membrane\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eTraitement de surface TC\/Stérile\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003ePlaques Multi-puits\/ThinCert\u003csup\u003eTM\u003c\/sup\u003e par boîte\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e662640\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePET\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.4\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e1 x 10\u003csup\u003e8\u003c\/sup\u003e\n\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003etranslucide\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e+\/+\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e2\/48\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e662641\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePET\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.4 \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e2 x 10\u003csup\u003e6\u003c\/sup\u003e\n\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003etransparent\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e+\/+\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e2\/48\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e662610\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePET\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e1.0 \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e2 x 10\u003csup\u003e6\u003c\/sup\u003e\n\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003etransparent\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e+\/+\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e2\/48\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e662630\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePET\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e3.0 \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.6 x 10\u003csup\u003e6\u003c\/sup\u003e\n\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003etransparent\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e+\/+\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e2\/48\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e662631\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePET\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e3.0 \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e2 x 10\u003csup\u003e6\u003c\/sup\u003e\n\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003etranslucide\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e+\/+\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e2\/48\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e662638\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePET\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e8.0 \u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.15 x 10\u003csup\u003e6\u003c\/sup\u003e\n\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003etranslucide\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e+\/+\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e2\/48\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003c\/tbody\u003e\n\u003c\/table\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003ctable class=\"product-table\" width=\"100%\"\u003e\n\u003ctbody\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eMillicell\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eTaille des pores (μm)\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eQté\/paquet\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003eMCHT24H48\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.4\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e48\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003eMCRP24H48\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e1.0\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e48\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003eMCSP24H48\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e3.0\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e48\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003eMCMP24H48\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e5.0\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e48\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003eMCEP24H48\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e8.0\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e48\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003c\/tbody\u003e\n\u003c\/table\u003e\n\u003cp\u003e  \u003c\/p\u003e\n\u003ctable class=\"product-table\" width=\"100%\"\u003e\n\u003ctbody\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eBD Falcon\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eMatériau de la membrane\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eTaille des pores [µm]\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003eDensité des pores [cm\u003csup\u003e-2\u003c\/sup\u003e]\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003ePropriétés optiques de la membrane\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e\u003cstrong\u003ePlaque TC (#puits)\u003c\/strong\u003e\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e353095\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePET\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.4\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e2.0 ± 0.2 x 10\u003csup\u003e6\u003c\/sup\u003e\n\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003etransparent\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e24\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e353104\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePET\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e1.0\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e1.6 ± 0.6 x 10\u003csup\u003e6\u003c\/sup\u003e\n\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003etransparent\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e24\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e353096\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePET\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e3.0\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e8 ± 2 x 10\u003csup\u003e5\u003c\/sup\u003e\n\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003etransparent\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e24\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e353097\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePET\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e8.0\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e6 ± 2 x 10\u003csup\u003e4\u003c\/sup\u003e\n\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003etranslucide\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e24\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e353495\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePET\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e0.4HD\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e100 ± 10 x 10\u003csup\u003e6\u003c\/sup\u003e\n\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003etranslucide\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e24\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003ctr\u003e\n\u003ctd\u003e353492\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003ePET\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e3.0HD\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e2.0 ± 0.2 x 10\u003csup\u003e5\u003c\/sup\u003e\n\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003etranslucide\u003c\/td\u003e\n\u003ctd\u003e24\u003c\/td\u003e\n\u003c\/tr\u003e\n\u003c\/tbody\u003e\n\u003c\/table\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003c!-- \/section:specifications --\u003e\n\u003cp\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003c!-- section:references --\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eShaban, M. 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L’infection par le SARS-CoV-2 induit la dédifférenciation des cellules multiciliées et altère le clairage mucociliaire. \u003cem\u003eNature Communications 2021 12:1\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e12\u003c\/em\u003e(1), 1–16. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1038\/s41467-021-24521-x\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1038\/s41467-021-24521-x\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24.0pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003ePongkorpsakol, P., Turner, J. R., \u0026amp; Zuo, L. (2020). Culture de monocouches de cellules épithéliales intestinales et leur utilisation dans des tests multiplex de perméabilité macromoléculaire pour l'analyse in vitro de la sélectivité de taille des jonctions serrées. \u003cem\u003eCurrent Protocols in Immunology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e131\u003c\/em\u003e(1). \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1002\/cpim.112\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1002\/cpim.112\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24.0pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eNeal, E. H., Marinelli, N. A., Shi, Y., McClatchey, P. M., Balotin, K. M., Gullett, D. R., … Lippmann, E. S. (2019). Un schéma de différenciation simplifié et entièrement défini pour produire des cellules endothéliales de la barrière hémato-encéphalique à partir de cellules souches pluripotentes induites humaines. \u003cem\u003eStem Cell Reports\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e12\u003c\/em\u003e(6), 1380–1388. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/J.STEMCR.2019.05.008\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/J.STEMCR.2019.05.008\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24.0pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eHollmann, E. K., Bailey, A. K., Potharazu, A. V., Neely, M. D., Bowman, A. B., \u0026amp; Lippmann, E. S. (2017). Différenciation accélérée des cellules souches pluripotentes induites humaines en cellules endothéliales de la barrière hémato-encéphalique. \u003cem\u003eFluids and Barriers of the CNS 2017 14:1\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e14\u003c\/em\u003e(1), 1–13. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1186\/S12987-017-0059-0\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1186\/S12987-017-0059-0\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24.0pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eStanifer, M. L., Rippert, A., Kazakov, A., Willemsen, J., Bucher, D., Bender, S., … Boulant, S. (2016). Les particules subvirales intermédiaires du réovirus constituent une stratégie pour infecter les cellules épithéliales intestinales en exploitant la signalisation pro-survie dépendante de TGF-β. \u003cem\u003eCellular Microbiology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e18\u003c\/em\u003e(12), 1831–1845. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1111\/cmi.12626\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1111\/cmi.12626\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24.0pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eMeenach, S. A., Tsoras, A. N., McGarry, R. C., Mansour, H. M., Hilt, J. Z., \u0026amp; Anderson, K. W. (2016). Développement de sphéroïdes multicellulaires pulmonaires tridimensionnels en culture à interface air-liquide pour l’évaluation des thérapeutiques anticancéreuses. \u003cem\u003eInternational Journal of Oncology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e48\u003c\/em\u003e(4), 1701–1709. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.3892\/ijo.2016.3376\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.3892\/ijo.2016.3376\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24.0pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eFerguson, M. C., Saul, S., Fragkoudis, R., Weisheit, S., Cox, J., Patabendige, A., … Fazakerley, J. K. (2015). La capacité du virus arbovirus encéphalitique Semliki Forest à traverser la barrière hémato-encéphalique est déterminée par la charge de la glycoprotéine E2. \u003cem\u003eJournal of Virology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e89\u003c\/em\u003e(15), 7536–7549. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1128\/jvi.03645-14\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1128\/jvi.03645-14\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eHollmann, E. K., Bailey, A. K., Potharazu, A. V., Neely, M. D., Bowman, A. B., \u0026amp; Lippmann, E. S. (2017). Différenciation accélérée des cellules souches pluripotentes induites humaines en cellules endothéliales de la barrière hémato-encéphalique. \u003cem\u003eFluids and Barriers of the CNS 2017 14:1\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e14\u003c\/em\u003e(1), 1–13. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1186\/S12987-017-0059-0\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1186\/S12987-017-0059-0\u003c\/a\u003e\u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eNeal, E. H., Marinelli, N. A., Shi, Y., McClatchey, P. M., Balotin, K. M., Gullett, D. R., … Lippmann, E. S. (2019). Un schéma de différenciation simplifié et entièrement défini pour produire des cellules endothéliales de la barrière hémato-encéphalique à partir de cellules souches pluripotentes induites humaines. \u003cem\u003eStem Cell Reports\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e12\u003c\/em\u003e(6), 1380–1388. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/J.STEMCR.2019.05.008\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/J.STEMCR.2019.05.008\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eErami, Z., Timpson, P., Yao, W., Zaidel-Bar, R., \u0026amp; Anderson, K. I. (2015). Il existe quatre populations dynamiquement et fonctionnellement distinctes de l’E-cadhérine dans les jonctions cellulaires. \u003cem\u003eBiology Open\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e4\u003c\/em\u003e(11), 1481–1489. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1242\/bio.014159\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1242\/bio.014159\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eTosoni, K., Cassidy, D., Kerr, B., Land, S. C., \u0026amp; Mehta, A. (2016). Utilisation de médicaments pour sonder la variabilité de la résistance trans-épithéliale des voies respiratoires. \u003cem\u003ePloS One\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e11\u003c\/em\u003e(2), e0149550. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0149550\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0149550\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eVenter, J., Francis, H., Meng, F., DeMorrow, S., Kennedy, L., Standeford, H., … Alpini, G. (2015). Développement et caractérisation fonctionnelle de lignées de cholangiocytes extra-hépatiques de rats normaux. \u003cem\u003eDigestive and Liver Disease : Official Journal of the Italian Society of Gastroenterology and the Italian Association for the Study of the Liver\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e47\u003c\/em\u003e(11), 964–972. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/j.dld.2015.07.012\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/j.dld.2015.07.012\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eNoh, S. Y., Kang, S.-S., Yun, C.-H., \u0026amp; Han, S. H. (2015). L'acide lipotéichoïque de Lactobacillus plantarum inhibe la production d'IL-8 induite par Pam2CSK4 dans les cellules épithéliales intestinales humaines. \u003cem\u003eMolecular Immunology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e64\u003c\/em\u003e(1), 183–189. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/j.molimm.2014.11.014\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/j.molimm.2014.11.014\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eWang, Y., \u0026amp; Alexander, J. S. (2011). Analyse de la fonction de la barrière endothéliale in vitro. \u003cem\u003eMethods in Molecular Biology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e763\u003c\/em\u003e, 253–264. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1007\/978-1-61779-191-8_17\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1007\/978-1-61779-191-8_17\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eGhaffarian, R., \u0026amp; Muro, S. (2013). Modèles et méthodes pour évaluer le transport des systèmes d'administration de médicaments à travers les barrières cellulaires. \u003cem\u003eJournal of Visualized Experiments\u003c\/em\u003e, (80), e50638–e50638. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.3791\/50638\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.3791\/50638\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eDickman, K. G., Hempson, S. J., Anderson, J., Lippe, S., Zhao, L., Burakoff, R., \u0026amp; Shaw, R. D. (n.d.). Le rotavirus modifie la perméabilité paracellulaire et le métabolisme énergétique dans les cellules Caco-2.\u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003ePham, V. T., Seifert, N., Richard, N., Raederstorff, D., Steinert, R., Prudence, K., \u0026amp; Mohajeri, M. H. (2018). Effets des produits de fermentation des fibres prébiotiques sur la barrière intestinale et les fonctions immunitaires in vitro. \u003cem\u003ePeerJ\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e6\u003c\/em\u003e, e5288. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.7717\/peerj.5288\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.7717\/peerj.5288\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eBu, HZ; Poglod, M; Micetich, RG; Khan, J. (2000). Criblage à haut débit de la perméabilité des cellules Caco-2 par dosage en cassette et approches de regroupement d'échantillons utilisant l'injection directe\/extraction en ligne par cartouche de garde\/spectrométrie de masse en tandem. Consulté le 15 novembre 2016, depuis \u003ca href=\"http:\/\/serials.unibo.it\/cgi-ser\/start\/en\/spogli\/df-s.tcl?prog_art=7030068\u0026amp;language=ENGLISH\u0026amp;view=articoli\"\u003ehttp:\/\/serials.unibo.it\/cgi-ser\/start\/en\/spogli\/df-s.tcl?prog_art=7030068\u0026amp;language=ENGLISH\u0026amp;view=articoli\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eRoos, S., Wyder, M., Candi, A., Regenscheit, N., Nathues, C., van Immerseel, F., \u0026amp; Posthaus, H. (2015). Études de liaison sur la muqueuse intestinale grêle porcine isolée et études de toxicité in vitro révèlent l'absence d'effet de la bêta-toxine de C. perfringens sur l'épithélium intestinal porcin. \u003cem\u003eToxins\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e7\u003c\/em\u003e(4), 1235–1252. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.3390\/toxins7041235\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.3390\/toxins7041235\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eShang, V. C. M., Kendall, D. A., \u0026amp; Roberts, R. E. (2016). Le Δ9-Tétrahydrocannabinol inverse l'augmentation de la perméabilité des cellules épithéliales des voies respiratoires induite par le TNFα via les récepteurs CB2. \u003cem\u003eBiochemical Pharmacology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e120\u003c\/em\u003e, 63–71. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/j.bcp.2016.09.008\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/j.bcp.2016.09.008\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eTurdalieva, A., Solandt, J., Shambetova, N., Xu, H., Blom, H., Brismar, H., … Fu, Y. (2016). Réponse bioélectrique et morphologique du monocouche de cellules épithéliales des voies respiratoires humaines Calu-3 recouvertes de liquide à la déposition périodique de points quantiques à noyau multishell CdSe-CdS\/ZnS recouverts d’acide 3-mercaptopropionique colloïdal. \u003cem\u003ePloS One\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e11\u003c\/em\u003e(2), e0149915. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0149915\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0149915\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eUtsumi, H., Chiba, H., Kamimura, Y., Osanai, M., Igarashi, Y., Tobioka, H., … Sawada, N. (2000). Expression de GFRα-1, récepteur pour GDNF, dans les capillaires cérébraux de rat pendant le développement postnatal de la BBB. \u003cem\u003eAmerican Journal of Physiology - Cell Physiology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e279\u003c\/em\u003e(2). \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eCzupalla, C. J., Liebner, S., \u0026amp; Devraj, K. (2014). Modèles in vitro de la barrière hémato-encéphalique. \u003cem\u003eMethods in Molecular Biology (Clifton, N.J.)\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e1135\u003c\/em\u003e, 415–437. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1007\/978-1-4939-0320-7_34\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1007\/978-1-4939-0320-7_34\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eLi, Y., Wu, W.-H., Hsu, C.-W., Nguyen, H. V, Tsai, Y.-T., Chan, L., … Tsang, S. H. (2014). Thérapie génique dans des lignées de cellules souches spécifiques au patient et un modèle préclinique de rétinite pigmentaire avec des défauts de la protéine membranaire frizzled-related. \u003cem\u003eMolecular Therapy : The Journal of the American Society of Gene Therapy\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e22\u003c\/em\u003e(9), 1688–1697. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1038\/mt.2014.100\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1038\/mt.2014.100\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eXu, Q., Liu, J., Wang, Z., Guo, X., Zhou, G., Liu, Y., … Su, L. (2015). La perturbation de la fonction de la barrière endothéliale induite par le stress thermique passe par la signalisation PAR1 et est inhibée par l’injection de Xuebijing. \u003cem\u003ePloS One\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e10\u003c\/em\u003e(2), e0118057. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0118057\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0118057\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eReichert, M., Müller, T., \u0026amp; Hunziker, W. (2000). Les domaines PDZ de zonula occludens-1 induisent une transition épithéliale-mésenchymateuse des cellules Madin-Darby canine kidney I. Preuve d’un rôle de la signalisation beta-caténine\/Tcf\/Lef. \u003cem\u003eThe Journal of Biological Chemistry\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e275\u003c\/em\u003e(13), 9492–9500. Consulté sur \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/10734097\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/10734097\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eLaksitorini, M. D., Kiptoo, P. K., On, N. H., Thliveris, J. A., Miller, D. W., \u0026amp; Siahaan, T. J. (2015). Modulation des jonctions intercellulaires par des peptides cyclic-ADT comme méthode pour augmenter de manière réversible la perméabilité de la barrière hémato-encéphalique. \u003cem\u003eJournal of Pharmaceutical Sciences\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e104\u003c\/em\u003e(3), 1065–1075. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1002\/jps.24309\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1002\/jps.24309\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eZhang, J., Field, C. J., Vine, D., \u0026amp; Chen, L. (2015). Absorption intestinale et transport de nanoparticules de protéine de soja chargées en vitamine B12. \u003cem\u003ePharmaceutical Research\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e32\u003c\/em\u003e(4), 1288–1303. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1007\/s11095-014-1533-x\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1007\/s11095-014-1533-x\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eLippmann, E. S., Azarin, S. M., Kay, J. E., Nessler, R. A., Wilson, H. K., Al-Ahmad, A., … Shusta, E. V. (2012). Dérivation de cellules endothéliales de la barrière hémato-encéphalique à partir de cellules souches pluripotentes humaines. \u003cem\u003eNature Biotechnology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e30\u003c\/em\u003e(8), 783–791. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1038\/nbt.2247\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1038\/nbt.2247\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eAlhamoruni, A., Lee, A. C., Wright, K. L., Larvin, M., \u0026amp; O’Sullivan, S. E. (2010). Effets pharmacologiques des cannabinoïdes sur le modèle de culture cellulaire Caco-2 de la perméabilité intestinale. \u003cem\u003eJournal of Pharmacology and Experimental Therapeutics\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e335\u003c\/em\u003e(1).\u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eKauffman, A. L., Gyurdieva, A. V., Mabus, J. R., Ferguson, C., Yan, Z., \u0026amp; Hornby, P. J. (2013). Modèles fonctionnels alternatifs in vitro des épithéliums intestinaux humains. \u003cem\u003eFrontiers in Pharmacology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e4\u003c\/em\u003e, 79. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.3389\/fphar.2013.00079\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.3389\/fphar.2013.00079\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eChen, L., Zhu, J., Li, Y., Lu, J., Gao, L., Xu, H., … Yang, X. (2013). Amélioration de la délivrance muqueuse nasale et de l’immunogénicité du vaccin ADN anti-carie par incorporation de liposomes anioniques dans des complexes chitosane\/ADN. \u003cem\u003ePloS One\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e8\u003c\/em\u003e(8), e71953. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0071953\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0071953\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eMeenach, S. A., Tsoras, A. N., McGarry, R. C., Mansour, H. M., Hilt, J. Z., \u0026amp; Anderson, K. W. (2016). Développement de sphéroïdes multicellulaires pulmonaires tridimensionnels en culture à interface air-liquide pour l’évaluation des thérapeutiques anticancéreuses. \u003cem\u003eInternational Journal of Oncology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e48\u003c\/em\u003e(4), 1701–1709. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.3892\/ijo.2016.3376\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.3892\/ijo.2016.3376\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eReaves, D. K., Fagan-Solis, K. D., Dunphy, K., Oliver, S. D., Scott, D. W., \u0026amp; Fleming, J. M. (2014). Le rôle du récepteur des lipoprotéines stimulé par la lipolyse dans le cancer du sein et la direction du comportement des cellules cancéreuses du sein. \u003cem\u003ePloS One\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e9\u003c\/em\u003e(3), e91747. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0091747\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0091747\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eBrown, J. A., Pensabene, V., Markov, D. A., Allwardt, V., Neely, M. D., Shi, M., … Wikswo, J. P. (2015). Recréer la physiologie et la structure de la barrière hémato-encéphalique sur puce : un nouveau bioréacteur microfluidique neurovasculaire. \u003cem\u003eBiomicrofluidics\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e9\u003c\/em\u003e(5), 054124. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1063\/1.4934713\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1063\/1.4934713\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eLei, Y., Stamer, W. D., Wu, J., \u0026amp; Sun, X. (2014). La sénescence cellulaire réduit la sensibilité de la mécanotransduction des cellules du plexus aqueux angulaire porcin à l'élévation de la pression. \u003cem\u003eInvestigative Ophthalmology \u0026amp; Visual Science\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e55\u003c\/em\u003e(4), 2324–2328. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1167\/iovs.13-13317\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1167\/iovs.13-13317\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eTorr, E., Heath, M., Mee, M., Shaw, D., Sharp, T. V, \u0026amp; Sayers, I. (2016). L'expression de la protéine polycomb BMI-1 maintient la plasticité des cellules épithéliales basales bronchiques. \u003cem\u003ePhysiological Reports\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e4\u003c\/em\u003e(16). \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.14814\/phy2.12847\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.14814\/phy2.12847\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eLei, Y., Stamer, W. D., Wu, J., \u0026amp; Sun, X. (2013). Impact du stress oxydatif sur la fonction barrière des monocouches de cellules du plexus aqueux angulaire porcin. \u003cem\u003eInvestigative Ophthalmology \u0026amp; Visual Science\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e54\u003c\/em\u003e(7), 4827–4835. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1167\/iovs.12-11435\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1167\/iovs.12-11435\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eSheller, R. A., Cuevas, M. E., \u0026amp; Todd, M. C. (2017). Comparaison des techniques de mesure de la résistance transepitheliale : baguettes vs. Endohm. \u003cem\u003eBiological Procedures Online\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e19\u003c\/em\u003e, 4. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1186\/s12575-017-0053-6\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1186\/s12575-017-0053-6\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eMelvin, J. A., Lashua, L. P., Kiedrowski, M. R., Yang, G., Deslouches, B., Montelaro, R. C., \u0026amp; Bomberger, J. M. (2016). Activités antibiofilm et antivirale simultanées d’un peptide antimicrobien conçu lors d’une co-infection virus-bactérie. \u003cem\u003eMSphere\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e1\u003c\/em\u003e(3). \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1128\/mSphere.00083-16\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1128\/mSphere.00083-16\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eCampbell, L., Abulrob, A.-N. G., Kandalaft, L. E., Plummer, S., Hollins, A. J., Gibbs, A., \u0026amp; Gumbleton, M. (2003). Expression constitutive de la P-Glycoprotéine dans l'épithélium alvéolaire pulmonaire normal et fonctionnalité dans les cultures primaires de cellules épithéliales alvéolaires. \u003cem\u003eJournal of Pharmacology and Experimental Therapeutics\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e304\u003c\/em\u003e(1).\u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eRichter, J. F., Schmauder, R., Krug, S. M., Gebert, A., \u0026amp; Schumann, M. (2016). Une nouvelle méthode pour imager les sites de passage paracellulaire des macromolécules dans les feuillets épithéliaux. \u003cem\u003eJournal of Controlled Release\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e229\u003c\/em\u003e, 70–79. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/j.jconrel.2016.03.018\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/j.jconrel.2016.03.018\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eMeenach, S. A., Anderson, K. W., Hilt, J. Z., McGarry, R. C., Mansour, H. M., Samantha A. Meenach, Kimberly W. Anderson, J. Zach Hilt, Ronald C. McGarry, H. M. M., … Mansour, H. M. (2014, 20 décembre). Inhalateurs de poudre sèche performants de particules multifonctionnelles mimant le surfactant pulmonaire DPPC\/DPPG de paclitaxel dans le cancer du poumon : caractérisation physicochimique, dispersion aérosol in vitro et études cellulaires. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1208\/s12249-014-0182-z\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1208\/s12249-014-0182-z\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eSchexnayder, C., \u0026amp; Stratford, R. E. (2015). Effets de la génistéine et du glycéollin sur ABCC2 (MRP2) et ABCG2 (BCRP) dans les cellules Caco-2. \u003cem\u003eInternational Journal of Environmental Research and Public Health\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e13\u003c\/em\u003e(1), ijerph13010017. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.3390\/ijerph13010017\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.3390\/ijerph13010017\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003ePongkorpsakol, P., Turner, J. R., \u0026amp; Zuo, L. (2020). Culture de monocouches de cellules épithéliales intestinales et leur utilisation dans des tests multiplex de perméabilité macromoléculaire pour l'analyse in vitro de la sélectivité de taille des jonctions serrées. \u003cem\u003eCurrent Protocols in Immunology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e131\u003c\/em\u003e(1). \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1002\/cpim.112\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1002\/cpim.112\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eGrover, A., Hirani, A., Pathak, Y., \u0026amp; Sutariya, V. (2014). Administration ciblée au cerveau de docétaxel par des nanoparticules recouvertes de glutathion pour le cancer du cerveau. \u003cem\u003eAAPS PharmSciTech\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e15\u003c\/em\u003e(6), 1562–1568. https:\/\/doi.org\/10.1208\/s12249-014-0165-0\u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eMeerveld, G.-V. B., R, T. K., 文 タ イ ト ル和, \u0026amp; vitro の ラ ッ ト 空 腸 お よ び 結 腸 に お け る 木 ク レ オ ソ － ト お よ び ロ ペ ラ ミ ド の 止 瀉 効 果 の 比 較, I. (2000). Comparaison des effets antidiarrhéiques du créosote de bois et du lopéramide dans le jéjunum et le côlon de rat in vitro. \u003cem\u003eBiol Pharm Bull\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e23\u003c\/em\u003e, 952–956.\u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003ePongkorpsakol, P., Pathomthongtaweechai, N., Srimanote, P., Soodvilai, S., Chatsudthipong, V., \u0026amp; Muanprasat, C. (2014). Inhibition de la sécrétion intestinale de chlorure activée par le cAMP par le diclofénac : mécanisme cellulaire et application potentielle dans le choléra. \u003cem\u003ePLoS Neglected Tropical Diseases\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e8\u003c\/em\u003e(9), e3119. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pntd.0003119\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pntd.0003119\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eLi, G., Li, T., Li, Y., Cai, S., Zhang, Z., Zeng, Z., … Chen, Z. (2014). L'ulinastatine inhibe l'hyperperméabilité endothéliale induite par les oxydants et la signalisation apoptotique. \u003cem\u003eInternational Journal of Clinical and Experimental Pathology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e7\u003c\/em\u003e(11), 7342–7350. Consulté sur \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/25550770\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/25550770\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eWise, S. K., Laury, A. M., Katz, E. H., Den Beste, K. A., Parkos, C. A., \u0026amp; Nusrat, A. (2014). L'interleukine-4 et l'interleukine-13 compromettent la barrière épithéliale sinonasale et perturbent l'expression des protéines des jonctions intercellulaires. \u003cem\u003eInternational Forum of Allergy \u0026amp; Rhinology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e4\u003c\/em\u003e(5), 361–370. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1002\/alr.21298\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1002\/alr.21298\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eBlenkinsop, T. A., Saini, J. S., Maminishkis, A., Bharti, K., Wan, Q., Banzon, T., … Stern, J. H. (2015). 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La captation intracellulaire d'Aβ médiée par RAGE contribue à la rupture des jonctions serrées dans l'épithélium pigmentaire rétinien. \u003cem\u003eOncotarget\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e6\u003c\/em\u003e(34), 35263–35273. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.18632\/oncotarget.5894\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.18632\/oncotarget.5894\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eSaeedi, B. J., Kao, D. J., Kitzenberg, D. A., Dobrinskikh, E., Schwisow, K. D., Masterson, J. C., … Glover, L. E. (2015). La régulation dépendante de HIF de la claudine-1 est centrale pour l'intégrité des jonctions serrées de l'épithélium intestinal. \u003cem\u003eMolecular Biology of the Cell\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e26\u003c\/em\u003e(12), 2252–2262. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1091\/mbc.E14-07-1194\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1091\/mbc.E14-07-1194\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eFossum, S. L., Mutolo, M. J., Yang, R., Dang, H., O’Neal, W. K., Knowles, M. R., … Harris, A. (2014). 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Analyse de la perméabilité des médicaments neuroactifs à travers un modèle dynamique microfluidique in vitro de la barrière hémato-encéphalique. \u003cem\u003eAnnals of Biomedical Engineering\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e42\u003c\/em\u003e(12), 2379–2391. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1007\/s10439-014-1086-5\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1007\/s10439-014-1086-5\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eMooren, O. L., Kim, J., Li, J., \u0026amp; Cooper, J. A. (2015). Rôle de N-WASP dans la formation et l'intégrité du monocouche endothélial. \u003cem\u003eJournal of Biological Chemistry\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e290\u003c\/em\u003e(30), 18796–18805. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1074\/jbc.M115.668285\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1074\/jbc.M115.668285\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eBernocchi, B., Carpentier, R., Lantier, I., Ducournau, C., Dimier-Poisson, I., \u0026amp; Betbeder, D. (2016). Mécanismes permettant la délivrance de protéines dans la muqueuse nasale à l'aide de nanoparticules NPL. \u003cem\u003eJournal of Controlled Release : Official Journal of the Controlled Release Society\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e232\u003c\/em\u003e, 42–50. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/j.jconrel.2016.04.014\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/j.jconrel.2016.04.014\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eByeon, H. J., Thao, L. Q., Lee, S., Min, S. Y., Lee, E. S., Shin, B. S., … Youn, Y. S. (2016). Nanoparticules chargées de doxorubicine composées d'albumines modifiées cationiques et mannose pour un double ciblage dans les tumeurs cérébrales. \u003cem\u003eJournal of Controlled Release\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e225\u003c\/em\u003e, 301–313. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/j.jconrel.2016.01.046\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/j.jconrel.2016.01.046\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eCrane, J. K., Broome, J. E., Reddinger, R. M., \u0026amp; Werth, B. B. (2014). Le zinc protège contre Escherichia coli shiga-toxigène en agissant à la fois sur les tissus hôtes et sur les bactéries. \u003cem\u003eBMC Microbiology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e14\u003c\/em\u003e, 145. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1186\/1471-2180-14-145\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1186\/1471-2180-14-145\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eAhmed, C. M., Biswal, M. R., Li, H., Han, P., Ildefonso, C. J., \u0026amp; Lewin, A. S. (2016). Réaffectation d'un médicament administrable par voie orale pour le traitement de l'atrophie géographique. \u003cem\u003eMolecular Vision\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e22\u003c\/em\u003e, 294–310. Consulté sur \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/27110092\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/27110092\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eCieza, R. J., Hu, J., Ross, B. 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M., Katz, E. H., Den Beste, K. A., Parkos, C. A., \u0026amp; Nusrat, A. (2014). L'interleukine-4 et l'interleukine-13 compromettent la barrière épithéliale sinonasale et perturbent l'expression des protéines des jonctions intercellulaires. \u003cem\u003eInternational Forum of Allergy \u0026amp; Rhinology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e4\u003c\/em\u003e(5), 361–370. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1002\/alr.21298\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1002\/alr.21298\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eFerguson, M. C., Saul, S., Fragkoudis, R., Weisheit, S., Cox, J., Patabendige, A., … Fazakerley, J. K. (2015). 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Le rôle des fimbriae polaires longues dans l'adhésion et la colonisation d'Escherichia coli O104:H4. \u003cem\u003ePLOS ONE\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e10\u003c\/em\u003e(10), e0141845. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0141845\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0141845\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eKuehn, D., Majeed, S., Guedj, E., Dulize, R., Baumer, K., Iskandar, A., … Peitsch, M. C. (2015). Évaluation de l'impact d'une exposition répétée à la fumée complète de cigarette sur des modèles de cultures tissulaires bronchiques et nasales organotypiques 3D. \u003cem\u003eJournal of Visualized Experiments\u003c\/em\u003e, (96), e52325–e52325. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.3791\/52325\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.3791\/52325\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eCastro, R., Barlow-Walden, L., Woodson, T., Kerecman, J. 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Évaluation de la tolérance oculaire de trois préparations pharmaceutiques topiques de tacrolimus par le test d'opacité et de perméabilité cornéenne bovine. \u003cem\u003eCurrent Eye Research\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e41\u003c\/em\u003e(7), 890–896. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.3109\/02713683.2015.1082187\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.3109\/02713683.2015.1082187\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eMishra, R., \u0026amp; Singh, S. K. (2014). La protéine Tat C du VIH-1 phosphoryle le complexe VE-cadhérine et augmente la perméabilité des cellules endothéliales microvasculaires cérébrales humaines. \u003cem\u003eBMC Neuroscience\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e15\u003c\/em\u003e, 80. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1186\/1471-2202-15-80\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1186\/1471-2202-15-80\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eGuzman-Aranguez, A., Calvo, P., Ropero, I., \u0026amp; Pintor, J. (2014). Effets in vitro des médicaments anti-allergiques conservés et non conservés sur les cellules épithéliales cornéennes humaines. \u003cem\u003eJournal of Ocular Pharmacology and Therapeutics : The Official Journal of the Association for Ocular Pharmacology and Therapeutics\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e30\u003c\/em\u003e(9), 790–798. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1089\/jop.2014.0030\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1089\/jop.2014.0030\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eOdijk, M., van der Meer, A. D., Levner, D., Kim, H. J., van der Helm, M. W., Segerink, L. I., … van den Berg, A. (2015). Mesure de la résistance électrique trans-épithéliale en courant continu dans des microsystèmes organ-on-a-chip. \u003cem\u003eLab on a Chip\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e15\u003c\/em\u003e(3), 745–752. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1039\/c4lc01219d\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1039\/c4lc01219d\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eMansourpour, M., Mahjub, R., Amini, M., Ostad, S. N., Shamsa, E. S., Rafiee-Tehrani, M., \u0026amp; Dorkoosh, F. A. (2015). Développement de nanoparticules alginate\/triméthyl chitosane résistantes à l’acide contenant des polymères β-cyclodextrine cationiques pour l’administration orale d’insuline. \u003cem\u003eAAPS PharmSciTech\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e16\u003c\/em\u003e(4), 952–962. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1208\/s12249-014-0282-9\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1208\/s12249-014-0282-9\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eSjöqvist, S., Jungebluth, P., Lim, M. L., Haag, J. C., Gustafsson, Y., Lemon, G., … Macchiarini, P. (2014). Transplantation orthotopique expérimentale d’un œsophage bio-artificiel chez le rat. \u003cem\u003eNature Communications\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e5\u003c\/em\u003e, 3562. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1038\/ncomms4562\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1038\/ncomms4562\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eRoh-Johnson, M., Bravo-Cordero, J. J., Patsialou, A., Sharma, V. P., Guo, P., Liu, H., … Condeelis, J. (2014). Le contact avec les macrophages induit la signalisation de la GTPase RhoA pour déclencher l’intravasation des cellules tumorales. \u003cem\u003eOncogene\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e33\u003c\/em\u003e(33), 4203–4212. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1038\/onc.2013.377\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1038\/onc.2013.377\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eSenyavina, N. V., \u0026amp; Tonevitskaya, S. A. (2015). 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L’immunosuppresseur MPA module la jonction serrée via l’activation épigénétique de la voie MLCK\/MLC-2 par p38MAPK. \u003cem\u003eFrontiers in Physiology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e6\u003c\/em\u003e, 381. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.3389\/fphys.2015.00381\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.3389\/fphys.2015.00381\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eCouturier, J., Hutchison, A. T., Medina, M. A., Gingaras, C., Urvil, P., Yu, X., … Lewis, D. E. (2014). 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La carbonylation protéique d'un résidu d'acide aminé de la sous-unité α1 de la Na\/K-ATPase détermine la signalisation de la Na\/K-ATPase et le transport du sodium dans les cellules tubulaires proximales rénales. \u003cem\u003eJournal of the American Heart Association\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e5\u003c\/em\u003e(9). \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1161\/JAHA.116.003675\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1161\/JAHA.116.003675\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eWang, G., Zabner, J., Deering, C., Launspach, J., Shao, J., Bodner, M., … McCray, P. B. (2000). L'augmentation de la perméabilité des jonctions épithéliales améliore le transfert génique vers les épithéliums des voies respiratoires \u003cem\u003ein vivo\u003c\/em\u003e. \u003cem\u003eAmerican Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e22\u003c\/em\u003e(2), 129–138. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1165\/ajrcmb.22.2.3938\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1165\/ajrcmb.22.2.3938\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eZaccone, E. J., Goldsmith, W. T., Shimko, M. J., Wells, J. R., Schwegler-Berry, D., Willard, P. A., … Fedan, J. S. (2015). 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Détection de la réponse endothéliale dépendante de la fréquence au cisaillement oscillatoire à l'aide d'un moniteur transcellulaire microfluidique. \u003cem\u003eScientific Reports\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e7\u003c\/em\u003e(1), 10019. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1038\/s41598-017-10636-z\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1038\/s41598-017-10636-z\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eInglis, V. I., Jones, M. P. J., Tse, A. D. Y., \u0026amp; Easton, A. S. (2004). Les neutrophiles réduisent et augmentent la perméabilité dans un modèle de culture cellulaire de la barrière hémato-encéphalique. \u003cem\u003eBrain Research\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e998\u003c\/em\u003e(2), 218–229. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/J.BRAINRES.2003.11.031\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/J.BRAINRES.2003.11.031\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eXing, F., Sharma, S., Liu, Y., Mo, Y.-Y., Wu, K., Zhang, Y.-Y., … Watabe, K. (2015). miR-509 supprime les métastases cérébrales des cellules du cancer du sein en modulant RhoC et TNF-α. \u003cem\u003eOncogene\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e34\u003c\/em\u003e(37), 4890–4900. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1038\/onc.2014.412\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1038\/onc.2014.412\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eBooth, R., \u0026amp; Kim, H. (2012). Caractérisation d'un modèle microfluidique in vitro de la barrière hémato-encéphalique (μBBB). \u003cem\u003eLab on a Chip\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e12\u003c\/em\u003e(10), 1784. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1039\/c2lc40094d\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1039\/c2lc40094d\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eSrinivasan, B., Kolli, A. R., Esch, M. B., Abaci, H. E., Shuler, M. L., \u0026amp; Hickman, J. J. (2015). Techniques de mesure TEER pour les modèles de barrières in vitro. \u003cem\u003eJournal of Laboratory Automation\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e20\u003c\/em\u003e(2), 107–126. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1177\/2211068214561025\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1177\/2211068214561025\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eS. Jayaraman, Y. Song, L.Vetrivel, L.Shankar, A. S. V. (2001). Mesure non invasive in vivo par fluorescence de la profondeur du liquide de surface des voies respiratoires, de la concentration en sel et du pH. \u003cem\u003eThe Journal of Clinical Investigation\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e107\u003c\/em\u003e(3), 317. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1172\/JCI11154\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1172\/JCI11154\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eChen, S., Einspanier, R., \u0026amp; Schoen, J. (2015). Résistance électrique transepitheliale (TEER) : un paramètre fonctionnel pour surveiller la qualité des cellules épithéliales de l'oviducte cultivées sur supports filtrants. \u003cem\u003eHistochemistry and Cell Biology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e144\u003c\/em\u003e(5), 509–515. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1007\/s00418-015-1351-1\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1007\/s00418-015-1351-1\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eYu, J., Li, N., Lin, P., Li, Y., Mao, X., Bao, G., … Zhao, R. (2014). Transport intestinal des principales compositions chimiques de polygoni multiflori radix dans un modèle cellulaire caco-2. \u003cem\u003eEvidence-Based Complementary and Alternative Medicine : ECAM\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e2014\u003c\/em\u003e, 483641. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1155\/2014\/483641\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1155\/2014\/483641\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003ePothoven, K. L., Norton, J. E., Hulse, K. E., Suh, L. A., Carter, R. G., Rocci, E., … Schleimer, R. P. (2015). Oncostatin M favorise la dysfonction de la barrière épithéliale muqueuse, et son expression est augmentée chez les patients atteints de maladie muqueuse éosinophilique. \u003cem\u003eThe Journal of Allergy and Clinical Immunology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e136\u003c\/em\u003e(3), 737-746.e4. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/j.jaci.2015.01.043\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/j.jaci.2015.01.043\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eWilliams, K. M., Gokulan, K., Cerniglia, C. E., \u0026amp; Khare, S. (2016). Effets dépendants de la taille et de la dose de l'exposition aux nanoparticules d'argent sur la perméabilité intestinale dans un modèle \u003cem\u003ein vitro\u003c\/em\u003e de l'épithélium intestinal humain. \u003cem\u003eJournal of Nanobiotechnology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e14\u003c\/em\u003e(1), 62. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1186\/s12951-016-0214-9\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1186\/s12951-016-0214-9\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eJohnson, L. G., Olsen, J. C., Naldini, L., \u0026amp; Boucher, R. C. (2000). Transfert génique médié par vecteur lentiviral humain pseudotypé vers les épithéliums des voies respiratoires in vivo. \u003cem\u003eGene Therapy\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e7\u003c\/em\u003e(7), 568–574. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1038\/sj.gt.3301138\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1038\/sj.gt.3301138\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eLi, Q., Chen, B., Zeng, C., Fan, A., Yuan, Y., Guo, X., … Huang, Q. (2015). Activation différentielle des récepteurs et des voies de signalisation lors de la stimulation par différentes doses de sphingosine-1-phosphate dans les cellules endothéliales. \u003cem\u003eExperimental Physiology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e100\u003c\/em\u003e(1), 95–107. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1113\/expphysiol.2014.082149\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1113\/expphysiol.2014.082149\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eBusch, C., Hofmann, F., Gerhard, R., \u0026amp; Aktories, K. (2000). Implication d'un résidu de tryptophane conservé dans la liaison de l'UDP-glucose des glycosyltransférases des cytotoxines clostridiales majeures. \u003cem\u003eThe Journal of Biological Chemistry\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e275\u003c\/em\u003e(18), 13228–13234. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1074\/JBC.275.18.13228\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1074\/JBC.275.18.13228\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eHealy, L. L., Cronin, J. G., \u0026amp; Sheldon, I. M. (2015). Les cellules épithéliales polarisées sécrètent l'interleukine 6 apicalement dans l'endomètre bovin1. \u003cem\u003eBiology of Reproduction\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e92\u003c\/em\u003e(6), 151. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1095\/biolreprod.115.127936\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1095\/biolreprod.115.127936\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eEnjoji, S., Ohama, T., \u0026amp; Sato, K. (2014). Régulation des jonctions serrées des cellules épithéliales par le récepteur activé par protéase 2. \u003cem\u003eThe Journal of Veterinary Medical Science\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e76\u003c\/em\u003e(9), 1225–1229. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1292\/jvms.14-0191\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1292\/jvms.14-0191\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eMaherally, Z., Fillmore, H. L., Tan, S. L., Tan, S. F., Jassam, S. A., Quack, F. I., … Pilkington, G. J. (2018). Acquisition en temps réel de la résistance électrique transendothéliale dans un modèle humain intégral, \u003cem\u003ein vitro\u003c\/em\u003e, tridimensionnel de la barrière hémato-encéphalique illustrant l'intégrité des jonctions serrées. \u003cem\u003eThe FASEB Journal\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e32\u003c\/em\u003e(1), 168–182. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1096\/fj.201700162R\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1096\/fj.201700162R\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eBlaisdell, C. J., Edmonds, R. D., Wang, X. T., Guggino, S., \u0026amp; Zeitlin, P. L. (2000). Sécrétion de chlorure régulée par le pH dans les épithéliums pulmonaires fœtaux. \u003cem\u003eAmerican Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e278\u003c\/em\u003e(6), L1248-55. Consulté sur \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/10835331\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/10835331\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eDi, S., Gujie, M., \u0026amp; Thomas, W. (2016). Ferri-liposomes magnétiques pour une libération déclenchée de médicaments à travers la barrière hémato-encéphalique. \u003cem\u003eFrontiers in Bioengineering and Biotechnology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e4\u003c\/em\u003e. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.3389\/conf.FBIOE.2016.01.00061\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.3389\/conf.FBIOE.2016.01.00061\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eCostello, C. M., Hongpeng, J., Shaffiey, S., Yu, J., Jain, N. K., Hackam, D., \u0026amp; March, J. C. (2014). Échafaudages synthétiques de l'intestin grêle pour améliorer les études de différenciation intestinale. \u003cem\u003eBiotechnology and Bioengineering\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e111\u003c\/em\u003e(6), 1222–1232. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1002\/bit.25180\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1002\/bit.25180\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eMolenda, N., Urbanova, K., Weiser, N., Kusche-Vihrog, K., Günzel, D., Schillers, H., … Howell, S. (2014). Transport paracellulaire à travers des lignées cellulaires épithéliales bronchiques saines et atteintes de mucoviscidose – Avons-nous un modèle adéquat ? \u003cem\u003ePLoS ONE\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e9\u003c\/em\u003e(6), e100621. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0100621\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1371\/journal.pone.0100621\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eCostello, C. M., Sorna, R. M., Goh, Y.-L., Cengic, I., Jain, N. K., \u0026amp; March, J. C. (2014). Échafaudages intestinaux 3D pour évaluer le potentiel thérapeutique des probiotiques. \u003cem\u003eMolecular Pharmaceutics\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e11\u003c\/em\u003e(7), 2030–2039. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1021\/mp5001422\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1021\/mp5001422\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eIacovelli, J., Rowe, G. C., Khadka, A., Diaz-Aguilar, D., Spencer, C., Arany, Z., \u0026amp; Saint-Geniez, M. (2016). PGC-1α induit le métabolisme oxydatif et la capacité antioxydante des cellules RPE humaines. \u003cem\u003eInvestigative Ophthalmology \u0026amp; Visual Science\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e57\u003c\/em\u003e(3), 1038–1051. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1167\/iovs.15-17758\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1167\/iovs.15-17758\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eBartakova, A., Alvarez-Delfin, K., Weisman, A. D., Salero, E., Raffa, G. A., Merkhofer, R. M., … Goldberg, J. L. (2016). Nouveaux marqueurs d'identité et fonctionnels pour les cellules endothéliales cornéennes humaines. \u003cem\u003eInvestigative Ophthalmology \u0026amp; Visual Science\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e57\u003c\/em\u003e(6), 2749–2762. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1167\/iovs.15-18826\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1167\/iovs.15-18826\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eSrimanee, A., Regberg, J., Hällbrink, M., Vajragupta, O., \u0026amp; Langel, Ü. (2016). Rôle des récepteurs scavenger dans la délivrance peptidique d'ADN plasmidique à travers un modèle de barrière hémato-encéphalique. \u003cem\u003eInternational Journal of Pharmaceutics\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e500\u003c\/em\u003e(1–2), 128–135. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/j.ijpharm.2016.01.014\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/j.ijpharm.2016.01.014\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eGarate, M. A., \u0026amp; Nunez, M. T. (2000). La surexpression de l'élément de réponse au fer de la ferritine diminue le pool de fer labile et supprime la régulation de l'absorption du fer par les cellules épithéliales intestinales (Caco-2). \u003cem\u003eJournal of Biological Chemistry\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e275\u003c\/em\u003e(3), 1651–1655. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1074\/jbc.275.3.1651\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1074\/jbc.275.3.1651\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eYang, J. J., Kim, K. J., \u0026amp; Lee, V. H. (2000). Rôle de la P-glycoprotéine dans la restriction du transport du propranolol dans les couches de cellules épithéliales conjonctivales de lapin en culture. \u003cem\u003ePharmaceutical Research\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e17\u003c\/em\u003e(5), 533–538. 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La flagelline induit la β-défensine 2 dans l'infection ex vivo du côlon humain par Escherichia coli entérohémorragique. \u003cem\u003eFrontiers in Cellular and Infection Microbiology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e6\u003c\/em\u003e, 68. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.3389\/fcimb.2016.00068\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.3389\/fcimb.2016.00068\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eMarvin, S. A., Huerta, C. T., Sharp, B., Freiden, P., Cline, T. D., \u0026amp; Schultz-Cherry, S. (2016). La réponse de l'interféron de type I limite la réplication de l'astrovirus et protège contre l'augmentation de la perméabilité de la barrière \u003cem\u003ein vitro\u003c\/em\u003e et \u003cem\u003ein vivo\u003c\/em\u003e. \u003cem\u003eJournal of Virology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e90\u003c\/em\u003e(4), 1988–1996. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1128\/JVI.02367-15\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1128\/JVI.02367-15\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eShirasawa, M., Sonoda, S., Terasaki, H., Arimura, N., Otsuka, H., Yamashita, T., … Sakamoto, T. (2013). 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Le tétraphosphate de diadénosine induit le démontage des jonctions serrées augmentant ainsi la perméabilité de l'épithélium cornéen. \u003cem\u003eBritish Journal of Pharmacology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e172\u003c\/em\u003e(4), 1045–1058. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1111\/bph.12972\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1111\/bph.12972\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eDe Chiara, L., Fagoonee, S., Ranghino, A., Bruno, S., Camussi, G., Tolosano, E., … Altruda, F. (2014). 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Preuves des actions anti-inflammatoires de la simvastatine basées sur des analyses quantitatives de la NETose et d'autres marqueurs d'inflammation\/oxydation. \u003cem\u003eResults in Immunology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e4\u003c\/em\u003e, 14–22. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1016\/j.rinim.2014.03.001\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1016\/j.rinim.2014.03.001\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eKatz, J., Sambandam, V., Wu, J. H., Michalek, S. M., \u0026amp; Balkovetz, D. F. (2000). 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Amélioration de la perméabilité paracellulaire et de la cytotoxicité dans les monocouches de cellules Caco-2 médiée par le dodécylphosphocholine. \u003cem\u003eJournal of Pharmaceutical Sciences\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e88\u003c\/em\u003e(11), 1161–1168. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1021\/js990094e\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1021\/js990094e\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eTravanty, E., Zhou, B., Zhang, H., Di, Y. P., Alcorn, J. F., Wentworth, D. E., … Wang, J. (2015). 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Le facteur neurotrophique dérivé des cellules gliales induit la fonction de barrière des cellules endothéliales formant la barrière hémato-encéphalique. \u003cem\u003eBiochemical and Biophysical Research Communications\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e261\u003c\/em\u003e(1), 108–112. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1006\/bbrc.1999.0992\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1006\/bbrc.1999.0992\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eEnjoji, S., Ohama, T., \u0026amp; Sato, K. (2014). Régulation des jonctions serrées des cellules épithéliales par le récepteur activé par protéase 2. \u003cem\u003eThe Journal of Veterinary Medical Science\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e76\u003c\/em\u003e(9), 1225–1229. Consulté sur \u003ca href=\"http:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/24881651\"\u003ehttp:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/24881651\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eStanifer, M. L., Rippert, A., Kazakov, A., Willemsen, J., Bucher, D., Bender, S., … Boulant, S. (2016). Les particules subvirales intermédiaires du réovirus constituent une stratégie pour infecter les cellules épithéliales intestinales en exploitant la signalisation pro-survie dépendante de TGF-β. \u003cem\u003eCellular Microbiology\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e18\u003c\/em\u003e(12), 1831–1845. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1111\/cmi.12626\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1111\/cmi.12626\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eElbakary, B., \u0026amp; Badhan, R. K. S. (2020). Un modèle dynamique de barrière hémato-encéphalique basé sur la perfusion pour les tests de cytotoxicité et la perméation des médicaments. \u003cem\u003eScientific Reports\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e10\u003c\/em\u003e(1), 3788. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1038\/s41598-020-60689-w\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1038\/s41598-020-60689-w\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eTakakuwa, R., Kokai, Y., Kojima, T., Akatsuka, T., Tobioka, H., Sawada, N., \u0026amp; Mori, M. (2000). Dissociation des fonctions de porte et de barrière des cellules MDCK par le réactif dépolymérisant l'actine Mycalolide B. \u003cem\u003eExperimental Cell Research\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e257\u003c\/em\u003e(2), 238–244. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1006\/excr.2000.4887\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1006\/excr.2000.4887\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eGallagher, E., Minn, I., Chambers, J. E., \u0026amp; Searson, P. C. (2016). Caractérisation in vitro du transport de pralidoxime et de la réactivation de l'acétylcholinestérase à travers des cellules MDCK et des cellules endothéliales microvasculaires cérébrales humaines dérivées de cellules souches (BC1-hBMECs). \u003cem\u003eFluids and Barriers of the CNS\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e13\u003c\/em\u003e(1), 10. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1186\/s12987-016-0035-0\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1186\/s12987-016-0035-0\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eCurtis, V. F., Ehrentraut, S. F., Campbell, E. L., Glover, L. E., Bayless, A., Kelly, C. J., … Colgan, S. P. (2015). Stabilisation de HIF par inhibition de la neddylation de Cullin-2 est protectrice dans les réponses inflammatoires muqueuses. \u003cem\u003eFASEB Journal : Publication officielle de la Fédération des Sociétés Américaines pour la Biologie Expérimentale\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e29\u003c\/em\u003e(1), 208–215. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1096\/fj.14-259663\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1096\/fj.14-259663\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eLiu, D. Z., Morris-Natschke, S. L., Kucera, L. S., Ishaq, K. S., Thakker, D. R., Hoogdalem, E. J. Van, … Magnusson, C. (1999). Relations structure-activité pour l'amélioration de la perméabilité paracellulaire par les 2-alkoxy-3-alkylamidopropylphosphocholines à travers des monocouches cellulaires Caco-2. \u003cem\u003eJournal of Pharmaceutical Sciences\u003c\/em\u003e, \u003cem\u003e88\u003c\/em\u003e(11), 1169–1174. \u003ca href=\"https:\/\/doi.org\/10.1021\/JS9900957\"\u003ehttps:\/\/doi.org\/10.1021\/JS9900957\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\u003cp style=\"margin-left: 24pt; text-indent: -24.0pt;\"\u003eRoss, B. N.,\u003c\/p\u003e\n\u003c!-- \/section:references --\u003e","brand":"World Precision Instruments","offers":[{"title":"Default Title","offer_id":42267085176922,"sku":"EVOM3","price":3630.0,"currency_code":"USD","in_stock":true}],"thumbnail_url":"\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0662\/7993\/1994\/files\/evom3-top-edit_a4cadb78-3858-4d32-9d35-ad5e327b26cb.jpg?v=1766412229","url":"https:\/\/wpiinc.com\/fr\/products\/evom3-epithelial-volt-ohm-teer-meter-3","provider":"World Precision Instruments","version":"1.0","type":"link"}